Summary

Den Flybar: Forvaltning Alkohol til Flies

Published: May 18, 2014
doi:

Summary

Drosophila har vist sig som en markant model system til at dissekere de cellulære og molekylære fundament for adfærdsmæssige reaktioner på alkohol. Her præsenterer vi en protokol for indsamling af alkohol følsomhed data i en døgnrytmen sammenhæng, der nemt kan anvendes på andre eksperimenter og er velegnet til bachelor forskning.

Abstract

Bananfluer (Drosophila melanogaster) er en etableret model for både alkohol forskning og døgnrytmen biologi. For nylig viste vi, at døgnrytmen ur modulerer alkohol følsomhed, men ikke dannelsen af ​​tolerance. Her beskriver vi vores protokol i detaljer. Alkohol administreres til fluer ved hjælp af Flybar. I denne opsætning er mættet alkohol damp blandet med befugtet luft i sæt proportioner, og administreres til fluer i fire rør samtidigt. Fluer opdrættes under standardiserede betingelser for at minimere variation mellem replikater. Tre dage gamle fluer af forskellige genotyper eller behandlinger anvendes til forsøgene, fortrinsvis ved at matche fluer to forskellige tidspunkter (f.eks CT 5 og CT 17), hvilket gør direkte sammenligninger. Under eksperimentet er fluer eksponeret i 1 time til den forudbestemte procentdel af alkohol damp og antallet af fluer, der udviser tab af vridningsrefleks (Lorr) eller sedation tælles hver 5 min. De data kan analyseres ved hjælp af tre forskellige statistiske metoder. Den første er at bestemme det tidspunkt, hvor 50% af fluerne har mistet deres opretningsrefleksen og bruge en analyse af varians (ANOVA) for at afgøre, om der er væsentlige forskelle mellem tidspunkter. Den anden er at bestemme den procentvise fluer, der viser Lorr efter et bestemt antal minutter, efterfulgt af en ANOVA-analyse. Den sidste metode er at analysere hele tidsserier hjælp multivariat statistik. Protokollen kan også bruges til ikke-døgnrytmen eksperimenter eller sammenligninger mellem genotyper.

Introduction

Drosophila melanogaster demonstrere dobbeltfasede adfærdsmæssige reaktioner på alkohol 1, som er analoge til de menneskelige reaktioner på dette stof 2,3. Ved første eksponering for lave koncentrationer af alkohol, fluer udviser forøget bevægelsesaktivitet, erstattet af en manglende koordinering motor, tab af postural kontrol og oprettende reflekser (tab af stabilitetsrefleks: Lorr) og sedation (komplet mangel på motorisk aktivitet i svar til mekanisk stimulering) udsættelse for alkohol skrider 4-9. Den endogene døgnrytmen ur er en stærk modulator af alkohol følsomhed og toksicitet som observeret i mus 10,11, rotter 12, og mennesker 13.. Nylige fremskridt i Drosophila forskning har vist, at døgnrytmen ur modulerer akut alkohol følsomhed, men ikke alkohol tolerance 1. De kraftige genetiske metoder til rådighed i Drosophila gennem mutant undersøgelser og transgene manipulationer af rumligeog tidsmæssig genekspression giver et system, der tillader hurtige fremskridt med at identificere de underliggende cellulære og molekylære mekanismer for kompleks adfærd. Brugen af Drosophila som en undersøgende værktøj er tilladt materielle fremskridt i forståelsen af alkohol neurobiologi, som hurtigt kan oversættes til pattedyr 14-16. For at lette forståelsen af ​​de molekylære mekanismer gennem hvilke døgnrytmen ur modulerer alkohol følsomhed og til ensartet at måle adfærdsmæssige reaktioner på tværs af døgnrytmen tidspunkter, en alkohol administration protokol er egnet til anvendelse i svagt rødt lys er påkrævet. For Drosophila kan alkohol administreres gennem fødevarer tilskud til kronisk eksponering eller pålideligt gennem administration af alkohol i form af damp ved akutte eksponeringer. Her beskriver vi en alkohol administration protokol egnet til vurdering af døgnrytmen modulation af tab af vridningsrefleksen (Lorr) 1 samtsedation.

Fluer medføres med 12 timer: 12 timer LD cyklusser ved konstant temperatur og derefter overført til en kontrolleret enkel ordning for 2-5 dage afhængig af den eksperimentelle spørgsmål. Fluer udsættes for ethanoldamp i en indretning kendt som Flybar. I denne anordning er kontrollerede mængder af luft bobles gennem vand og alkohol; dampene blandes derefter og ledes ind i et hætteglas indkapsling fluer. Hver 5 min fluerne er scoret for det antal, der undlader at vise oprettende reflekser eller er blevet bedøvet. Lorr procentsatser for hvert tidspunkt beregnes og sammenlignes blandt døgnrytmen tidspunkter eller mellem stammer af fluer. Enkeltheden og pålideligheden af ​​alkohol levering vha. Flybar alkohol levering kombineret med adfærdsmæssige muligheder analyse giver en betydelig fordel for døgnrytmen eksperimenter udført under mørke forhold.

Protocol

1.. Montering af Flybar Grundlag og overblik: Systemet er designet til at administrere kontrollerede procentdele af alkohol damp til fluer. Bemærk: Figur 1 giver en skematisk oversigt over Flybar set-up som beskrevet nedenfor i tre faser (samling af luftstrømmen, set-up af alkohol og vandflasker, og montering af observation hætteglas). Kort sagt er en konstant luftstrøm delt i to fraktioner, der er bobles gennem alkohol og vand, henholdsvis blandet, og administreres til 4 …

Representative Results

Døgnrytmen Modulation af alkohol følsomhed ved hjælp af 50% Lorr som markør. Et repræsentativt eksempel, der viser døgnrytmen graduering i alkohol følsomhed i løbet af dagen er beskrevet i figur 2.. Lorr blev målt til seks tidspunkter i løbet af 2. dag i DD i Canton-S og 50% Lorr blev bestemt for hvert tidspunkt. Analyse viste en signifikant effekt af tidspunktet på dagen (ANOVA: F 5,45 = 7,39, p <0,001, N = 6-10 per tidspunkt). F…

Discussion

Omkostningerne ved alkoholmisbrug og alkoholisme for samfundet er enorme, både i form af menneskelige 29 og økonomiske omkostninger 30,31. Drosophila som model tilbyder en hurtig og alsidigt system til hurtigt at undersøge de adfærdsmæssige reaktioner i et stort antal personer, og som sådan har været flittigt brugt til både alkohol 5,7,32-34 og døgnrytmen forskning 35-37.

Her beskrev vi en enkel protokol til kontrolleret administr…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finansieringen af ​​denne forskning blev leveret af et program i Neuroscience Award fra Florida State University College of Medicine og støtte fra Institut for Biologisk Fakultet på FSU. Yderligere finansiering blev leveret af en Grant-in-Aid fra Alcohol Beverage Producentens Research Fund.

Materials

Alcohol 190 proof Various
Name of Material Company Catalog Number Comments
Aerator Local pet store We use Whisper 60
Silicone tubing 1/8” VWR 408060-0030
120° Y Connector VWR 82017-256
Quick disconnects VWR 46600-048
Plastic tube clamps Bell-art products 132250000 Either this or next
Miniature Air Regulator McMaster-Carr 8727K11 Either this or previous
Miniature Air Regulator Mounting Bracket McMaster-Carr 9891K66
Gilmont size 12 flow meter VWR 29895-242
Tool clips McMaster-Carr 1722A43 To hold flow meters
Vial VWR 89092-722
Rubber stopper with two holes VWR 59585-186 Fits in vials
5 mm Pyrex Glass tubes Trikinetics PGT5x65 Fits best in previous stopper.
Teflon tape Hardware store To achieve snug fit in stoppers if necessary
Rubber stopper with two holes VWR 59582-122 Fits our bottles
Disposable glass pipets VWR 53283-768 Cut to length and bend by heating
Very fine nylon netting VWR Various
15 watt bulbs Hardware store Overhead red light
Photographic red safe light filters Overhead red light
Mini Flashlights with red filters Mag-light

References

  1. Linde, K., Lyons, L. C. Circadian modulation of acute alcohol sensitivity but not acute tolerance in Drosophila. Chronobiol. Int. 28, 397-406 (2011).
  2. Kaun, K. R., Azanchi, R., Maung, Z., Hirsh, J., Heberlein, U. A Drosophila model for alcohol reward. Nat Neurosci. 14, 612-619 (2011).
  3. Shohat-Ophir, G., Kaun, K. R., Azanchi, R., Mohammed, H., Heberlein, U. Sexual deprivation increases ethanol intake in Drosophila. Science. 335, 1351-1355 (2012).
  4. Bellen, H. J. The fruit fly: A model organism to study the genetics of alcohol abuse and addiction. Cell. 93, 909-912 (1998).
  5. Guarnieri, D. J., Heberlein, U. Drosophila melanogaster, a genetic model system for alcohol research. International Review of Neurobiology. 54, 203-232 (2003).
  6. Scholz, H. Intoxicated fly brains: Neurons mediating ethanol-induced behaviors. J. Neurogenet. 23, 111-119 (2009).
  7. Wolf, F. W., Rodan, A. R., Tsai, L. T. Y., Heberlein, U. High-resolution analysis of ethanol-induced locomotor stimulation in Drosophila. J. Neurosci. 22, 11035-11044 (2002).
  8. Schumann, G., Spanagel, R., Mann, K. Candidate genes for alcohol dependence: Animal studies. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 27, 880-888 (2003).
  9. Singh, C. M., Heberlein, U. Genetic control of acute ethanol-induced behaviors in Drosophila. Alcohol Clin Exp Res. 24, 1127-1136 (2000).
  10. Perreau-Lenz, S., Zghoul, T., de Fonseca, F. R., Spanagel, R., Bilbao, A. Circadian regulation of central ethanol sensitivity by the mPer2 gene. Addiction Biology. 14, 253-259 (2009).
  11. Brager, A. J., Prosser, R. A., Glass, J. D. Circadian and acamprosate modulation of elevated ethanol drinking in mPer2 clock gene mutant mice. Chronobiol. Int. 28, 664-672 (2011).
  12. Sinclair, J. D., Geller, I. Ethanol consumption by rats under different lighting conditions. Science. 175, 1143-1144 (1972).
  13. Danel, T., Jeanson, R., Touitou, Y. Temporal pattern in consumption of the first drink of the day in alcohol-dependent persons. Chronobiol. Int. 20, 1093-1102 (2003).
  14. Kapfhamer, D., et al. Taok2 controls behavioral response to ethanol in mice. Genes, brain, and behavior. 12 (1), 87-97 (2012).
  15. Lasek, A. W., et al. An evolutionary conserved role for anaplastic lymphoma kinase in behavioral responses to ethanol. PLoS One. 6, 226-236 (2011).
  16. Lasek, A. W., Giorgetti, F., Berger, K. H., Tayor, S., Heberlein, U. Lmo genes regulate behavioral responses to ethanol in Drosophila melanogaster and the mouse. Alcohol Clin Exp Res. 35, 1600-1606 (2011).
  17. Lyons, L. C., Roman, G. Circadian modulation of short-term memory in Drosophila. Learning & Memory. 16, 19-27 (2009).
  18. Hamblen-Coyle, M. J., Wheeler, D. A., Rutila, J. E., Rosbash, M., Hall, J. C. Behavior of period-altered circadian-rhythm mutants of Drosophila in ligh-dark cycles (Diptera Drosophilidae). J. Insect Behav. 5, 417-446 (1992).
  19. Konopka, R. J., Pittendrigh, C., Orr, D. Reciprocal behavior associated with altered homeostasis and photosensitivity of Drosophila clock mutants. J. Neurogenet. 6, 1-10 (1989).
  20. Power, J. M., Ringo, J. M., Dowse, H. B. The effects of period mutations and light on the activity rhythms of Drosophila melanogaster. Journal of Biological Rhythms. 10, 267-280 (1995).
  21. Yoshii, T., et al. Temperature cycles drive Drosophila circadian oscillation in constant light that otherwise induces behavioural arrhythmicity. Eur. J. Neurosci. 22, 1176-1184 (2005).
  22. Berger, K. H., Heberlein, U., Moore, M. S. Rapid and chronic: two distinct forms of ethanol tolerance in Drosophila. Alcohol Clin Exp Res. 28, 1469-1480 (2004).
  23. Scholz, H., Ramond, J., Singh, C. M., Heberlein, U. Functional ethanol tolerance in Drosophila. Neuron. 28, 261-271 (2000).
  24. Kong, E. C., et al. Ethanol-regulated genes that contribute to ethanol sensitivity and rapid tolerance in Drosophila. Alcohol Clin Exp Res. 34, 302-316 (2010).
  25. Borycz, J., Borycz, J., Kubow, A., Lloyd, V., Meinertzhagen, I. Drosophila ABC transporter mutants white, brown and scarlet have altered contents and distribution of biogenic amines in the brain. J. Exp. Biol. 211, 3454-3466 (2008).
  26. Sitaraman, D., et al. Serotonin is necessary for place memory in Drosophila. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 5579-5584 (2008).
  27. Bainton, R. J., et al. Dopamine modulates acute responses to cocaine, nicotine and ethanol in Drosophila. Current Biology. 10, 187-194 (2000).
  28. Kong, E. C., et al. A pair of dopamine neurons target the D1-like dopamine receptor DopR in the central complex to promote ethanol-stimulated locomotion in Drosophila. Plos One. 5, (2010).
  29. Xu, J., Kochanek, K. D., Murphy, S. L., Tejada-Vera, B. . Deaths: Final data for 2007. , (2010).
  30. . The National Center on Addiction and Substance Abuse. Shoveling up II: The impact of substance abuse on federal, state and local budgets. , (2009).
  31. NIAAA, Estimated economic costs of alcohol abuse in the United States. , (1992).
  32. Devineni, A. V., Heberlein, U. Preferential ethanol consumption in Drosophila models features of addiction. Current Biology. 19, 2126-2132 (2009).
  33. Devineni, A. V., Heberlein, U. Addiction-like behavior in Drosophila. Communicative & Integrative Biology. 3, 357-359 (2010).
  34. Rodan, A. R., Rothenfluh, A. The genetics of behavioral alcohol responses in Drosophila. International Review of Neurobiology. 91, 25-51 (2010).
  35. Boothroyd, C. E., Young, M. W., Pfaff, D. W., Kieffer, B. Molecular and Biophysical Mechanisms of Arousal, Alertness, and Attention. Annals of the New York Academy of Sciences. 1129, 350-357 (2008).
  36. Nitabach, M. N., Taghert, P. H. Organization of the Drosophila circadian control circuit. Current Biology. 18, 84-93 (2008).
  37. Sheeba, V. The Drosophila melanogaster circadian pacemaker circuit. J. Genet. 87, 485-493 (2008).
  38. Cohan, F. M., Graf, J. -. D. Latitudinal cline in Drosophila melanogaster for knockdown resistance to ethanol fumes and for rates of response to selection for further resistance. Evolution. , 278-293 (1985).
  39. Moore, M. S., et al. Ethanol intoxication in Drosophila: Genetic and pharmacological evidence for regulation by the cAMP signaling pathway. Cell. 93, 997-1007 (1998).
  40. Berger, K. H., et al. Ethanol sensitivity and tolerance in long-term memory mutants of Drosophila melanogaster. Alcohol Clin Exp Res. 32, 895-908 (2008).
  41. Pohl, J. B., et al. Circadian Genes Differentially Affect Tolerance to Ethanol. in Drosophila. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. , (2013).
  42. Bhandari, P., Kendler, K. S., Bettinger, J. C., Davies, A. G., Grotewiel, M. An assay for evoked locomotor behavior in Drosophila reveals a role for integrins in ethanol sensitivity and rapid ethanol tolerance. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 33, 1794-1805 (2009).
  43. Rothenfluh, A., et al. Distinct behavioral responses to ethanol are regulated by alternate RhoGAP18B isoforms. Cell. 127, (1016).
check_url/fr/50442?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
van der Linde, K., Fumagalli, E., Roman, G., Lyons, L. C. The FlyBar: Administering Alcohol to Flies. J. Vis. Exp. (87), e50442, doi:10.3791/50442 (2014).

View Video