Summary

“<em>枸橼酸rodentium</em>鼠标产品型号:研究感染性结肠炎的病原体和宿主的贡献

Published: February 19, 2013
doi:

Summary

枸橼酸rodentium感染提供了一个有价值的模型来研究肠道细菌感染以及宿主的免疫反应和结肠炎的小鼠。该协议概述了屏障的完整性测量,病原体负荷和病理损害,从而为深入鉴定病原体和宿主小鼠的感染性肠炎的贡献。

Abstract

该协议列出的步骤需要产生一个强大的感染性疾病和肠炎的模型,以及用来描述枸橼酸rodentium感染的小鼠的方法。C. rodentium是一种革兰氏染色阴性,小鼠特异性细菌性病原体,临床上重要的人类病原体肠致病性大肠杆菌是密切相关的大肠杆菌和肠出血性大肠杆菌大肠杆菌 。一旦感染C. rodentium,免疫小鼠患上温和和短暂的体重减轻和腹泻。组织学观察,肠隐窝伸长率,免疫细胞浸润,杯状细胞耗竭。实现间隙感染后3〜4周。肠上皮屏障的完整性,细菌量,以及组织损伤,感染后的不同时间点的测量,让易受感染的小鼠品系的特征。

致病机制s的细菌病原体定植于肠道他们的主机,以及具体的抵御这种感染的宿主反应,却知之甚少。因此,C. rodentium作为一个有价值的工具,以帮助我们了解这些过程模型肠道细菌感染。肠道细菌也被连接到的炎症性肠病(IBDs)。据推测,在肠黏膜免疫系统的异常暴露的肠道细菌基因易感个体适应不良的慢性炎症反应的IBD患者中发展。因此,感染性结肠炎模型的研究提供了重要C.确定潜在的致病性肠道细菌的宿主反应的潜力。 rodentium诱导的结肠炎就是这样一个难得的模式,让肠道细菌的宿主反应的分析,我们进一步了解鸡传染性法氏囊病发病的潜在机制;新的预防和治疗方法的发展至关重要。

Introduction

肠道细菌病原体感染引发胃肠道(GI)的炎症,以及肠道病理学与病理生理学,包括腹泻和肠上皮屏障功能障碍。细菌病原体的殖民他们的主机,以及具体的抵御这种感染的宿主反应,胃肠道的致病机制了解甚少,但最近的进步已经开始在肠道细菌感染的造型,以帮助我们了解这些过程。肠道细菌也被连接到的炎症性肠病(IBDs)。 IBDs克罗恩病(CD)和UC复杂疾病的病因不明的慢性肠道炎症和组织损伤,其特征。许多模型小鼠肠道炎症的存在,从在遗传修饰的菌株,如IL-10 – / – 小鼠的自发炎症的化合物,如葡聚糖硫酸钠(DSS)和d,化学挑战initrobenzene磺酸(DNBS)1。据推测,适应不良的慢性炎症反应在IBD患者在遗传易感个体发展后肠黏膜免疫系统的异常暴露的肠道细菌,因此感染性结肠炎模型的研究也提供了显着的潜力,确定潜在的致病主机肠道细菌的反应。 枸橼酸杆菌rodentium诱导的结肠炎是罕见的模式已感染性结肠炎,以及其特征在于1,3之一,允许对分析的宿主反应,以肠溶性的细菌和潜在的IBD发病机制的进一步理解,一个重要的步骤在开发新的预防和治疗方法。

C. rodentium是革兰氏阴性安装和谦虚(A / E),小鼠的特异性细菌性病原体是密切相关的人体重要病原体肠致病性大肠杆菌大肠杆菌 (EPEC),肠出血性大肠杆菌大肠杆菌 (EHEC)3-8。的家庭的A / E病原体密切附加到根尖盲肠和结肠上皮细胞的宿主细胞的膜,形成一种非侵入性的台座状结构的宿主细胞。口腔挑战C. rodentium 10 8 -10 9生物体产生一个强大的感染性结肠炎模型,其特征在于由结肠的隐窝,单核的免疫细胞浸润和杯状细胞耗竭3,4增生或伸长。初始站点的殖民统治,几个小时后,面临的挑战,是在盲肠修补程序,然后发展到远端结肠感染后2〜3天,3。在免疫功能正常的小鼠品系中,间隙实现的病原体感染后3〜4周1,3,4。然而,许多转基因的菌株, 基因缺失或基因敲除小鼠( – / – ),已被发现显示增加sed的感染导致夸张的损坏和/或慢性感染和炎症9-14的易感性。这在这些基因敲除株的感染性结肠炎模型,许多人缺乏与生俱来的信号蛋白,一直是不可或缺的分辨率的肠道感染和炎症的组成部分露出几个宿主蛋白。

Protocol

1。 枸橼酸rodentium接种物的制备和小鼠灌胃准备和高压灭菌卢里亚Bertani肉汤(LB)。 获得可行的C. LB琼脂平板上,用无菌接种环或移液器吸头rodentium从冷冻甘油股票和条纹上。孵育,37℃培养过夜。 ,接种3毫升无菌的LB肉汤猎鹰文化的LB平板上的菌落,用接种环或吸液管头管。应做的接种物的制备,使用无菌技术。 孵育C. rodentium文化有氧,在37°C在2…

Representative Results

在标准的感染实验,小鼠灌胃100μL过夜C.感染者约2.5×10 8 CFU通过rodentium文化。 与 C的C57BL / 6小鼠的感染rodentium结果,在温和和短暂的体重减轻和腹泻。虽然很少发生C57BL / 6小鼠,动物可能生病和需要euthanization。因此,鼠标应该减肥的程度和症状的困扰,如piloerect毛皮和驼背姿势进行监控,以确定不同菌株在何种程度上受到感染。 结果呈现?…

Discussion

枸橼酸rodentium感染传染病的小鼠结肠炎的研究提供了一个有价值的模型。这种独特的模式允许两个宿主反应,以及细菌的致病特性的表征。这种模式的成功使用该协议的细节中列出的步骤。

有几个关键的步骤,在此协议时,请记住诱导结肠炎和分析反应。首先,准备一个新鲜的过夜C. rodentium在LB肉汤接种感染小鼠的成功。由于需要的剂量为10 8 -10 9</s…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作是支持的补助金BAV的克罗恩病和结肠炎基金会和加拿大卫生研究院(CIHR)加拿大(CCFC)。 GB CIHR研究生奖学金的资助。 BAV是的儿童肠和肝脏疾病(儿童)基金会主席儿科IBD的研究和加拿大研究主席在儿科胃肠病学。

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Luria Broth ABM G247 Add 25 g of LB powder to 1L of water. Autoclave before using.
Square bottom plate with grid Fisher 08-757-11A
Falcon culture tube Sarstedt 62.515.006
Bulb tipped gastric gavage needle Fine Science Tools 18060-20
1 ml syringe BD Biosciences 309659
4 kDa FITC-dextran Sigma FD-4
Citric acid Sigma C7129
Sodium citrate Fisher S279-500
Dextrose Fisher D16.1
Acid citrate dextrose 20 mM ctiric acid, 110 mM sodium citrate, 5 mM dextrose
Black 96-well plate Fisher 07-200-762
Metal beads (5 mm) Qiagen 69989
10% formalin Fisher 5F93-4
5 ml vial DiaMed STK3205
Hematoxylin Fisher H345-23
Eosin Fisher E511-100
Xylene Fisher HC700-1GAL
Tween 20 Sigma P5927
Coplin staining jar VWR 47751-792
Sodium citrate buffer 10 mM sodium citrate, 0.05% Tween 20, pH 6.0
Pap pen Cedarlane Mu22
Goat serum Sigma G902-3
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher BP1600-100
Triton X-100 Sigma T8532
Sodium azide Sigma SZ002
Blocking buffer 2% goat serum, 1% BSA, 0.1% triton X-100, 0.05% Tween 20, 0.05% sodium azide, 0.01 M PBS, pH 7.2, mix & store at 4 °C.
Antibody dilution buffer 0.1% triton X-100, 0.1% BSA, 0.05% sodium azide, 0.04% EDTA
Blocking buffer & Antibody dilution buffer for tir Same recipes as above, but without addition of detergents (triton X-100 and tween 20)
Prolong Gold Antifade Reagent with DAPI Invitrogen P-36931
Coverslips Fisher 12.54SE
Benchtop incubation shaker Barnstead Lab Line Max Q4000
Fluorometer Perkin Elmer Victor2D
Refrigerated centrifuge Beckman Coulter Microfuge 22R
Steamer Black & Decker
Fluorescence microscope Zeiss Axio Image.Z1

References

  1. Nell, S., Seurbaum, S., Josenhans, C. The impact of microbiota on the pathogenesis of IBD: lessons from mouse infection models. Nature Reviews Microbiology. 8, 564-577 (2010).
  2. Cario, E. Toll-like Receptors in Inflammatory Bowel Diseases: A Decade Later. Inflammatory Bowel Diseases. 16 (9), 1583-1597 (2010).
  3. Eckmann, L. Animal Models of Inflammatory Bowel Disease. Annals New York Academy of Sciences. , 1027-38 (2006).
  4. Mundy, R., MacDonald, T. T., Dougan, G., Frankel, G., Wiles, S. Citrobacter rodentium of mice and man. Cellular Microbiology. 7, 1697-1706 (2005).
  5. Luperchio, S., Schauer, D. Molecular pathogenesis of Citrobacter rodentium and transmissible murine colonic hyperplasia. Microbes and Infection. 3 (4), 333-340 (2001).
  6. Bergstrom, K. S., Sham, H. P., Zarepour, M., Vallance, B. A. Innate host responses to enteric bacterial pathogens: a balancing act between resistance and tolerance. Cellular Microbiology. 14, 475-484 (2012).
  7. MacDonald, T. T., Frankel, G., Dougan, G., Goncalves, N. S., Simmons, C. Host defences to Citrobacter rodentium. International Journal of Medical Microbiology. 293, 87-93 (2003).
  8. Borenshtein, D., McBee, M. E., Schauer, D. B. Utility of the Citrobacter rodentium infection model in laboratory mice. Current Opinion in Gastroenterology. 24, 32-37 (2008).
  9. Gibson, D. L., Ma, C., Rosenberger, C. M., Bergstrom, K. S. B., Valdez, Y., Huang, J. T., Khan, M. A., Vallance, B. A. Toll-like receptor 2 plays a critical role in maintaining mucosal integrity during Citrobacter rodentium-induced colitis. Cellular Microbiology. 10, 388-403 (2008).
  10. Dennis, A., Kudo, T., et al. The p50 subunit of NF-κB is critical for in vivo clearance of the non-invasive enteric pathogen Citrobacter rodentium. Infection & Immunity. 76 (11), 4978-4988 (2008).
  11. Gibson, D. L., Ma, C., Bergstrom, K. S. B., Huang, J. T., Man, C., Vallance, B. A. MyD88 signalling plays a critical role in host defence by controlling pathogen burden and promoting epithelial cell homeostasis during Citrobacter rodentium-induced colitis. Cellular Microbiology. 10 (3), 618-631 (2008).
  12. Lebeis, S. L., Bommarius, B., Parkos, C. A., Sherman, M. A., Kalman, D. TLR signaling mediated by MyD88 is required for a protective innate immune response by neutrophils to Citrobacter rodentium. Journal of Immunology. 179 (1), 566-577 (2007).
  13. Bry, L., Brenner, M. B. Critical role of T cell dependent serum antibody, but not the gut-associated lymphoid tissue, for surviving acute mucosal infection with Citrobacter rodentium, an attaching and effacing pathogen. Journal of Immunology. 172 (1), 433-441 (2004).
  14. Simmons, C. P., Clare, S., et al. Central role for B lymphocytes and CD4+ T cells in immunity to infection by the attaching and effacing pathogen Citrobacter rodentium. Infection & Immunity. 71 (9), 5077-5086 (2003).
  15. Ahmed, I., Chandrakesan, P., Tawfik, O., Xia, L., Anant, S., Umar, S. Critical Roles of Notch and Wnt/β-Catenin Pathways in the Regulation of Hyperplasia and/or Colitis in Response to Bacterial Infection. Infection & Immunity. 80 (9), 3107-3121 (2012).
check_url/fr/50222?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bhinder, G., Sham, H. P., Chan, J. M., Morampudi, V., Jacobson, K., Vallance, B. A. The Citrobacter rodentium Mouse Model: Studying Pathogen and Host Contributions to Infectious Colitis. J. Vis. Exp. (72), e50222, doi:10.3791/50222 (2013).

View Video