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Article de méthode

Identifier les motoneurones extracellulaire d'un Motor Pool musculaire dans

11.6K vues

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DOI :

10.3791/50189

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25 mars 2013

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Dans cet article

Résumé

Chez les animaux avec de grands neurones identifiés ( Par exemple, Mollusques), l'analyse des piscines moteur est fait en utilisant des techniques intracellulaires 1,2,3,4. Récemment, nous avons développé une technique pour stimuler et enregistrer extracellulaire des neurones individuels dans Aplysia californica 5. Nous allons maintenant décrire un protocole d'utilisation de cette technique pour identifier et caractériser les neurones moteurs au sein d'un parc de véhicules.

Résumé

Chez les animaux avec de grands neurones identifiés (par exemple les mollusques), l'analyse des piscines moteur est fait en utilisant des techniques intracellulaires 1,2,3,4. Récemment, nous avons développé une technique pour stimuler et enregistrer extracellulaire des neurones individuels dans Aplysia californica 5. Nous allons maintenant décrire un protocole d'utilisation de cette technique pour identifier et caractériser les neurones moteurs au sein d'un parc de véhicules.

Cette technique présente des avantages extra-cellulaire. Premièrement, les électrodes extracellulaires peuvent stimuler et enregistrer les neurones à travers la gaine 5, de sorte qu'il n'a pas besoin d'être enlevé. Ainsi, les neurones seront en meilleure santé dans les expériences extra-que dans les intracellulaires. Deuxièmement, si les ganglions sont tournées appropriée la fixation de la gaine, électrodes extracellulaires peuvent accéder à des neurones des deux côtés du ganglion, ce qui rend plus facile et plus efficace d'identifier les neurones multiples dans la même préparation. Troisièmement, extracellulairelar électrodes n'ont pas besoin de pénétrer dans les cellules, et peuvent donc être facilement déplacé d'avant en arrière entre les neurones, ce qui provoque moins de dégâts à eux. Ceci est particulièrement utile quand on essaie d'enregistrer plusieurs neurones au cours de la répétition des schémas moteurs qui ne peuvent persister pendant quelques minutes. Quatrièmement, les électrodes extracellulaires sont plus souples que celles intracellulaires lors des mouvements musculaires. Électrodes intracellulaires peuvent sortir et endommager les neurones pendant les contractions musculaires. En revanche, depuis électrodes extracellulaires sont légèrement pressés sur la gaine au-dessus de neurones, ils restent habituellement au-dessus du même neurone pendant les contractions musculaires, et peut donc être utilisé dans plusieurs préparations intactes.

Pour identifier les neurones moteurs pour un parc de véhicules (en particulier, le muscle chez l'aplysie I1/I3) en utilisant des électrodes extracellulaires, on peut utiliser des fonctionnalités qui ne nécessitent pas de mesures intracellulaires comme critères: la taille et l'emplacement soma, la projection axonale et l'innervation muscle 4, 6,7. Pour le parc de véhicules particulier utilisé pour illustrer la technique, nous avons enregistré des nerfs buccaux 2 et 3 pour mesurer projections axonales, et mesuré les forces de contraction du muscle I1/I3 pour déterminer le modèle de l'innervation musculaire pour les neurones moteurs individuels.

Nous démontrons le processus complet des premiers neurones moteurs identifier en utilisant l'innervation musculaire, puis la caractérisation de leur temps au cours de la motricité, la création d'une méthode simplifiée de diagnostic pour l'identification rapide. Le procédé plus simple et plus rapide de diagnostic est supérieure à la préparation plus intactes, par exemple dans la préparation de masse buccale suspendu 8 ou 9 in vivo. Ce procédé peut aussi être appliqué dans les piscines à moteur autres 10,11,12 chez l'aplysie ou dans des systèmes animaux autres 2,3,13,14.

Protocole

1. Préparation de la vaisselle d'enregistrement

  1. Au cours des expériences transducteur de force, les ganglions buccale, ganglion cérébral, et la masse buccale sont placés dans un plat rond en pyrex qui est spécialisé pour les études de la force.
  2. Pour induire ingestion motifs en forme dans les expériences, nous avons besoin d'appliquer le carbachol non hydrolysable agoniste cholinergique du ganglion cérébral 15. Pour éviter le contact direct de carbachol sur les noyaux vestibulaires et la masse buccale, chambres séparées sont nécessaires pour isoler le ganglion cérébral des ganglions buccale et la masse buccale (figure 1)....

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Résultats

Les figures 4 et 5 montrent des résultats typiques utilisés pour identifier deux I1/I3 neurones moteurs. Figure 4 montre les enregistrements soma d'un grand neurone moteur, B3, pendant modèles egestive-like et ingestion de type (4C chiffres, 4D). L'un pour-un des pics correspondant sur ​​le canal et le canal de soma ipsilatérale BN2 (figure 4E) montrent que la spécificité de B3 soma enregistrement a été maintenue pendant modèles.......

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Discussion

Chez les animaux avec de grands neurones identifiés, tels que les mollusques (par exemple, Lymnaea, Helix, et Aplysia), l'analyse des piscines moteur est généralement fait en utilisant un enregistrement intracellulaire 1,2,3,4. Dans ce protocole, nous décrivons un processus pour identifier de manière unique les neurones moteurs pour un parc automobile en utilisant une technique extracellulaire. Nous avons utilisé les mesures de force comme une illustration de ce processus. On pourrait au.......

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Déclarations de divulgation

Nous n'avons rien à déclarer.

Remerciements

Cette recherche a été financée par le NIH et la NSF subvention NS047073 subvention DMS1010434.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Nom Entreprise Numéro de catalogue Commentaires
De chlorure de sodium Fisher Scientific S671 Biologique, certifié
Le chlorure de potassium Fisher Scientific P217 Certifié ACS
Chlorure de magnésium hexahydraté Acros Organics 19753 99%
Sulfate de magnésium heptahydraté Fisher Scientific M63 Certifié ACS
Chlorure de calcium dihydraté Fisher Scientifique C79 Certifié ACS
Le glucose (dextrose) Sigma-Aldrich G7528 BioXtra
MOPS Buffer Acros Organics 17263 99%
Carbachol Acros Organics 10824 99%
L'hydroxyde de sodium Fisher Scientific SS255 Agréé
Acide chlorhydrique Fisher Scientific SA49 Agréé
Seul canon capillaire en verre Systèmes AM 6150
Flaming-Brown micropipette extracteur modèle P-80/PC Sutter Instruments Incandescence: FT345B
Émail fil revêtu d'acier inoxydable Californie Fine Wire 0.001D, revêtement h
Des ménages Silicone II Colle GE
Duro-Gel colle rapide Henkel corp.
AM amplificateur Systems Modèle 1700 Systèmes AM Les paramètres de filtre: 10-500 Hz pour le nerf I2 / muscle; 300-500 Hz pour tous les autres nerfs
Pulsemaster Multi-Channel Stimulator World Precision Instruments A300
Isolateur de stimulation World Precision Instruments A360
X AxoGraph AxoGraph scientifique Logiciel pour les enregistrements
Broches du connecteur Or Bulgin SA3148 / 1
Gold Connector Sockets Bulgin SA3149 / 1
Elastomère silicone Sylgard 184 Dow Corning
Boîte de 100 x 15 mm cristalliser Pyrex
Graisse à vide élevé Dow Corning
Conseils Pipet Fisher Scientific 21-375D
Pins minuties Outils Fine Science 26002-10
Pâte à modeler Sargent Art 22-4400
Chuchoter pompe à air Tetra 77849
Tuyau d'aquarium Eheim 7783 12/16 mm
Elite Diffuseur Hagen A962
Vannas Ciseaux Spring Outils Fine Science 15000-08
Dumont # 5 pinces fines Fin SciencOutils électroniques 11254-20
Kimwipes Kimberly-Clark 34155

Références

  1. McCrohan, C. R., Benjamin, P. R. Synaptic relationships of the cerebral giant cells with motoneurones in the feeding system of Lymnaea stagnalis. J. Exp. Biol. 85, 169-186 (1980).
  2. Benjamin, P. R., Rose, R. M. Central gen....

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Réimpressions et autorisations

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