Summary

Isolation, karakterisering og sammenlignende differentiering af humane Dental Pulp stamceller fra blivende tænder ved hjælp af to forskellige metoder

Published: November 24, 2012
doi:

Summary

Fremgangsmåden beskrevet isolering og karakterisering af humane dental pulp stamceller (hDPSCs) ved anvendelse af enten<strong> Enzymatisk dissociation af papirmasse (dpsc-ED)</strong> Eller<strong> Direkte udvækst af stamceller fra pulpavæv eksplantater (dpsc-OG). Derefter fulgt af</strong><em> In vitro</em> Sammenlignende differentiering af begge typer hDPSCs i odontoblasts.

Abstract

<p class="jove_content"> Udvikling visdomstænder er let tilgængelig kilde til stamceller i voksenalderen, som kan opnås ved rutinemæssige ortodontisk behandling. Humane pulp-afledte stamceller (hDPSCs) besidder høj proliferation potentiale med multi-slægt differentiering kapacitet sammenlignet med den almindelige kilde til voksne stamceller<sup> 1-8</sup>, Og derfor kunne hDPSCs være gode kandidater til autolog transplantation i vævsteknologi og regenerativ medicin. Sammen med disse fordele, har de mesenkymale stamceller (MSC) funktioner, såsom immunolodulatory effekt gøre hDPSCs mere værdifuldt, selv i tilfælde af allotransplantation<sup> 6,9,10</sup>. Derfor er det primære trin til anvendelse af denne kilde til stamceller er at vælge den bedste protokol til isolering hDPSCs fra pulpavæv. For at nå dette mål, er det afgørende at undersøge effekten af ​​forskellige isolation forhold på forskellige cellulære adfærd, såsom deres fælles overflademarkører & også deres differentiering kapacitet.</p><p class="jove_content"> Således her adskiller vi menneskelig pulpavæv fra påvirket tredje kindtand tænder, og derefter bruges både eksisterende protokoller baseret på litteratur, til isolering hDPSCs,<sup> 11-13</sup><em> Dvs</em> Enzymatisk dissociation af pulpavæv (dpsc-ED) eller udvækst fra væv eksplantater (dpsc-OG). I denne forbindelse forsøgte vi at lette isoleringsmetoder ved hjælp af dental diamant disk. Derefter disse celler karakteriseres i form af stromal-associerede markører (CD73, CD90, CD105 og CD44), hæmatopoietiske / endothelial markører (CD34, CD45 og CD11b), perivaskulær markør, såsom CD146 og også STRO-1. Derefter blev de to protokoller i forhold baseret på differentiering styrken i odontoblasts af både kvantitativ polymerase chain reaction (qPCR) og Alizarin Red-farvning. QPCR blev brugt til vurdering af ekspressionen af ​​mineralisering-relaterede gener (alkalisk phosphatase, ALP, matrix ekstracellulære phosphoglycoprotein, MEPE & dentin sialophosphoprotein, DSPP).<sup> 14</sup</p>

Introduction

Stamceller er klonogene celler, som besidder to bemærkelsesværdige features, kendt som multi-potens og selvfornyelse 15. Blandt alle stamceller med forskellige replikative kræfter, har dental stamceller som de postnatale stamceller henledt opmærksomheden i de senere år på grund af deres tilgængelighed, plasticitet og høj proliferativ evne i sammenligning med andre voksne stamceller 16. Karakteristisk lighed med de mesenkymale stamceller, dental pulp stamceller er adhærente klonogene celler, der har multiple differentiering kapacitet til mesenkym-og / eller ikke-mesenchym linier, både de vitro og in vivo. 1-8,17,18 DPSCs identificeres ved deres negative udtryk for hæmatopoietiske antigener (f.eks CD45, CD34, CD14), og positivt udtryk for CD90, CD29, CD73, CD105, CD44 og STRO-1. 19,20

Nem opnåede potentiale med mindst smerte & sygelighed stille menneskelige DPSCs som et værdifuldtstand kilde MSC'er sammenlignet med de almindelige kilder, såsom knoglemarv mesenchymstamceller 21. Generelt er DPSCs blevet isoleret enten ved udvækst metode, dvs, migration af stamceller fra pulpavæv eksplantater (dpsc-OG) 22-24 og / eller ved enzymatisk nedbrydning (dpsc-ED) 4,6,25. Tidligere undersøgelser har vist, at isoleringsmetoden og dyrkningsbetingelser kan fremkalde forskellige populationer eller slægter under de vitro passager 26,27. I tilfælde af blivende tænder (pDPSCs), afslørede Huang et al, at enzymatiske fordøjede pDPSCs har højere proliferation potentiale sammenlignet med de outgrown DPSCs. 26 endvidere i tilfælde af løvfældende tænder (dDPSCs), blev det påvist, STRO-1 og CD34 markører udtrykt mere i dDPSC-ED sammenlignet med dDPSC-OG. Desuden viste dDPSC-ED højere mineraliseringsgrad i definerede osteo / odonto medium. 27 På grund af den enestående potentiale DPSCs i regenerative medicin, vil flere ikke være påkrævet for bedre forståelse af mulige forskellige populationer som er afledt af forskellige isoleringsmetoder.

Her var forsøg på at indføre nem måde af papirmasse ekstraktion, ved hjælp af en-trins dental diamant disk for at lette processen med pulp ekstraktion. Endvidere, efter isolering af humane pulp-afledte stamceller ved at anvende ED eller OG metoder, blev generelle egenskaber og differentiering kapacitet mellem to grupper også undersøgt.

Protocol

1. Forbered enzymopløsningen og spredning Medium (PM) Gør Collagenase Type I Løsning: Afvej collagenase type I (12 mg / ml) og opløses i 1 ml PBS og filtreres under anvendelse af en 0,2 um sprøjtefilter. Derefter placere det 15 ml rør og holde det ved -20 ° C indtil brug. Gør dispase Løsning: Afvej dispase (16 mg / ml) og opløses i 1 ml PBS og filtreres under anvendelse af en 0,2 um sprøjtefilter. Derefter placere det 15 ml rør og holde det ved 4 ° C in…

Representative Results

DPSCs, der blev opnået ved enzymatisk dissociation (dpsc-ED) er vist her på dag 10, 15,18 (fig. 1). Kolonierne indledt til dannelse på næsten 3-5 dage efter isolering. Vokset DPSCs (dpsc-OG) er vist i figur 2 på dag 5, 10, 13 & 18. Fibroblastlignende celler begyndte at migrere fra pulpavæv til kolben ved parallelle bestilling med næsten 5 dage efter podning. DPSCs ved passage 3 ved hjælp af begge fremgangsmåder er vist i figur 3.. Begge typer DPSCs var …

Discussion

Denne protokol beskriver processen med isolering og karakterisering af hDPSCs fra dental pulp ved hjælp af to metoder, enzymatisk dissociation og direkte udvækst af stamceller fra pulpavæv eksplantater. Desuden, in vitro differentiering af disse celler i odontoblasts blev vurderet ved kvantitativ Alizarin Red S assay og qPCR.

Eksisterende protokoller til isolering pulpavæv fra human tand var blevet brugt forskellige instrumenter, såsom tang (knogle tang) 9, udryddelse nål <sup…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Leila Shakeri & Dr. Aref Dournaei for deres kritiske discus og Mr. Mohammad Reza Khadem Sharif for hans tekniske hjælpemidler.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue or Lot. number Comments (optional)
α-MEM GIBCO 11900-073
Collagenase type I Sigma-Aldrich C0130-100MG
Dispase GIBCO 17105-041
Penicillin/streptomycin GIBCO 15140-122
Amphotericin B GIBCO 15290-018
Fetal Bovine serum defined (FBS) HyClone SH30070.03
L-ascorbic acid 2-phosphate Sigma A8960-5G
L-glutamine GIBCO 25030-024
Dexamethasone Sigma D4902
β-Glycerol phosphate disodium salt hydrate, BioUltra Sigma G9422-100G
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5655
Osteogenesis Assay Kit Millipore PS01802031
Mouse IgG2b-PE isotype control BD pharmingen 50808088029
FITC mouse IgG2b isotype control BD pharmingen 559532
FITC mouse IgG1 κ isotype BD pharmingen 11471471
FITC/PE mouse anti-human CD34/CD45 BD pharmingen 341071
PE anti-human CD146 BD pharmingen 550315
Monoclonal mouse anti-human CD90/FITC Daka 00034418
PE mouse anti-human CD73 BD pharmingen 550257
Anti-h CD105/Endoglin PE BD pharmingen FAB10971P
PE mouse anti-human CD11b/Mac1 BD pharmingen 5553888
CD44 PE mouse anti human BD pharmingen 555479
Phosphate buffer Solution (PBS) GIBCO 003000
70-μm cell strainer Falcon 352360
0.2 μm syringe filter Millex-GV SLGV033RB
25 cm2 culture flask Sigma-Aldrich Z707481
EQUIPMENT
BD FACSCalibur BD 342975
multiskan microplate spectrophotometer Thermo scientific 51119200
Fleurcense Microscope Olympus
Flowing Software version 2.3.1

References

  1. Volponi, A. A., Pang, Y., Sharpe, P. T. Stem cell-based biological tooth repair and regeneration. Trends Cell Biol. 20, 715-722 (2010).
  2. Nosrat, I. V., Widenfalk, J., Olson, L., Nosrat, C. A. Dental pulp cells produce neurotrophic factors, interact with trigeminal neurons in vitro, and rescue motoneurons after spinal cord injury. Dev. Biol. 238, 120-132 (2001).
  3. Gandia, C., et al. Human dental pulp stem cells improve left ventricular function, induce angiogenesis, and reduce infarct size in rats with acute myocardial infarction. Stem Cells. 26, 638-645 (2008).
  4. Gronthos, S., Mankani, M., Brahim, J., Robey, P. G., Shi, S. Postnatal human dental pulp stem cells (DPSCs) in vitro and in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.. 97, 13625-13630 (2000).
  5. Graziano, A., d’Aquino, R., Laino, G., Papaccio, G. Dental pulp stem cells: a promising tool for bone regeneration. Stem Cell Rev. 4, 21-26 (2008).
  6. Kerkis, I., et al. Early transplantation of human immature dental pulp stem cells from baby teeth to golden retriever muscular dystrophy (GRMD) dogs: Local or systemic. J. Transl. Med. 6, 35 (2008).
  7. Onyekwelu, O., Seppala, M., Zoupa, M., Cobourne, M. T. Tooth development: 2. Regenerating teeth in the laboratory. Dent. Update. 34, 20-29 (2007).
  8. Cordeiro, M. M., et al. Dental pulp tissue engineering with stem cells from exfoliated deciduous teeth. J. Endod. 34 (08), 962-969 (2008).
  9. Pierdomenico, L., et al. Multipotent mesenchymal stem cells with immunosuppressive activity can be easily isolated from dental pulp. Transplantation. 80, 836-842 (2005).
  10. de Mendonca Costa, A., et al. Reconstruction of large cranial defects in nonimmunosuppressed experimental design with human dental pulp stem cells. J. Craniofac. Surg. 19, 204-210 (2008).
  11. Tirino, V., et al. Methods for the identification, characterization and banking of human DPSCs: current strategies and perspectives. Stem Cell Rev. 7, 608-615 (2011).
  12. Tirino, V., Paino, F., De Rosa, A., Papaccio, G. Identification, isolation, characterization, and banking of human dental pulp stem cells. Methods Mol. Biol. 879, 443-463 (2012).
  13. Eslaminejad, M. B., Vahabi, S., Shariati, M., Nazarian, H. In vitro Growth and Characterization of Stem Cells from Human Dental Pulp of Deciduous Versus Permanent Teeth. J. Dent. (Tehran). 7, 185-195 (2010).
  14. Wei, X., Ling, J., Wu, L., Liu, L., Xiao, Y. Expression of mineralization markers in dental pulp cells. J. Endod. 33, 703-708 (2007).
  15. Nombela-Arrieta, C., Ritz, J., Silberstein, L. E. The elusive nature and function of mesenchymal stem cells. Nat. Rev. Mol Cell Biol. 12, 126-131 (2011).
  16. Huang, G. T., Gronthos, S., Shi, S. Mesenchymal stem cells derived from dental tissues vs. those from other sources: their biology and role in regenerative medicine. J. Dent. Res. 88, 792-806 (2009).
  17. Graziano, A., et al. Scaffold’s surface geometry significantly affects human stem cell bone tissue engineering. J. Cell Physiol. 214, 166-172 (2008).
  18. d’Aquino, R., et al. Human dental pulp stem cells: from biology to clinical applications. J. Exp. Zool. B. Mol. Dev. Evol. 312, 408-415 (2009).
  19. Mitsiadis, T. A., Feki, A., Papaccio, G., Caton, J. Dental pulp stem cells, niches, and notch signaling in tooth injury. Adv. Dent. Res. 23, 275-279 (2011).
  20. Shi, S., Gronthos, S. Perivascular niche of postnatal mesenchymal stem cells in human bone marrow and dental pulp. J. Bone Miner. Res. 18, 696-704 (2003).
  21. Tomic, S., et al. Immunomodulatory properties of mesenchymal stem cells derived from dental pulp and dental follicle are susceptible to activation by toll-like receptor agonists. Stem Cells Dev. 20, 695-708 (2011).
  22. Tsukamoto, Y., et al. Mineralized nodule formation by cultures of human dental pulp-derived fibroblasts. Arch. Oral Biol. 37, 1045-1055 (1992).
  23. About, I., et al. Human dentin production in vitro. Exp. Cell Res. 258, 33-41 (2000).
  24. Couble, M. L., et al. Odontoblast differentiation of human dental pulp cells in explant cultures. Calcif. Tissue Int. 66, 129-138 (2000).
  25. Onishi, T., Kinoshita, S., Shintani, S., Sobue, S., Ooshima, T. Stimulation of proliferation and differentiation of dog dental pulp cells in serum-free culture medium by insulin-like growth factor. Arch. Oral Biol. 44 (99), 361-371 (1999).
  26. Huang, G. T., Sonoyama, W., Chen, J., Park, S. H. In vitro characterization of human dental pulp cells: various isolation methods and culturing environments. Cell Tissue Res. 324, 225-236 (2006).
  27. Bakopoulou, A., et al. Assessment of the impact of two different isolation methods on the osteo/odontogenic differentiation potential of human dental stem cells derived from deciduous teeth. Calcif. Tissue Int. 88, 130-141 (2011).
  28. Curtis, K. M., et al. EF1alpha and RPL13a represent normalization genes suitable for RT-qPCR analysis of bone marrow derived mesenchymal stem cells. BMC Mol. Biol. 11, 61 (2010).
  29. Suchanek, J., et al. Dental pulp stem cells and their characterization. Biomed. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech Repub. 153, 31-35 (2009).
  30. d’Aquino, R., et al. Human postnatal dental pulp cells co-differentiate into osteoblasts and endotheliocytes: a pivotal synergy leading to adult bone tissue formation. Cell Death Differ. 14, 1162-1171 (2007).
  31. Atari, M., et al. Isolation of pluripotent stem cells from human third molar dental pulp. Histol. Histopathol. 26, 1057-1070 (2011).
check_url/fr/4372?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Karamzadeh, R., Eslaminejad, M. B., Aflatoonian, R. Isolation, Characterization and Comparative Differentiation of Human Dental Pulp Stem Cells Derived from Permanent Teeth by Using Two Different Methods. J. Vis. Exp. (69), e4372, doi:10.3791/4372 (2012).

View Video