Progrès continus en matière modalités d'imagerie non invasives comme l'imagerie par résonance magnétique (IRM) ont grandement amélioré notre capacité à étudier les processus physiologiques ou pathologiques dans les organismes vivants. IRM s'avère également être un outil précieux pour la capture des cellules transplantées in vivo. Les premières stratégies de marquage cellulaire pour utilisation d'agents de contraste IRM qui influencent les temps de relaxation MR (T1, T2, T2 *) et conduire à une amélioration (T1) ou l'épuisement (T2 *) du signal où les cellules marquées sont présentes. T2 agents d'amélioration * tels que les agents ultrapetites d'oxyde de fer (USPIO) ont été utilisés pour étudier la migration cellulaire et certains ont également été approuvé par la FDA pour une application clinique. Un inconvénient de T2 * agents est la difficulté de distinguer l'extinction du signal créé par les cellules marquées d'autres artefacts tels que des caillots de sang, des saignements ou des micro-bulles d'air. Dans cet article, nous décrivons une nouvelle technique pour le suivi in vivo des cellules quisont basées sur le marquage des cellules avec du fluor (19 F)-particules riches. Ces particules sont préparées par émulsification d'hydrocarbures perfluorés (PFC) et de composés ensuite utilisé pour marquer les cellules, qui peuvent ensuite être visualisées par 19 F IRM. Les avantages importants de PFC pour le suivi des cellules in vivo comprennent (i) l'absence de carbone lié à 19 F in vivo, ce qui donne alors des images sans fond et complète de cellules selectivityand (ii) la possibilité de quantifier le signal de la cellule de 19 F spectroscopie MR .