Summary

<em> 체외</em인간 대식 세포의 분화와 양극화의 이질성을 연구> 모델

Published: June 12, 2013
doi:

Summary

단핵구 유래 대 식세포는 타고난 면역 시스템의 중요한 세포입니다. 여기, 우리는 사용하기 쉬운 설명<em> 체외에서</em이 세포를 생성하는> 모델. 기울기 원심 분리, 부정적인 비드 격리 및 특정 세포 배양 조건 사용하여 단핵구 유래 대 식세포는 표현형 및 기능 연구에 생성 할 수 있습니다.

Abstract

단핵구 유래 대 식세포는 타고난 면역 시스템의 중요한 세포 유형을 나타냅니다. 대식 세포 생물학을 공부 마우스 모델 생쥐와 인간 단핵구 유래 대 식세포 사이의 표현형과 기능의 차이에서 고통. 그러므로, 우리는 여기에 인간의 기본 대식 세포를 생성하고 공부하는 체외 모델을 설명합니다. 간단히, 팔뚝 정맥에서 도출 말초 혈액의 밀도 기울기 원심 분리 한 후, 단핵구는 부정적인 자기 비드 분리하여 말초 혈액 단핵 세포에서 격리됩니다. 이 단핵구는 다음 대식 세포의 분화 또는 편광의 다른 유형을 유도하기 위해 특정 조건 하에서 육일 동안 배양한다. 모델은 사용하기 쉽고 마우스와 인간 사이의 종 별 차이로 인한 문제를 우회. 또한, 그것은 불후의 세포 라인의 사용을보다 생체 조건에 가깝다. 결론적으로, 여기에 설명 된 모델은 macrophag 연구에 적합하다전자 생물학, 질병 메커니즘과 새로운 치료 표적을 식별합니다. 비록 완전히 사후 얻은 동물이나 인간의 조직 실험을 교체하지, 여기에 설명 된 모델은 질병의 메커니즘과 다양한 인간의 질병에 매우 관련이있을 수 치료 표적의 식별 및 유효성 검사를 할 수 있습니다.

Introduction

단핵구 유래 대 식세포는 타고난 면역 시스템의 중요한 세포 구성 요소를 나타내는 많은 급성 또는 만성 염증 과정 1에 기여한다. 대식 세포는 동맥 경화증이나 암이 같은 여러 염증성 질환에 중요한 역할을한다. 대식 세포 가소성의 높은 수준을 보여주고 지역 micromilieu 3에 따라 서로 다른 표현형을 가정 할 수 있습니다. 따라서, 대식 세포의 분화와 이질성을 연구하는 많은 질병의 병태 생리에 대한 지식을 향상을 위해 필수적이며, 새로운 치료 표적과 새로운 치료법 개발의 식별을 허용 할 수 있습니다.

많은 경우에, 쥐 모델은 특정 질병의 병태 생리를 조사하는 데 사용됩니다. 그러나 마우스 모델을 사용하여 대식 세포 생물학을 공부하는 것은 몇 가지 단점이 수반된다 : (1) perip에서 백혈구 집합 숫자의 비율 (즉, 단핵구와 과립구)쥐 또는 인간의 heral 피가 상당히 쥐와 인간의 병태 생리에서 단핵 세포의 서로 다른 역할을 제안 다릅니다. (2) 건강과 질병 4시 그 기능에 상당한 차이를 제안 쥐와 인간의 말초 혈액 단핵 세포 사이의 유전자 발현에 상당한 차이가 있습니다. (3) 인간의 상황에 마우스 모델에서 연구 결과의 전송은 다소 어렵게, 인간의 골수 세포에서 존재하지 않는 쥐 단핵구와 대식 세포 (F4/80, LYC, 등.)를 식별하는 데 사용되는 마커의 번호입니다.

따라서, 인간의 질병에있는 대식 세포의 분화와 이질성에 대한 우리의 이해를 높이기 위해, 우리는 인간 대 식세포와 협력 모델을 사용하도록해야합니다. 그러므로, 우리는 여기에서 사용하기 쉬운 다른 대식 세포 PO의 결과 다양한 조건 하에서 체외에서 인간의 단핵구 유래 대 식세포의 연구를 할 수 있습니다 인간의 기본 대식 세포 생성의 모델을 설명larization 유형. 여러 연구에서, 우리는 대식 세포 생물학, 5-7 인간의 죽상 경화증에 대한 잠재적 인 관련성을 분석하는 단핵구 파생 된 인간의 기본 대식 세포의 체외 모델을 사용했습니다.

비록 완전히 사후 얻은 동물이나 인간의 조직 실험을 교체하지, 여기에 설명 된 모델은 질병의 메커니즘과 다양한 인간의 질병에 매우 관련이있을 수 치료 표적의 식별 및 유효성 검사를 할 수 있습니다.

Protocol

1. 프로토콜 다음과 같이 버퍼를 준비 PBMC 분리를위한 버퍼를 준비 "버퍼를 씻으"PBS에서 = 0.02 % EDTA (사용 0.5 M EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)).에게 단핵 세포 분리를위한 버퍼를 준비 "MACS 세척 버퍼"= 0.5 % BSA (250 MG) + 2 mM의 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) (200 μL) + PBS (50 ML). 드가 버퍼입니다. "FACS 버퍼"PBS의 = 10 % FCS와 "고정 버퍼"P…

Representative Results

위에서 설명한 프로토콜을 사용하여, 우리는 정기적으로 25.1 X 10 6 ± 2.2 × 10 6 monocytes/100 ML의 피를 (26 독립적 인 실험에서 평균 ± 표준 오차, 그림 1A) 구하십시오. CD14에 대한 유세포 염색에 의해 결정 단핵구 순도는 정기적으로 95 % 이상 (97.1 ± 0.4 %, 3 독립적 인 실험 그림 1B에서 평균 ± 표준 오차)입니다. 판 블루 염색에 의해 결정 갓 고립 된 단핵구 세포 ?…

Discussion

단핵구 유래 대 식세포는 타고난 면역 체계의 주요 세포 유형을 나타냅니다. 그들은 죽상 경화증이나 암 2을 (를) 포함하여 많은 염증성 질환에 중요한 역할을한다. 따라서, 대식 세포 생물학을 공부하는 많은 질병의 병태 생리에 대한 우리의 지식을 높이기 위해 필수적이며, 새로운 치료법의 개발을 허용 할 수 있습니다.

많은 연구는 마우스 모델의 과발현으로 적용?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 우수한 기술 지원 나딘의 Wambsganss 감사합니다. 이 작품은 CAG에 혁신 기금 FRONTIER (하이델베르크 대학)에서 교부금에 의해 도이치 Forschungsgemeinschaft (GL599/1-1)에서 부여 의해 부분적으로 지원되었다

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
50 ml centrifuge tube (sterile) Fisher 055398  
D-PBS (1X), liquid (no calcium or magnesium) Invitrogen 14190-250  
EDTA Sigma T9285  
BSA Sigma A-8806  
FCS Invitrogen    
EasySep Human Monocyte Enrichment Kit StemCell Technologies 19059  
EasySep Magnet StemCell Technologies 18000  
FACS tubes Fisher 352008  
Macrophage-SFM (1X) Invitrogen 12065-074  
Penicillin-streptomycin Sigma P-4458  
Nutridoma-SP Roche 11011375001  
human M-CSF 10 μg Peprotech 300-25  
Cell Culture Plates 6-well Fisher 07-200-80  

References

  1. Gordon, S., Taylor, P. R. Monocyte and macrophage heterogeneity. Nat. Rev. Immunol. 5, 953-964 (2005).
  2. Gordon, S., Mantovani, A. Diversity and plasticity of mononuclear phagocytes. European Journal of Immunology. 41, 2470-2472 (2011).
  3. Martinez, F. O., Sica, A., Mantovani, A., Locati, M. Macrophage activation and polarization. Front. Biosci. 13, 453-461 (2008).
  4. Ingersoll, M. A., et al. Comparison of gene expression profiles between human and mouse monocyte subsets. Blood. 115, 10-19 (2010).
  5. Gleissner, C. A., Sanders, J. M., Nadler, J., Ley, K. Upregulation of aldose reductase during foam cell formation as possible link among diabetes, hyperlipidemia, and atherosclerosis. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 28, 1137-1143 (2008).
  6. Gleissner, C. A., et al. CXCL4 downregulates the atheroprotective hemoglobin receptor CD163 in human macrophages. Circ. Res. , (2009).
  7. Gleissner, C. A., Shaked, I., Little, K. M., Ley, K. CXC chemokine ligand 4 induces a unique transcriptome in monocyte-derived macrophages. J. Immunol. 184, 4810-4818 (2010).
  8. Martinez, F. O., Gordon, S., Locati, M., Mantovani, A. Transcriptional profiling of the human monocyte-to-macrophage differentiation and polarization: New molecules and patterns of gene expression. J. Immunol. 177, 7303-7311 (2006).
  9. Verreck, F. A. W., et al. Human il-23-producing type 1 macrophages promote but il-10-producing type 2 macrophages subvert immunity to (myco)bacteria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 4560-4565 (2004).
  10. Rey-Giraud, F., Hafner, M., Ries, C. H. In vitro generation of monocyte-derived macrophages under serum-free conditions improves their tumor promoting functions. PLoS One. 7, e42656 (2012).
  11. Boyle, J. J., et al. Coronary intraplaque hemorrhage evokes a novel atheroprotective macrophage phenotype. American Journal of Pathology. 174, 1097-1108 (2009).
  12. Cho, H. J., et al. Induction of dendritic cell-like phenotype in macrophages during foam cell formation. Physiol Genomics. 29, 149-160 (2007).
  13. Vogt, G., Nathan, C. In vitro differentiation of human macrophages with enhanced antimycobacterial activity. The Journal of Clinical Investigation. 121, 3889-3901 (2011).
  14. Mikita, T., Porter, G., Lawn, R. M., Shiffman, D. Oxidized low density lipoprotein exposure alters the transcriptional response of macrophages to inflammatory stimulus. Journal of Biological Chemistry. 276, 45729-45739 (2001).
  15. Qin, Z. Y. The use of THP-1 cells as a model for mimicking the function and regulation of monocytes and macrophages in the vasculature. Atherosclerosis. 221, 2-11 (2012).
  16. Daigneault, M., Preston, J. A., Marriott, H. M., Whyte, M. K. B., Dockrell, D. H. The identification of markers of macrophage differentiation in pma-stimulated THP-1 cells and monocyte-derived macrophages. PLoS One. 5, e8668 (2010).
  17. Wahl, L. M., Wahl, S. M., Smythies, L. E., Smith, P. D. Isolation of human monocyte populations. Current Protocols in Immunology. , (2001).
  18. Waldo, S. W., et al. Heterogeneity of human macrophages in culture and in atherosclerotic plaques. Am. J. Pathol. 172, 1112-1126 (2008).
  19. Martín-Fuentes, P., et al. Individual variation of scavenger receptor expression in human macrophages with oxidized low-density lipoprotein is associated with a differential inflammatory response. The Journal of Immunology. 179, 3242-3248 (2007).
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Citer Cet Article
Erbel, C., Rupp, G., Helmes, C. M., Tyka, M., Linden, F., Doesch, A. O., Katus, H. A., Gleissner, C. A. An In vitro Model to Study Heterogeneity of Human Macrophage Differentiation and Polarization. J. Vis. Exp. (76), e50332, doi:10.3791/50332 (2013).

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