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Article de méthode

Mont entiers immunofluorescence de la rétine de souris néonatal chargé d'enquêter sur l'angiogenèse

46.9K vues

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DOI :

10.3791/50546

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9 juillet 2013

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Dans cet article

Résumé

La rétine murin néonatal fournit un modèle physiologique bien caractérisé de l'angiogenèse, qui permet à des enquêtes sur les rôles des différents gènes ou des médicaments qui modulent l'angiogenèse dans un In vivo Contexte. Immunofluorescence de visualiser avec précision le plexus vasculaire est essentielle à la réussite de ce type d'études.

Résumé

L'angiogenèse est le processus complexe de la formation de nouveaux vaisseaux sanguins défini par la germination de nouveaux vaisseaux sanguins à partir d'un réseau de vaisseaux préexistants. L'angiogenèse joue un rôle essentiel non seulement dans le développement normal des organes et des tissus, mais aussi dans de nombreuses maladies dans lesquelles la formation de vaisseaux sanguins est déréglée, comme le cancer, la cécité et les maladies ischémiques. Dans la vie adulte, les vaisseaux sanguins sont généralement repos si l'angiogenèse est une cible importante pour le développement de médicaments nouveaux pour essayer de réguler la formation de nouveaux vaisseaux spécifiquement dans la maladie. Afin de mieux comprendre l'angiogenèse et d'élaborer des stratégies appropriées pour réglementer cela, les modèles sont nécessaires, qui reflètent avec précision les différentes étapes biologiques qui sont impliqués. La rétine de la souris néonatale constitue un excellent modèle de l'angiogenèse, car les artères, les veines et les capillaires se développent pour former un plexus vasculaire au cours de la première semaine après la naissance. Ce modèle a également l'avantage d'avoir un deux-didimensionnelle (2D) la structure qui rend l'analyse directe par rapport à l'anatomie 3D complexe d'autres réseaux vasculaires. En analysant le plexus vasculaire rétinienne à différents moments après la naissance, il est possible d'observer les différentes étapes de l'angiogenèse sous le microscope. Cet article montre une procédure simple pour analyser la vascularisation de la rétine de la souris en utilisant une coloration fluorescente avec des anticorps spécifiques isolectine et vasculaire.

Introduction

L'angiogenèse est un processus complexe du développement définie par la formation de nouveaux vaisseaux sanguins à partir d'un réseau de vaisseaux préexistants et est réglementé par plusieurs voies de signalisation. Le plus important d'entre eux est la voie du VEGF. VEGF est libéré par les cellules ischémiques et conduit à l'initiation de la germination angiogénique dans les vaisseaux sanguins avoisinants. Les cellules endothéliales de premier plan à partir d'une nouvelle pousse vasculaire est une cellule «pointe», qui produit filopodes qui atteignent en direction de la source de VEGF, et est suivie par des cellules endothéliales proliférantes "ti....

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Protocole

Toutes les étapes sont réalisées à température ambiante, sauf indication contraire.

1. Énucléation et la fixation des Yeux postnatale

  1. Placez la souris euthanasiés chiot de son côté, enlever la peau qui recouvre l'œil avec des ciseaux.
  2. Utilisez des ciseaux et des pinces pour énucléer l'œil.
  3. Placez les ciseaux sous l'œil énucléé, couper le nerf optique et des tissus environnants et soulever l'œil. Transfert à une plaque de 24 puits contenant du paraformaldéhyde 4% (PFA) constitué en 2x PBS à température ambiante.
  4. Permettre à chaque œil pour fixer pendant 10 - 15 min, puis transfert à ....

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Résultats

Après dissection de la rétine devrait ressembler à une fleur plat (Figure 1). En utilisant le protocole décrit ci-dessus, les cellules endothéliales peuvent être vus à l'aide isolectine coloration B4-Alexa488 et en soutenant les cellules musculaires vasculaires sont visualisés à l'aide anti-alpha actine musculaire lisse (Figure 2). Le point de vue de faible puissance utilisant un objectif 5X dans la figure 2 permet une vue d'ensemble de l'organisation va.......

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Discussion

La méthode présentée ici offre un moyen simple et efficace pour obtenir des images de préparations colorées de montage entières de rétines de souris néonatales, ce qui en fait un modèle facilement quantifiable et physiologiquement pertinents de l'angiogenèse. Initialement, l'œil de la souris peut être assez difficile à disséquer en raison de sa petite taille et la forme du globe, alors un peu de pratique et de bons outils de dissection sont nécessaires pour obtenir des résultats fiables. Dissection des yeux prép.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu'ils n'ont aucun intérêt financier concurrents.

Remerciements

Ce travail a été financé par le Wellcome Trust et la British Heart Foundation.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Material
Pipettes en plastique 3 mlFournitures de laboratoire scientifiquePIP4210Retirez l’embout avec des ciseaux pour créer un large alésage
Plaques BD Falcon 24 puitsFournitures de laboratoire scientifique353226
Boîtes de Pétri Select TV 90 mmFournitures de laboratoire scientifiqueSLS2002
lames HistobondVWR631-0624
Lamelles 22 x 22 mmVWR631-1336
Dumont Pince à épiler #5World precision instruments14095
Ciseaux à ressort de 10,5 cm de long, avec lames droites de 8 mmInstruments de précision World501235Utilisé pour l’énucléation
Ciseaux Vannas de 8,5 cm de long, avec lames droites de 7 mm et pointes superfines de 0,025 x 0,015 mmWorld precision instruments500086Utilisé pour la dissection de la rétine
Ciseaux vannes superfins de 8 cm de long avec lames droites de 3 mm et pointes superfines de 0,015 x 0,015 mmInstruments de précision World501778Utilisé pour la dissection de la rétine
tubes limpide’ ; 2 mlStarlabE1420-2000
réactifs
Phosphate de sodium dibasicSigmaS0876Réactif PBS
Phosphate de potassium monobasiqueSigmaP5655Réactif PBS
Chlorure de sodiumSigmaS9625Réactif PBS
ParaformaldéhydeSigmaP6148Compléter en 2x PBS et stocker à -20 ° ; C
BSASigmaA7638
Triton X-100SigmaT9284
Sérum d’âneSigmaD9663
Sérum de chèvreVecteurS-1000
Réactif anti-décoloration Prolong GoldInvitrogenP36930Réactif de montage
Isolectine GS-IB4-alexa 594InvitrogenI21413Utilisation à Dilution 1:200
Isolectine GS-IB4-alexa 488InvitrogenI21411Utilisation à dilution 1:200
Anticorps primairesAnti-NG2 (lapin polyclonal)Millipore AB5320 Détecte les péricytes Anti-GFAP (clone GA5, souris monoclonale)Millipore MAB360 Détecte les astrocytes Anti-Desmin (clone Y66,
monoclonal de lapin)Millipore04-585Détecte les péricytes
Anti-Collagène IV (polyclonal de lapinChemiconAB756PDétecte la membrane basale vasculaire
Anti-alpha muscle lisse actine-Cy3 (clone 1A4, souris monoclonale)SigmaC6198Détecte les cellules musculaires lisses vasculaires.
Anti-Endoglin (clone MJ7/18, rat monoclonal)BD Pharmingen550546Détecte les cellules endothéliales
Anti-CD31 (clone MEC13.3, rat monoclonal)BD Pharmingen553370Détecte les cellules endothéliales
Anti-VE-Cadhérine (clone 11D4.1, rat monoclonal)BD Pharmingen550548Détecte les jonctions cellulaires endothéliales
Anti-Alk1 (chèvre polyclonale)R& D SystemsAF770Détecte les cellules
Anticorps secondaires
Goat anti-rabbit-Alexa594InvitrogenA11012Tous les anticorps secondaires sont aliquotes immédiatement à l’arrivée et stockés à -20 ° ;C.
Chèvre anti-rat-Alexa488InvitrogenA11006Tous les anticorps secondaires sont aliquote immédiatement à l’arrivée et stockés à -20 ° ;C.
Chèvre anti-rat-Alexa594InvitrogenA11007Tous les anticorps secondaires sont aliquotes immédiatement à l’arrivée et stockés à -20 ° ;C.
Chèvre anti-souris-Alexa488InvitrogenA11029Tous les anticorps secondaires sont aliquotes immédiatement à l’arrivée et stockés à -20 ° ;C.
Âne anti-chèvre-Alexa594InvitrogenA11058Tous les anticorps secondaires sont aliquotes immédiatement à l’arrivée et stockés à -20 ° ;C.
Microscopes
Microscope de dissectionCaméra ZeissStemi SV6
CaméraZeissAxiocam HRcpour microscope de dissection
Microscope épifluorescentZeissAxioimager avec caméra Apotome
CaméraZeissAxiocam HRmAxioimager
NikonA1R
) endothéliales pour microscope confocal

Références

  1. Carmeliet, P., Jain, R. K. Molecular mechanisms and clinical applications of angiogenesis. Nature. 473 (7347), 298-307 (2011).
  2. Staton, C. A., et al. Current methods for assaying angiogenesis in vitro and in vivo. Int J. Exp. Pathol. 85 (5), 233-248 (2004....

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Réimpressions et autorisations

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