Summary

Microscopía correlativa para el análisis estructural en 3D de Interacciones Dinámicas

Published: June 24, 2013
doi:

Summary

Se describe un método de microscopía correlativa que combina alta velocidad de microscopía de luz fluorescente de células vivas 3D y la crio-tomografía electrónica de alta resolución. Se demuestra la capacidad del método correlativo por imágenes dinámicas, pequeñas partículas de VIH-1 que interactúan con las células HeLa de acogida.

Abstract

Cryo-tomografía electrónica (cryoET) permite la visualización 3D de las estructuras celulares con resolución molecular en un estado cercano al fisiológico 1. Sin embargo, la visualización directa de los complejos virales individuales en su ambiente celular del huésped con cryoET 2 es un reto, debido a la naturaleza poco frecuente y dinámica de la entrada viral, en particular en el caso de VIH-1. Mientras time-lapse de imágenes de células vivas ha dado una gran cantidad de información sobre muchos aspectos del ciclo de vida del VIH-1 3-7, la solución ofrecida por microscopia de células vivas es limitada (~ 200 nm). Nuestro trabajo tuvo como objetivo el desarrollo de un método de correlación que permite la visualización directa de los eventos tempranos de la infección por VIH-1 mediante la combinación de células vivas microscopía de luz fluorescente, la crio-microscopía fluorescente y cryoET. De esta manera, las señales de células en vivo y crio-fluorescente se pueden utilizar para guiar con precisión la toma de muestras en cryoET. Por otra parte, la información estructural obtenida de cryoET puede be complementado con los datos funcionales dinámicas adquirida a través de imágenes de células vivas de fluorescente diana marcada.

En este artículo de vídeo, ofrecemos métodos y protocolos detallados para la investigación estructural de VIH-1 y las interacciones de la célula huésped utilizando correlativa de imágenes de células vivas 3D de alta velocidad y alta resolución cryoET análisis estructural. Células HeLa infectadas con partículas de VIH-1 se caracterizan por primera vez por microscopía confocal de células vivas, y la región que contiene la misma partícula viral se analizaron a continuación por crio-tomografía de electrones para los detalles estructurales 3D. La correlación entre dos conjuntos de datos de imágenes, proyección de imagen óptica y electrónica de imágenes, se logró mediante una etapa microscopía óptica crio-fluorescencia de fabricación casera. El enfoque detallado aquí será de gran valor, no sólo para el estudio de las interacciones de células virus-huésped, sino también para aplicaciones más amplias en la biología celular, tales como señalización, tráfico de receptor de membrana celular, y muchos otros procesos celulares dinámicos. </ P>

Introduction

Cryo-tomografía de electrones (cryoET) es una técnica de imagen de gran alcance que permite la visualización en tres dimensiones (3D) de las células y los tejidos y proporciona información detallada sobre la organización de los orgánulos nativas y estructuras celulares en resolución molecular en un primer estado fisiológico a 1. Sin embargo, la inherentemente bajo contraste de muestra congelada sin teñir-hidratado, combinada con su sensibilidad a la radiación, hace que sea difícil la localización de áreas de interés dentro de una célula y, posteriormente, la realización de la serie de inclinación con éxito sin dañar el área de destino. Con el fin de superar estos problemas, un enfoque correlativo que combina microscopía de luz y de electrones es necesario. Características específicas de relieve por marcaje fluorescente se identifican y se encuentran por microscopía de luz de fluorescencia, y a continuación, sus coordenadas se transfieren al microscopio electrónico para la adquisición de los datos estructurales 3D de alta resolución. Este método correlativo ayuda a localizar el objetivo de unreas de interés que deben abordarse. Debido a la limitación sobre el espesor de la muestra con cryoEM (<300 nm), actualmente sólo las regiones periféricas de la célula son adecuados para el análisis estructural 3D por CryoET. Una mayor reducción del espesor de las muestras congeladas, hidratadas por vítreo seccionar 8 o crio-centrado del haz de iones (FIB) de molienda 9 ampliaría la capacidad de proyección de imagen correlativa.

Anteriormente, los métodos correlativos se utilizaron principalmente para facilitar la adquisición de datos cryoET para las grandes y estática estructuras 10-13. En estos estudios, crio-etapas se han aplicado a aceptar rejillas cryoEM y cabe en cualquier un microscopio vertical o un microscopio invertido 10,11,14. Aunque las redes de conmutación parece bastante sencillo en sus diseños, hay adicional transferencia de pasos implicados para la red EM, el aumento de la probabilidad de que la red puede ser deformada, dañada y contaminada. Recientemente hemos demostrado un avance técnico enmicroscopía correlativa que nos permite visualizar directamente los eventos dinámicos que son por naturaleza difíciles de capturar, como el VIH-1 y las interacciones de células huésped en las primeras etapas de la infección 15. Esto lo logramos a través del diseño e implementación de una plataforma de muestra crio-microscopía de luz que se adapta un sistema de cartucho para minimizar el daño espécimen debido a la manipulación red, facilitando así la correlación. Nuestro diseño incluye un soporte del cartucho de muestra integrada, que permite tanto la crio-microscopía de luz y electrónica criogénica a realizar, de forma secuencial, en el mismo soporte de la muestra, sin transferencia de la muestra, lo que agiliza el proceso correlativo. Además, también implementado un procedimiento de correlación precisa y fiable el uso de perlas de látex fluorescentes como marcadores fiduciales.

Protocol

1. Cultivo de células HeLa en carbono con recubrimiento de oro EM Buscador Grids Descarga el resplandor del lado de carbono de un R2 de malla 200/2 Quantifoil oro EM buscador de la red de menos de 25 mA durante 25 s. Cubra la rejilla EM con fibronectina, por flotar, carbono-hacia abajo, sobre una gota de 40 l 50 mg / ml solución de fibronectina, luego desinfectarla con luz UV durante 2 horas en una campana de cultivo de tejidos. Células HeLa placa en la red a una densidad de 2 x 10 <sup…

Representative Results

Para caracterizar el comportamiento dinámico de las partículas de virus, las células HeLa infectadas con el VIH-1 se obtuvieron imágenes de alta velocidad por microscopía confocal de células en vivo y los movimientos de partículas se analizaron mediante el rastreo de partículas 3D automatizado (Figura 1). Para evitar que el lapso de tiempo de varios minutos que se pueden producir entre la recolección de la última imagen de células vivas confocal y sumergirse de congelación (que puede ser lo …

Discussion

Hemos presentado un conjunto sencillo de protocolos para proporcionar un enfoque correlativo avanzada para analizar los procesos celulares dinámicos mediante time-lapse confocal de fluorescencia de células vivas seguido cryoET. Nuestro desarrollo metodológico para correlacionar imágenes de células vivas 3D con alta resolución cryoET es fundamental para investigar muchos problemas biológicos difíciles, tales como la visualización y partículas raras, dinámica (no estática, como se informó anteriormente) de di…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores desean agradecer a Travis Wheeler y el taller de máquinas en el Departamento de Biología Celular y Fisiología de la Universidad de Pittsburgh para la construcción de la etapa de la muestra crio-fluorescencia, Changlu Tao Cheng y Xu de la Universidad de Ciencia y Tecnología de China para la técnica asistencia, y el Dr. Teresa Brosenitsch para la lectura crítica del manuscrito. Este trabajo fue financiado por los Institutos Nacionales de Salud (GM082251 GM085043 y).

Materials

Reagents
DMEM 4.5 g/L Glucose w/ L-Glutamine Atlanta Biologicals, Inc. Lawrenceville, GA 12-604F  
Fibronectin Sigma, St. Louis, MO F1141-1MG HeLa cell culture on EM grids
Cell tracker Invitrogen Corporation, Carlsbad, CA C34552 Red CMTPX
Protein A gold conjugates Ted Pella, Inc., Redding, CA 15822-1 15 nm diameter
0.2 μm fluorescent microspheres Invitrogen Corporation, Carlsbad, CA F8811 Yellow-green fluorescent
Heat-inactivated fetal calf bovine serum Invitrogen Corporation, Carlsbad, CA 10082-139  
Penicillin-Streptomycin Invitrogen Corporation, Carlsbad, CA 15140-122  
Glass-bottom culture dish MatTek Corporation P35G-1.5-14-C  
Gold quantifoil finder EM grids Quantifoil Micro Tools, Jena, Germany R2/2 Au NH2 200 mesh  
PBS Invitrogen Corporation, Carlsbad, CA 70011-044  
Equipment
Glow-discharge device 100X EMS, Hatfield, PA    
Tecnai Polara G2 electron microscope with a Field Emission Gun FEI, Hillsboro, OR   300 keV
Vitrobot Mark III FEI, Hillsboro, OR    
Olympus IX 71 microscope Olympus America Inc., Center Valley, PA   LUCPlanFLN 40X/0.6 NA (2.7-4 mm working distance) objective lens
Nikon TiE microscope Nikon Instruments, Melville, NY   using a 60X/1.35 NA oil immersion objective lens
Sweptfield confocal microscope Prairie Technologies, Middleton, WI    
Tokai Hit live cell chamber Tokyo, Japan    
Cryo-fluorescence sample stage Home-made   Homebuilt by machine shop, see reference 15 for the design.

References

  1. Leis, A., Rockel, B., Andrees, L., Baumeister, W. Visualizing cells at the nanoscale. Trends in Biochemical Sciences. 34, 60-70 (2009).
  2. Maurer, U. E., Sodeik, B., Grunewald, K. Native 3D intermediates of membrane fusion in herpes simplex virus 1 entry. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 10559-10564 (2008).
  3. McDonald, D., et al. Visualization of the intracellular behavior of HIV in living cells. The Journal of Cell Biology. 159, 441-452 (2002).
  4. Arhel, N., et al. Quantitative four-dimensional tracking of cytoplasmic and nuclear HIV-1 complexes. Nature Methods. 3, 817-824 (2006).
  5. Gousset, K., et al. Real-time visualization of HIV-1 GAG trafficking in infected macrophages. PLoS Pathogens. 4, e1000015 (2008).
  6. Jouvenet, N., Bieniasz, P. D., Simon, S. M. Imaging the biogenesis of individual HIV-1 virions in live cells. Nature. 454, 236-240 (2008).
  7. Koch, P., et al. Visualizing fusion of pseudotyped HIV-1 particles in real time by live cell microscopy. Retrovirology. 6, 84 (2009).
  8. Zhang, P., et al. Direct visualization of receptor arrays in frozen-hydrated sections and plunge-frozen specimens of E. coli engineered to overproduce the chemotaxis receptor Tsr. Journal of Microscopy. 216, 76-83 (2004).
  9. Wang, K., Strunk, K., Zhao, G., Gray, J. L., Zhang, P. 3D structure determination of native mammalian cells using cryo-FIB and cryo-electron tomography. Journal of Structural Biology. 180, 318-326 (2012).
  10. Sartori, A., et al. Correlative microscopy: bridging the gap between fluorescence light microscopy and cryo-electron tomography. Journal of Structural Biology. 160, 135-145 (2007).
  11. Schwartz, C. L., Sarbash, V. I., Ataullakhanov, F. I., McIntosh, J. R., Nicastro, D. Cryo-fluorescence microscopy facilitates correlations between light and cryo-electron microscopy and reduces the rate of photobleaching. Journal of Microscopy. 227, 98-109 (2007).
  12. van Driel, L. F., Valentijn, J. A., Valentijn, K. M., Koning, R. I., Koster, A. J. Tools for correlative cryo-fluorescence microscopy and cryo-electron tomography applied to whole mitochondria in human endothelial cells. European Journal of Cell Biology. 88, 669-684 (2009).
  13. Rigort, A., et al. Micromachining tools and correlative approaches for cellular cryo-electron tomography. Journal of Structural Biology. 172, 169-179 (2010).
  14. Gruska, M., Medalia, O., Baumeister, W., Leis, A. Electron tomography of vitreous sections from cultured mammalian cells. Journal of Structural Biology. 161, 384-392 (2008).
  15. Jun, S., et al. Direct visualization of HIV-1 with correlative live-cell microscopy and cryo-electron tomography. Structure. 19, 1573-1581 (2011).
  16. Dubochet, J., et al. Cryo-electron microscopy of vitrified specimens. Quarterly Reviews of Biophysics. 21, 129-228 (1988).
  17. Kremer, J. R., Mastronarde, D. N., McIntosh, J. R. Computer visualization of three-dimensional image data using IMOD. Journal of Structural Biology. 116, 71-76 (1996).
  18. Whitfield, M. L., et al. Identification of genes periodically expressed in the human cell cycle and their expression in tumors. Molecular Biology of the Cell. 13, 1977-2000 (2002).
  19. Agronskaia, A. V., et al. Integrated fluorescence and transmission electron microscopy. Journal of Structural Biology. 164, 183-189 (2008).
  20. Marko, M., Hsieh, C., Schalek, R., Frank, J., Mannella, C. Focused-ion-beam thinning of frozen-hydrated biological specimens for cryo-electron microscopy. Nature Methods. 4, 215-217 (2007).
check_url/fr/50386?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Jun, S., Zhao, G., Ning, J., Gibson, G. A., Watkins, S. C., Zhang, P. Correlative Microscopy for 3D Structural Analysis of Dynamic Interactions. J. Vis. Exp. (76), e50386, doi:10.3791/50386 (2013).

View Video