Summary

Efficiënte Agroinfiltration van planten voor High-level Tijdelijke expressie van recombinante eiwitten

Published: July 23, 2013
doi:

Summary

Planten bieden een nieuw systeem voor de productie van farmaceutische eiwitten op commerciële schaal die is beter schaalbaar, kostenefficiënte en veilige dan de huidige expressie paradigma. In deze studie, rapporteren we een eenvoudig en handig, toch schaalbare aanpak van target-gen-bevattende introduceren<em> Agrobacterium tumefaciens</em> In planten voor eiwithoudende transiënte expressie.

Abstract

Zoogdiercelculturen is het belangrijkste platform voor de commerciële productie van humane vaccins en therapeutische eiwitten. Het kan echter niet voldoen aan de toenemende wereldwijde vraag naar geneesmiddelen vanwege de beperkte schaalbaarheid en hoge kosten. Planten hebben aangetoond dat een van de meest veelbelovende alternatieve farmaceutische productieplatforms die robuust, schaalbaar, goedkoop en veilig. De recente ontwikkeling van virus-gebaseerde vectoren is toegestaan ​​snelle en hoog-niveau transiënte expressie van recombinant eiwitten in planten. Verder optimaliseren van de bruikbaarheid van het tijdelijke expressiesysteem, demonstreren we een eenvoudig, efficiënt en schaalbaar methodologie om target-gen dat Agrobacterium introduceren in plantenweefsel in deze studie. Onze resultaten geven aan dat zowel agroinfiltration spuit en vacuüm methoden hebben geleid tot de efficiënte introductie van Agrobacterium in bladeren en levenskrachtige twee fluorescerende eiwitten, GFP en DsRed. VoortsWe tonen de unieke voordelen van beide methoden. Spuit infiltratie is eenvoudig en dure apparatuur hoeft niet. Ook kan de flexibiliteit om ofwel infiltreren gehele verlaten met een doelgen, of genen van meerdere doelen voeren op een blad. Zo kan het worden gebruikt voor laboratoriumonderzoek expressie van recombinante eiwitten en voor verschillende eiwitten of vectoren waarin voor yield of expressie kinetiek. De eenvoud van de spuit infiltratie suggereert ook haar nut in de middelbare school en universiteit onderwijs voor het vak van de biotechnologie. Daarentegen, vacuüm infiltratie meer robuust en opgeschaald voor commerciële vervaardiging van farmaceutische eiwitten. Het biedt ook het voordeel van het kunnen plantensoorten die niet vatbaar is voor spuit infiltratie zoals sla en Arabidopsis zijn agroinfiltrate. Kortom, de combinatie van spuit en vacuüm agroinfiltration biedt onderzoekers en docenten een eenvoudige, efficiënte en robuustemethodologie voor transiënte eiwitexpressie. Het zal veel gemakkelijker de ontwikkeling van farmaceutische eiwitten en bevorderen van wetenschappelijk onderwijs.

Introduction

Sinds 1970 zijn planten onderzocht als alternatieven voor zoogdieren, insecten en bacteriële celculturen voor de commerciële productie van recombinant proteïnen en therapeutische eiwitten 1. Plant-gebaseerde systemen voor de expressie van biofarmaceutische producten hebben aangetoond belofte in de afgelopen jaren een aantal nieuwe behandelingen voor ziekten, zoals de ziekte van Gaucher 2, en aviaire influenza H5N1 3, succesvol zijn gebleken in klinische onderzoeken. De ontwikkeling van competente mechanismen voor recombinante eiwitexpressie in planten in de decennia aangezien deze eerste experimenten heeft het potentieel voor plantaardige systemen voor het huidige paradigma van eiwitproductie aanpassen voor drie primaire redenen. Ten eerste is er een opmerkelijke afname in kosten bij zoogdieren, insecten en bacteriële bioreactoren vereisen aanzienlijke opstartkosten, duur groeimedia en gecompliceerde processen voor stroomafwaartse zuivering 4. De oprichting van stabiele transgene plantlijnen laat hen ook om de schaalbaarheid van andere expressie systemen overtreffen als eiwit expressie planten kunnen worden geteeld en geoogst op een agrarische schaal 5. Ten tweede, plantaardige expressiesystemen het risico op het overdragen van een mens of dier pathogeen het eiwit tot expressie gastheer voor mensen te verminderen, waaruit superioriteit openbare veiligheid 6. Tenslotte planten gebruik van een eukaryoot endomembranesysteem dat vergelijkbaar zoogdiercellen, waardoor goede post-translationele modificatie van eiwitten zoals glycosylering en de montage van meerdere-subeenheideiwitten 7. Dit vermogen geeft plantaardige systemen voordat deze basis prokaryotische systemen, zoals bacteriën, aangezien een groter aantal farmaceutische recombinante eiwitten, waaronder monoklonale antilichamen (mAbs) hebben een ingewikkeldere structuur en vereisen uitgebreide posttranslationele modificaties of assembly 8.

Er zijn twee belangrijke passendpijn tot de uiting van recombinante eiwitten in planten. De eerste is de ontwikkeling van een transgene lijn stabiel, waarbij DNA dat codeert voor het doeleiwit wordt gekloneerd in een expressie cassette en ingevoerd om de nucleaire en chloroplastgenomen bedoeld. Daarbij, het vreemde DNA wordt erfelijk door opvolgende generaties en zorgt voor enorm verbeterde schaalbaarheid, veel verder dan die van andere systemen meningsuiting 1. Introductie van exogeen DNA aan het nucleaire genoom wordt gewoonlijk bereikt door Agrobacterium tumefaciens infectie van plantenweefsel of, minder vaak, door microprojectielbombardement van het weefsel 9. Plantenhormonen worden vervolgens gebruikt om differentiatie en groei van transgene plantenweefsel zoals wortels en bladeren induceren. Transformatie van de chloroplast genoom kan niet worden bereikt met A. tumefaciens, maar vertrouwt volledig op goud of wolfraam deeltjes bekleed met DNA afgevuurd ballistisch in plantencellen. De tweede methode van het uiten van recombinatient in planten is door tijdelijke expressie 10. In dit scenario worden virus afgeleide vectoren herbergen het gen van belang geleverd via A. tumefaciens tot volledig ontwikkelde planten door middel van een proces genaamd agroinfiltration. In plaats van integratie in het plantengenoom, wordt de geleverde genconstruct dan beginnen direct de tijdelijke productie van het gewenste eiwit, die kunnen worden geoogst en geïsoleerd na een korte incubatieperiode. Transiënte genexpressie biedt het voordeel van een grotere totale eiwit accumulatie en een verbeterde tijd eiwitproductie, zoals planten direct ongeveer 1-2 weken na oogsten agroinfiltration 11 zal zijn. Dit is aanzienlijk sneller dan de processen van productie, selectie, en de bevestiging van stabiele transgene plant lijnen, die enkele maanden kan duren tot een jaar. Dit is echter ook de beperking van het tijdelijke expressiesysteem, omdat het niet zal opleveren genetisch stabiele plantaardige lines die kunnen worden gebruikt om een ​​zaadbank voor grootschalige commerciële productie genereren. Desondanks zijn methoden ontwikkeld om grootschalige tijdelijke expressie verbeteren. Hier laten we zien een methode van generatie van voorbijgaande proteïne-expressie Nicotiana benthamiana planten met behulp gedeconstrueerd virale vectoren door A. geleverd tumefaciens.

Twee belangrijke methoden ontwikkeld voor de levering van A. tumefaciens in plantenweefsel: bench schaal infiltratie via een injectiespuit en grootschalige infiltratie via de vacuümkamer. Beide protocollen worden beschreven met N. benthamiana, die nauw verwant is aan de gemeenschappelijke tabaksplant, zoals de waardplant voor transiënte expressie van twee fluorescerende eiwitten: het groen fluorescerend eiwit (GFP) van kwallen Aequorea Victoria en de rode fluorescente eiwit uit Discosoma koraal (DsRed) 12,13. N. benthamiana is de meest voorkomende waardplant voorrecombinant eiwit omdat het vatbaar is voor genetische transformatie kunnen grote hoeveelheden biomassa snel leveren en is een vruchtbare zaad producent opschaling productie 14. Een ander voordeel van N. benthamiana als gastheren voor eiwitexpressie is de beschikbaarheid van een verscheidenheid van expressievectoren 2,5. In deze studie, twee deconstructed virale vectoren, op basis van een tabak (TMV) RNA replicon systeem (MagnICON vectoren) en de andere zijn afgeleid van de boon yellow dwarf virus (BeYDV) DNA replicon systeem (geminiviral vectoren) 4,11, 15-18, worden gebruikt om het GFP en DsRed gen dragen en zal ze in N. benthamiana cellen via A. tumefaciens. Drie DNA constructen zullen worden gebruikt voor GFP en DsRed MagnICON expressie vectoren. Zij omvatten de 5 'module (pICH15879) bevattende de promoter en andere genetische elementen voor het aandrijven van de expressie van het doelwitgen, het 3'module die het gen van belang (Pich-GFP of Pich-DsRed) en het integrase module (pICH14011) codeert voor een enzym dat integreert de 5 'en 3' modules samen bij expressie 8,15. Drie DNA-constructen zijn ook nodig voor expressie met geminiviral vectoren. Naast de vectoren die replicon van het doelgen (pBYGFP of pBYDsRed), wordt een vector die codeert voor het replicatie-eiwit (pREP110) vereist voor de amplificatie van de doelwit replicon 11,14,16. Bovendien is de opname van een vector die codeert voor de silencing suppressor p19 van tomaat bossige stunt virus gewenst voor niveau doelwitgenexpressie hoog 11,16.

Er zijn over het algemeen drie belangrijke stappen voor de invoering van de genen van recombinante eiwitten in plantencellen door agroinfiltration waaronder plantengroei, A. tumefaciens cultuur voorbereiding, en infiltratie. Aangezien elke stap is essentieel voor het uiteindelijke succes van deze procedure, dus een gedetailleerde beschrijving van elk wordtzowel spuit infiltratie en vacuüm infiltratie hieronder.

Protocol

1. Plant Groei Plaats 60 turf pellets in een vermeerdering lade. Voeg 4 L van kraanwater en laat de turf pellets absorberen het water voor 2 uur. Voeg 2 N. benthamiana zaden in elke turf pellet met een zaaimachine, bedek de schaal met een doorzichtige plastic koepel en laat ze ontkiemen in een 25 ° C, 84% vochtigheid met een 16/8 uur dag / nacht cyclus (Figuur 1A). Verwijder de koepel twee weken na het zaaien, afvoer van water uit de lade en voeg 2 L van Jack&#39…

Representative Results

1. Expressie van fluorescerende eiwitten door Spuit Infiltratie GFP en DsRed – – Om de effectiviteit van de spuit infiltratie van Agrobacterium in het plantenweefsel te tonen, hebben we de expressie van twee fluorescerende eiwitten getest door twee verschillende gedeconstrueerd planten virale vectoren – geminiviral en MagnICON – in N. benthamiana. Voor N. benthamiana bladeren die volledig werden geïnfiltreerd met Agrobacteriën bevattende geminiviral vectore…

Discussion

De toenemende vraag naar eiwit gebaseerde geneesmiddelen wereldwijd vereisen nieuwe productieplatforms die robuust, schaalbaar, lage kosten en een kluisje. Planten hebben aangetoond dat een van de meest veelbelovende alternatieve productiesystemen voor farmaceutische productie eiwit. In de afgelopen jaren is de ontwikkeling van deconstructed virus gebaseerde vectoren transiënte expressie van eiwitten in planten, die sterk verbetert de snelheid en opbrengst van plantaardige expressiesystemen 2,10 ingeschakeld…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken R. Zon en andere studenten van Chen's Laboratorium voor hun bijdrage aan materiaal generatie planten. We danken ook dr. D. Green voor zijn steun van undergraduate onderzoek in de Universiteit van Technologie en Innovatie (CTI). Dit onderzoek werd mede ondersteund door NIH subsidie ​​U01 AI075549 en 1R21AI101329 naar Q. Chen, en een SSE subsidie ​​van CTI van de Arizona State University naar Q. Chen. K. Leuzinger, M. Dent, J. Hurtado, en J. Stahnke zijn undergraduate studenten ondersteund door de SSE subsidie.

Materials

Reagents
GFP Invitrogen V353-20 www.invitrogen.com See reference: Lico and Chen, et al 2008
DsRed Clontech 632152 www.clontech.com See reference: Baird and Zacharias, et al 2000
MagnICON Vector Icon Genetics n/a www.icongenetics.com See reference: giritch and Marillonnet, et al 2006
Geminiviral Vector Author’s Lab n/a See reference: Chen and He, et al 2011
N. benthamiana Author’s Lab n/a herbalistics.com.au
Agrobacterium tumefaciens strain gv3101 Author’s Lab n/a See reference: Lai and Chen 2012
LB Agar Carbenicillin-100, plates Sigma L0418 www.sigmaaldrich.com
LB Agar Kanamycin-50, plates Sigma L0543 www.sigmaaldrich.com
Magnesium sulfate hepa hydrate Sigma M2773-500 g www.sigmaaldrich.com
Bacto-Tryptone Fisher 73049-73-7 www.fishersci.com
Bacto Yeast Extract Becton, Dickinson & CO. REF 212750 www.bd.com
Difco Nutrient Broth Becton, Dickinson & CO. REF 234000 www.bd.com
MES hydrate Buffer Sigma M8250-1kg www.sigmaaldrich.com
Carbenicillin Sigma C1613-1ML www.sigmaaldrich.com
Kanamycin Sigma 70560-51-9 www.sigmaaldrich.com
Sodium Hydroxide Sigma 221465 www.sigmaaldrich.com
Jack’s Fertilizer Hummert International Jul-25 www.hummert.com
Equipment
Vacuubrand MD4 Vacuum Pump Fisher 13-878-113 www.fishersci.com
Vacuum Air Regulator Valve Fisher NC9386590 www.fishersci.com
Desiccator 12 1/8″ with O ring Fisher 08-594-15C www.fishersci.com
3 L Tub Rubber-Maid n/a Rubbermaid Servn’ Saver Bowl, 10-cup will work
plate/shelf 230ML Fisher NC9489269 www.fishersci.com
Peat Pellet Hummert International 14-2370-1 www.hummert.com
Propagation Tray Dome hydrofarm 132052 www.hydroponics.net
Propagaiton Tray hydrofarm 138758 www.hydroponics.net
Virbo Hand Seeder Gro-Mor INC n/a www.gro-morent.com
Flora Cart 4 shelf Hummert International 65-6924-1 www.hummert.com
15 ml Round Bottom Culture Tubes Sigma CLS430172-500EA http://www.sigmaaldrich.com
Spectrophotometer Bio-Rad 170-2525 www.bio-rad.com
Spectrophotometer Cuvettes Bio-Rad 223-9950 www.bio-rad.com
Microcentrifuge Tubes USA Scientific 1415-2500 www.usascientific.com
Benchtop Centrifuge Bio-Rad 166-0602EDU www.bio-rad.com
Incubator/Shaker Eppendorf Excella E25 www.eppendorf.com
Ultraviolet Light Model#: UVGL-25 UVP 95-0021-12 www.uvp.com

References

  1. Chen, Q., Mou, B., Scorza, R. . Transgenic Horticultural Crops: Challenges and Opportunities – Essays by Experts. , 86-126 (2011).
  2. Chen, Q., Lai, H. Plant-derived virus-like particles as vaccines. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 9, 26-49 (2013).
  3. Landry, N., et al. Preclinical and clinical development of plant-made virus-like particle vaccine against avian H5N1 influenza. PLoS One. 5, e15559 (2010).
  4. Lai, H., Chen, Q. Bioprocessing of plant-derived virus-like particles of Norwalk virus capsid protein under current Good Manufacture Practice regulations. Plant Cell Reports. 31, 573-584 (2012).
  5. Chen, Q. Expression and Purification of Pharmaceutical Proteins in Plants. Biological Engineering. 1, 291-321 (2008).
  6. Chen, Q. Turning a new leaf. European Biopharm. Rev. 2, 64-68 (2011).
  7. Chen, Q., Levine, M. M., et al. . New Generation Vaccines. , 306-315 (2009).
  8. Lai, H., et al. Monoclonal antibody produced in plants efficiently treats West Nile virus infection in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 2419-2424 (2010).
  9. Buswell, S., Medina-Bolivar, F., Chen, Q., Van Cott, K., Zhang, C. Expression of porcine prorelaxin in transgenic tobacco. Annals of the New York Academy of Sciences. 1041, 77-81 (2005).
  10. Lico, C., Chen, Q., Santi, L. Viral vectors for production of recombinant proteins in plants. J. Cell. Physiol. 216, 366-377 (2008).
  11. Chen, Q., He, J., Phoolcharoen, W., Mason, H. S. Geminiviral vectors based on bean yellow dwarf virus for production of vaccine antigens and monoclonal antibodies in plants. Hum. Vaccin. 7, 331-338 (2011).
  12. Tsien, R. Y. The Green Fluorescent Protein. Annual Review of Biochemistry. 67, 509-544 (1998).
  13. Baird, G. S., Zacharias, D. A., Tsien, R. Y. Biochemistry, mutagenesis, and oligomerization of DsRed, a red fluorescent protein from coral. Proceedings of the National Academy of Sciences. 97, 11984-11989 (2000).
  14. Lai, H., He, J., Engle, M., Diamond, M. S., Chen, Q. Robust production of virus-like particles and monoclonal antibodies with geminiviral replicon vectors in lettuce. Plant Biotechnology Journal. 10, 95-104 (2012).
  15. Giritch, A., et al. Rapid high-yield expression of full-size IgG antibodies in plants coinfected with noncompeting viral vectors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 14701-14706 (2006).
  16. Huang, Z., Chen, Q., Hjelm, B., Arntzen, C., Mason, H. A DNA replicon system for rapid high-level production of virus-like particles in plants. Biotechnol. Bioeng. 103, 706-714 (2009).
  17. Santi, L., et al. An efficient plant viral expression system generating orally immunogenic Norwalk virus-like particles. Vaccine. 26, 1846-1854 (2008).
  18. He, J., Lai, H., Brock, C., Chen, Q. A Novel System for Rapid and Cost-Effective Production of Detection and Diagnostic Reagents of West Nile Virus in Plants. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 1-10 (2012).
  19. Huang, Z., et al. High-level rapid production of full-size monoclonal antibodies in plants by a single-vector DNA replicon system. Biotechnol. Bioeng. 106, 9-17 (2010).
  20. Kuta, D., Tripathi, L. Agrobacterium-induced hypersensitive necrotic reaction in plant cells: a resistance response against Agrobacterium-mediated DNA transfer. African Journal of Biotechnology. 4, 752-757 (2005).
  21. Phoolcharoen, W., et al. Expression of an immunogenic Ebola immune complex in Nicotiana benthamiana. Plant Biotechnology Journal. 9, 807-816 (2011).
  22. Phoolcharoen, W., et al. A nonreplicating subunit vaccine protects mice against lethal Ebola virus challenge. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 20695-20700 (2011).
  23. Herbst-Kralovetz, M., Mason, H. S., Chen, Q. Norwalk virus-like particles as vaccines. Expert Rev. Vaccines. 9, 299-307 (2010).
  24. Chen, Q., et al. Agroinfiltration as an effective and scalable strategy of gene delivery for production of pharmaceutical proteins. Adv. Tech. Biol. Med. 1, 103 (2013).
check_url/50521?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Leuzinger, K., Dent, M., Hurtado, J., Stahnke, J., Lai, H., Zhou, X., Chen, Q. Efficient Agroinfiltration of Plants for High-level Transient Expression of Recombinant Proteins. J. Vis. Exp. (77), e50521, doi:10.3791/50521 (2013).

View Video