Summary

Lev Imaging Assay for at vurdere de roller Ca<sup> 2 +</sup> Og sphingomyelinase i reparation af poredannende Toxin Wounds

Published: August 25, 2013
doi:

Summary

Levende billeddannelse af celler udsat for den lipofile farvestof FM1-43 muliggør en præcis bestemmelse af kinetikken, som poredannende toksiner er fjernet fra plasmamembranen. Det er et følsomt assay, der kan bruges til at vurdere kravene til Ca 2 +, sphingomyelinase og andre faktorer på plasma membran reparation.

Abstract

Plasma membran skade er en hyppig begivenhed, og sår skal hurtigt repareret for at sikre cellulær overlevelse. Tilgangen af Ca2 + er en vigtig signalering hændelse, der udløser reparation af mekaniske sår på plasmamembranen i ~ 30 sek. Nylige undersøgelser har vist, at pattedyrceller også tillukkes deres plasmamembranen efter permeabilisering med poredannende toksiner i en Ca2 +-afhængig proces, der involverer exocytose af lysosomale enzym acid sphingomyelinase efterfulgt af pore endocytose. Her beskriver vi den metode, der anvendes til at påvise, at genlukning af celler permeabiliserede af giftstoffet streptolysin O er også hurtig og afhængig af Ca 2 + tilstrømning. Assay design tillader synkronisering af skaden begivenhed og en præcis kinetisk måling af cellernes evne til at genoprette plasmamembran integritet ved billeddannelse og kvantificere det omfang, hvormed den liphophilic farvestof FM1-43 når intracellulære membraner. Denne levende assay also tillader en følsom vurdering af evnen af ​​eksogent tilsat opløselige faktorer såsom sphingomyelinase at inhibere FM1-43 tilstrømning, hvilket afspejler cellernes evne til at reparere deres plasmamembran. Dette assay tilladt os at vise for første gang, at sphingomyelinase virker nedstrøms for Ca2 +-afhængig exocytose, da ekstracellulær tilsætning af enzymet fremmer genlukning af cellerne permeabiliseret i fravær af Ca2 +.

Introduction

Det har været kendt i flere årtier, at plasmamembran reparation efter mekanisk skade er en Ca2 +-afhængig proces 1,2. Senere undersøgelser viste, at Ca2 + indstrømning gennem såret udløser en kraftig proces exocytose af intracellulære vesikler på læsionsstedet, hvilket er påkrævet for genlukning 3,4. Satsen for tab af et fluorescerende farvestof indlæst i cytoplasmaet i celler blev brugt til at vurdere hastigheden af reparation, og konkluderede, at genlukning blev afsluttet inden <30 sek efter skade 5.. To modeller blev oprindeligt foreslået at forklare kravet om exocytose i plasmamembranen reparation: 1) "patch"-modellen, som foreslog, at Ca2 + tilstrømning gennem læsionen udløser oprindeligt homotypisk fusion af intracellulære vesikler, der udgør en stor "patch", der ville derefter anvendes på plasmamembranen at forsegle såret 6 og 2) spændinger reduktion model, som foreslog, at membran-Added af Ca2 +-afhængig exocytose i nærheden af såret vil reducere plasma membranspænding lette genlukning af dobbeltlaget 7. Den rolle, Ca 2 +-udløst exocytose i plasmamembranen reparation blev yderligere forstærket af undersøgelser, der viser, at lysosomer indeholder en Ca 2 +-sensor molekyle, synaptotagmin VII, hvilket letter deres exocytose og plasma membran reparation i skadede celler 8,9,10,11 .

Imidlertid har yderligere dokumentation tilkendegivet, at exocytose alene ikke var tilstrækkelig til at fremme plasmamembran reparation. Ud over mekaniske tårer på plasmamembranen, en hyppig form for cellebeskadigelse er permeabilisering af poredannende toksiner produceret af bakterier 12,13 eller immunceller 14,15. I modsætning til mekaniske tårer, poredannende proteiner indsætte sig på plasmamembranen danne en stabil, protein-foret porestørrelse, som ikke kan lukkes igen blot ved at anvende en membran "patch" eller ved reduktionning membranspænding. Interessant undersøgelser viste, at pattedyrceller har en effektiv mekanisme til at reparere deres plasmamembranen efter permeabilisering med pore-dannende proteiner, og denne proces kræver også tilstedeværelsen af ekstracellulær Ca2 + 12. Dette fund rejst spørgsmålet om, hvorvidt transmembrane pore fjernelse fra celleoverfladen var også en hurtig proces, som observeret med mekaniske sår 5. Overraskende vores nylige undersøgelser viste, at genlukning af cellerne permeabiliseret med poredannende toksiner har meget lignende egenskaber til reparation af mekaniske sår: processen kræver ekstracellulær Ca2 + og er afsluttet inden for ~ 30 sek. Undersøgelse denne proces mere detaljeret, for nylig har vi lært, at ud over Ca 2 +-reguleret exocytose af lysosomer plasmamembranen reparation medfører en hurtig form for endocytose, som udløses ved frigivelse af det lysosomale enzym acid sphingomyelinase (ASM) og er afgørende ikke kun for the fjernelse af transmembrane porer, men også til reparation af mekaniske sår 16.

For at bestemme kinetikken af celle genlukning efter permeabilisering med pore-dannende proteiner i vores laboratorium vi tilpasset en levende billedbehandling metode, der var blevet brugt tidligere til at vurdere genlukning af laser-såret isolerede muskelfibre 17. Dette assay er baseret på egenskaberne af den lipofile farvestof FM1-43, som stabilt interkalerer ind i det ydre blad af lipiddobbeltlag stigende i fluorescensintensitet. Når plasma membrandobbeltlaget er forstyrret ekstracellulære farvestof får adgang til intracellulære membraner, hvilket giver en følsom metode til påvisning af plasmamembranen skade og reparation 18,16,19,20. At tilpasse dette assay til vurdering af celle genlukning efter permeabilisering med poredannende proteiner, vi præinkuberes celler ved 4 ° C med det bakterielle toksin streptolysin O (SLO), som binder til membran cholesterol 21. Synkron cellepermeabilisering kan derefter let opnås ved at bevæge cellerne fra isen til at varme medium i en opvarmet mikroskopobjektbord, som aktiverer oligomerisering og ændring i konformation, som fører til transmembranprotein poredannelse. En fordel ved denne fremgangsmåde i de tidligere publicerede assays ved hjælp af laser sårdannelse, er, at et større antal celler kan analyseres samtidigt i en mikroskopisk felt, der giver bedre prøvetagning af cellepopulationen. I betragtning af de mekanistiske ligheder mellem cellen genlukning proces ses efter mekanisk skade og permeabilisering med poredannende toksiner assayet beskrevet her giver en meget alsidig og effektiv metode til at dissekere faktorer involveret i den grundlæggende proces med plasmamembranen reparation. Som et eksempel viser vi, at det er muligt at anvende dette assay til at identificere Ca2 + afhængige og uafhængige trin i reparationsprocessen.

Protocol

1.. Transcriptional undertrykkelse af ASM Seed 1,5 x 10 5 HeLa-celler i 2 ml DMEM vækstmedier (DMEM høj glucose med 10% føtalt bovint serum (FBS), 2 mM L-glutamin, 1% Penn-Strep) på 35 mm glasbund retter (Mattek) og inkuberes natten over ved 37 ° C i en 5% CO 2-inkubator. Den følgende dag, aspirat fra medierne vækst og erstatte det med 2 ml DMEM reduceret serum medium (DMEM med 4% FBS), mindst 1 time, før du tilføjer siRNA transfektion blanding. Forbered 4 r?…

Representative Results

Lave koncentrationer af bakteriel sphingomyelinase (SM) rednings plasmamembran reparation i celler udtømte i lysosomale syre sphingomyelinase. Brug FM1-43 imaging assay vi tidligere viste, at celler, der mangler for lysosomale enzym ASM og udsat for SLO sårdannelse i nærvær af Ca2 + har en plasmamembran defekt reddes af ekstracellulær tilsætning af det rekombinante humane enzym 19. Da den menneskelige lysosomale ASM har en lav pH-optimum, undersøgte vi, om genluknin…

Discussion

Tidligere undersøgelser af mekanisk skade og plasmamembranen reparation påberåbt sig forskellige mekanismer for at skade celler, der spænder fra slippe glasperler, micropipetting, klipning, ridser eller skrabning. Udlæsningen af ​​alle disse analyser var kvalitative snarere end kvantitative, og ikke give præcise oplysninger om kinetikken af ​​reparation mekanisme. Cellernes evne til at genforsegle deres plasmamembranen efter disse former for skade blev målt ved tilstedeværelse eller fravær af sporstoffe…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra NIH R37 AI34867 og R01 GM064625 til NWA Vi takker Dr. R. Tweten fra University of Oklahoma for SLO ekspressionsplasmid.

Materials

Reagent
HeLa 229 cell line ATCC CCL2-1
DMEM High Glucose Invitrogen 11965
DMEM High Glucose No Calcium Invitrogen 20168
FM1-43 Invitrogen T3163
Optimem Reduced Serum Invitrogen 31985
Lipofectamine RNAiMax Invitrogen 13778
Control medium GC content RNAi oligo Invitrogen 12935300
SMPD1 RNAi oligo Invitrogen HSS143988
Fetal Bovine Serum Heat-inactivated Gemini-Bioproducts 100-106
Sphingomyelinase from Bacillus cereus Sigma S7651
35 mm-glass bottom dishes MatTek P35G-0-14
Material
Inverted microscope Nikon Eclipse Ti
Camera Hamamatsu Photonics C9100-50
Spinning disk confocal microscope PerkinElmer UltraViewVoX
Software analysis software PerkinElmer Volocity Suite
Environmental chamber Pathology Devices LiveCell System Chamber

References

  1. Heilbrunn, L. . The dynamics of living protoplasm. , (1956).
  2. Chambers, R., Chambers, E. . Explorations into the nature of the living cell. , (1961).
  3. Bi, G. Q., Alderton, J. M., Steinhardt, R. A. Calcium-regulated exocytosis is required for cell membrane resealing. J. Cell Biol. 131, 1747-1758 (1995).
  4. Miyake, K., McNeil, P. L. Vesicle accumulation and exocytosis at sites of plasma membrane disruption. J. Cell Biol. 131, 1737-1745 (1995).
  5. Steinhardt, R. A., Guoqiang, B., Alderton, J. M. Cell membrane resealing by a vesicular mechanism similar to neurotransmitter release. Science. 263, 390-393 (1994).
  6. McNeil, P. L., Vogel, S. S., Miyake, K., Terasaki, M. Patching plasma membrane disruptions with cytoplasmic membrane. J. Cell Sci. 113, 1891-1902 (2000).
  7. Togo, T., Alderton, J. M., Bi, G. Q., Steinhardt, R. A. The mechanism of facilitated cell membrane resealing. J. Cell Sci. 112, 719-731 (1999).
  8. Rodriguez, A., Webster, P., Ortego, J., Andrews, N. W. Lysosomes behave as Ca2+-regulated exocytic vesicles in fibroblasts and epithelial cells. J. Cell Biol. 137, 93-104 (1997).
  9. Reddy, A., Caler, E., Andrews, N. Plasma membrane repair is mediated by Ca2+-regulated exocytosis of lysosomes. Cell. 106, 157-169 (2001).
  10. Jaiswal, J. K., Andrews, N. W., Simon, S. M. Membrane proximal lysosomes are the major vesicles responsible for calcium-dependent exocytosis in nonsecretory cells. J. Cell Biol. 159, 625-635 (2002).
  11. Chakrabarti, S., et al. Impaired membrane resealing and autoimmune myositis in synaptotagmin VII-deficient mice. J. Cell Biol. 162, 543-549 (2003).
  12. Walev, I., et al. Delivery of proteins into living cells by reversible membrane permeabilization with streptolysin-O. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 3185-3190 (2001).
  13. Iacovache, I., van der Goot, F. G., Pernot, L. Pore formation: an ancient yet complex form of attack. Biochim. Biophys. Acta. 1778, 1611-1623 (2008).
  14. Morgan, B. P., Campbell, A. K. The recovery of human polymorphonuclear leucocytes from sublytic complement attack is mediated by changes in intracellular free calcium. Biochem. J. 231, 205-208 (1985).
  15. Keefe, D., et al. Perforin triggers a plasma membrane-repair response that facilitates CTL induction of apoptosis. Immunity. 23, 249-262 (2005).
  16. Idone, V., et al. Repair of injured plasma membrane by rapid Ca2+-dependent endocytosis. J. Cell Biol. 180, 905-914 (2008).
  17. Bansal, D., et al. Defective membrane repair in dysferlin-deficient muscular dystrophy. Nature. 423, 168-172 (2003).
  18. McNeil, P. L., Miyake, K., Vogel, S. S. The endomembrane requirement for cell surface repair. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 4592-4597 (2003).
  19. Tam, C., et al. Exocytosis of acid sphingomyelinase by wounded cells promotes endocytosis and plasma membrane repair. J. Cell Biol. 189, 1027-1038 (2010).
  20. Weisleder, N., et al. Visualization of MG53-mediated cell membrane repair using in vivo and in vitro systems. J. Vis. Exp. (52), e2717 (2011).
  21. Tweten, R. K. Cholesterol-dependent cytolysins, a family of versatile pore-forming toxins. Infect. Immun. 73, 6199-6209 (2005).
  22. Zha, X., et al. Sphingomyelinase treatment induces ATP-independent endocytosis. J. Cell Biol. 140, 39-47 (1998).
  23. Buckley, J. T. Crossing three membranes. Channel formation by aerolysin. FEBS Lett. 307, 30-33 (1992).
  24. Parker, M. W., et al. Structure of the Aeromonas toxin proaerolysin in its water-soluble and membrane-channel states. Nature. 367, 292-295 .
  25. Yamaji-Hasegawa, A., et al. Oligomerization and pore formation of a sphingomyelin-specific toxin, lysenin. J. Biol. Chem. 278, 22762-22770 (2003).
check_url/fr/50531?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Tam, C., Flannery, A. R., Andrews, N. Live Imaging Assay for Assessing the Roles of Ca2+ and Sphingomyelinase in the Repair of Pore-forming Toxin Wounds. J. Vis. Exp. (78), e50531, doi:10.3791/50531 (2013).

View Video