Summary

نموذج كدمة شديدة اصابات الحبل الشوكي في الجرذان

Published: August 17, 2013
doi:

Summary

يوصف نموذج كدمة من إصابة الحبل الشوكي الشديدة. يتم وصف خطوات تفصيلية قبل العملية، المنطوق وبعد العمليات الجراحية للحصول على نموذج ثابت.

Abstract

وينبغي التحقيق في احتمال متعدية من العلاجات رواية في إصابة الحبل الشوكي الشديدة (SCI) نماذج كدمة. ووصف منهجية مفصلة للحصول على نموذج ثابت من اصابات النخاع الشوكي الشديدة. استخدام إطار المجسم والمسبار الكمبيوتر التي تسيطر عليها يسمح لخلق الإصابة استنساخه. انخفاض حرارة الجسم والتهاب المسالك البولية تشكل تحديات كبيرة في الفترة اللاحقة للعمليات الجراحية. رصد دقيق للحيوانات مع صحيفة تسجيل الوزن والتعبير المثانة يسمح للكشف المبكر عن مضاعفات ما بعد الجراحة. النتائج الفنية لهذا النموذج كدمة تعادل نماذج عانى من قطع. ويمكن استخدام نموذج كدمة لتقييم فعالية من كلا النهجين اعصاب وneuroregenerative.

Introduction

اختيار نموذج الإصابة المناسبة أمر بالغ الأهمية لتقييم ما قبل السريرية من العلاجات رواية لاصابات الحبل الشوكي (النخاع الشوكي). 1،2،13 في دراسة حديثة من الأطباء والعلماء في مجال رضح عصبي نموذج كدمة، في مقابل تنصيف أو نماذج عانى من قطع كامل ، والمقبولة عالميا لتكون وثيقة الصلة سريريا. ويستند هذا الرأي على 8 ملاحظة أن غالبية اصابات الحبل الشوكي في البشر هو contusive في الطبيعة. 10 بيولوجيا كدمة ويبدو أيضا أن يكون مختلفا عن تنصيف أو عانى من قطع النماذج. Iseda 11، وآخرون آل. مقارنة تأثير داخل النخاع chondroitinase ABC حقن على neuroregeneration بشكل منفصل في تنصيف ونماذج كدمة. 4 تجدد المحاور وحظ في الجسر العصبية في تنصيف ولكن ليس مجموعة اصابات النخاع الشوكي كدمة. وتنصيف أو نماذج عانى من قطع كامل أيضا تهيئة الظروف تعرف أنها موجودة في فقط مجموعة فرعية صغيرة جدا من CLالظروف inical. على سبيل المثال، قد استخدمت العديد من المحققين التدخلات القائمة على السقالة لزرع في تجويف آفة بعد تنصيف أو عانى من قطع كامل لتعزيز التجدد. 6 يصبح هذا النهج غير ذي صلة سريريا لخلق تجويف داخل الحبل الشوكي المصاب هو غير عملي وربما غير أخلاقية.

تقلب في الانتعاش وظيفية لا يزال يشكل تحديا كبيرا للنماذج كدمة. 5،12 هذا التغير يمكن التقليل من استخدام المسبار الكمبيوتر التي تسيطر عليها وتثبيت العمود الفقري قبل تأثير لتسليم قوة موحدة عبر حجم الحبل الشوكي وخاصة مسارات للسيارات يقع البطني . وتجدر الإشارة إلى أن اللدونة ومساهمة ضمانات من المحاور قيد الحياة هي الآلية الغالبة من الانتعاش بعد إصابة الحبل الشوكي. 1 الاختلافات لذلك، ولو كانت بسيطة في تقنية كدمة قد تسفر عن نتائج مختلفة إلى حد كبير. تحقيقا لهذه الغاية وضعنانموذج من إصابة الحبل الشوكي الشديدة التي ينتج عنها حجم كدمة متسقة والانتعاش وظيفية قابلة للمقارنة مع نماذج عانى من قطع. يمكن استخدام هذا النموذج للتحقيق في كل من العصبية واستراتيجيات neuroregeneration كدليل على مفهوم للفعالية العلاج.

Protocol

1. التحضير قبل اصابات الحبل الشوكي الأدوات الجراحية اللازمة لهذا الإجراء هي مشرط، بيك آب مع وبدون أسنان، المرقأة، الكامشات الاحتفاظ النفس، قراضة غيض غرامة، سائق إبرة، الغرز للامتصاص، والجلد مقطع تطبيقها. الإمدادات الجراحية الأخ?…

Representative Results

حجم الآفة لقد حصلنا على كميات كبيرة الآفة ومتسقة باتباع تقنية الموضحة أعلاه. باستخدام Luxol سريع الأزرق تلطيخ حجم الآفة متوسط ​​2.04 مم 3 (95٪ CI 1،9 حتي 2،18) (ن = 5 حيوانات) تم الحصول عليها. الشكل 2 يبين يعني حجم الآفة مع تلطيخ ?…

Discussion

وقد أظهرت العديد من العلاجات رواية مؤخرا الوعد في وقت مبكر في مجال البحوث اصابات النخاع الشوكي. 3 تقييم دقيق لهذه العلاجات هو أساسي في نموذج ذات الصلة سريريا من اصابات النخاع الشوكي لتحديد الاستراتيجيات مع أقصى قدر من إمكانات متعدية. وقد وضعت خطة للتصنيف مؤخرا ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

المؤلفون ممتنون للدكتور N. بانيك والدكتور D. ميتشل لتوجيهاتهم في تطوير هذا النموذج.

Materials

Instrument/Drugs Company Cat # Comments
Computer controlled impactor Leica or the Infinite Horizons (formerly OSU) impactor
Surgical instruments
Scissors Fine Science Tools Inc 14094-11 or 14060-09
Forceps Fine Science Tools Inc 11006-12 and 11027-12 or 11506-12
Hemostats Fine Science Tools Inc 13009-12
Retractors Fine Science Tools Inc 17011-10
Rongeurs Fine Science Tools Inc 16020-14
Needle driver Fine Science Tools Inc 12001-13
Stereotactic frame Leica or RWD Life Science Co. or TSE systems
Buprinorphine
Baytril Bayer
Ketamine

References

  1. Blesch, A., Tuszynski, M. H. Spinal cord injury: plasticity, regeneration and the challenge of translational drug development. Trends Neurosci. 32, 41-47 (2009).
  2. Dobkin, B. H. Curiosity and cure: translational research strategies for neural repair-mediated rehabilitation. Dev. Neurobiol. 67, 1133-1147 (2007).
  3. Fehlings, M. G., Cadotte, D. W., Fehlings, L. N. A series of systematic reviews on the treatment of acute spinal cord injury: a foundation for best medical practice. J. Neurotrauma. 28, 1329-1333 (2011).
  4. Iseda, T., Okuda, T., Kane-Goldsmith, N., et al. Single, high-dose intraspinal injection of chondroitinase reduces glycosaminoglycans in injured spinal cord and promotes corticospinal axonal regrowth after hemisection but not contusion. J. Neurotrauma. 25, 334-349 (2008).
  5. Khan, T., Havey, R. M., Sayers, S. T., et al. Animal models of spinal cord contusion injuries. Laboratory Animal Science. 49, 161-172 (1999).
  6. Kim, B. G., Kang, Y. M., Phi, J. H., et al. Implantation of polymer scaffolds seeded with neural stem cells in a canine spinal cord injury model. Cytotherapy. 12, 841-845 (2010).
  7. Kim, J. H., Tu, T. W., Bayly, P. V., et al. Impact speed does not determine severity of spinal cord injury in mice with fixed impact displacement. Journal of Neurotrauma. 26, 1395-1404 (2009).
  8. Kwon, B. K., Hillyer, J., Tetzlaff, W. Translational research in spinal cord injury: a survey of opinion from the SCI community. J. Neurotrauma. 27, 21-33 (2010).
  9. Kwon, B. K., Okon, E. B., Tsai, E., et al. A grading system to evaluate objectively the strength of pre-clinical data of acute neuroprotective therapies for clinical translation in spinal cord injury. J. Neurotrauma. 28, 1525-1543 (2011).
  10. Norenberg, M. D., Smith, J., Marcillo, A. The pathology of human spinal cord injury: defining the problems. J. Neurotrauma. 21, 429-440 (2004).
  11. Siegenthaler, M. M., Tu, M. K., Keirstead, H. S. The extent of myelin pathology differs following contusion and transection spinal cord injury. J. Neurotrauma. 24, 1631-1646 (2007).
  12. Talac, R., Friedman, J. A., Moore, M. J., et al. Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies. Biomaterials. 25, 1505-1510 (2004).
  13. Tator, C. H. Review of treatment trials in human spinal cord injury: issues, difficulties, and recommendations. Neurosurgery. 59, 957-982 (2006).

Play Video

Citer Cet Article
Krishna, V., Andrews, H., Jin, X., Yu, J., Varma, A., Wen, X., Kindy, M. A Contusion Model of Severe Spinal Cord Injury in Rats. J. Vis. Exp. (78), e50111, doi:10.3791/50111 (2013).

View Video