无创性气管内插管，以研究小鼠肺的病理生理
Summary
采用了一个模型，模拟肺疾病在人类中的条件是用于研究特定疾病的病理生理学和/或病因和用于开发治疗性干预是至关重要的。在这里，可以直接将外源性材料，以小鼠肺一种无创性气管插管方法。
Abstract
采用了一个模型，模拟肺疾病在人类中的条件是用于研究特定疾病的病理生理学和/或病因和用于开发治疗性干预是至关重要的。用基因敲除和转基因衍生物，具有遗传信息的大量在一起的日益普及，小鼠为研究肺部疾病的病理和生理的分子机制最好的车型之一。吸入，鼻内滴注，气管内滴注，并且气管内插管是最广泛使用的技术，由一些研究者来管理感兴趣的材料，以小鼠的肺。有优点和缺点这取决于研究的目标，每一种技术。在这里，可以直接将外源性材料，以小鼠肺一种无创性气管插管方法。这种技术被应用到管理博莱霉素对小鼠肺作为一个模型来研究肺纤维化。</ P>
Introduction
龙是许多严重的疾病，通常诊断的器官。其中，肺癌是第二大癌症诊断在男性和女性癌症死亡的最常见原因。慢性阻塞性肺疾病，也被称为肺气肿和慢性支气管炎，是一种非常严重的疾病和死亡的美国第三大原因。在2011年，据估计，2590万美国人患有哮喘，其中18岁以下的710万儿童。哮喘是住院治疗的15（美国肺脏协会岁以下的儿童的第三大原因http://www.lung.org ）。为了研究这些大病和其相关机制的病理生理及/或病因，运用精确的模型是符合利益肺部各种材料的方便，非侵入性的管理相结合的关键。小鼠提供最好的车型之一研究因为基因敲除和转基因小鼠和现有遗传信息的大量的日益普及病理及肺部疾病的生理的分子机制。
各种方法已被用于许多研究者在不同的设置，以提供感兴趣的材料，以小鼠的肺，包括吸入，鼻内滴注，气管内灌注和气管插管1-4。后者程序没有被经常使用，因为它被认为是相当难以执行。本文所述气管插管是一种无创，简便，快速的方法来提供感兴趣的小鼠肺部材料，以研究运送材料对基因表达模式，病理学和/或肺5的生理效应。这种技术保证了外源性物料的输送到全肺，不涉及任何生存的手术，因此将likelY通过任何机构动物护理和使用委员会的批准。
Protocol
Representative Results
Discussion
这里描述的气管插管是一个简单的，但优秀的无创性的方法来提供均匀的兴趣材料小鼠肺。此方法允许的给药对肺的生理和/或病理的材料的效果和/或作用的研究。给予该材料可以是内源性分子，如细 胞因子，或外源性物质如外源性化学物质/药物，致癌物质，污染物，过敏原，或导致各种肺部疾病，可能代表一个模型用于研究各种人类疾病的6-10病毒。这种技术也可以用于在重组腺病…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
这项工作是由美国国家癌症研究所癌症研究中心的院内研究计划的支持。
Materials
| KetaVed | Vedco | Ketamine | |
| AnaSed Injection 20 mg | LLOYD | Xylazine | |
| BioLite Stand | Braintree Scientific | RIS100 | For mice |
| BioLite Intubation Illumination System | Braintree Scientific | BIO MI-KIT | For mice |
| 22 G, 1 inch i.v. catheter | Terumo | SR-OX2225CA | For mice below 30 g. Catheter is used only for the case where the Intubation Illumination System is not used. |
| or | |||
| 20 G, 1 inch i.v. catheter | Terumo | SR-OX2025CA | For mice over 30 g. Catheter is used only for the case where the Intubation Illumination System is not used. |
| Catheter is used only for the case where the Intubation Illumination System is not used |
References
- Das, S., Macdonald, K., Chang, H. Y., Mitzner, W. A simple method of mouse lung intubation. J. Vis. Exp. (73), e50318 (2013).
- Miller, M. A., et al. Visualization of murine intranasal dosing efficiency using luminescent Francisella tularensis: effect of instillation volume and form of anesthesia. PLoS One. 7, e31359 (2012).
- Rayamajhi, M., Redente, E. F., Condon, T. V., Gonzalez-Juarrero, M., Riches, D. W., Lenz, L. L. Non-surgical intratracheal instillation of mice with analysis of lungs and lung draining lymph nodes by flow cytometry. J. Vis. Exp. (51), e2702 (2011).
- Riesenfeld, E. P., et al. Inhaled salmeterol and/or fluticasone alters structure/function in a murine model of allergic airways disease. Respir. Res. 11, 22 (2010).
- Rivera, B., Miller, S., Brown, E., Price, R. A novel method for endotracheal intubation of mice and rats used in imaging studies. Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 44, 52-55 (2005).
- Bonniaud, P., et al. Progressive transforming growth factor beta1-induced lung fibrosis is blocked by an orally active ALK5 kinase inhibitor. Am. J. Res. Crit. Care Med. 171, 889-898 (2005).
- Bivas-Benita, M., Zwier, R., Junginger, H. E., Borchard, G. Non-invasive pulmonary aerosol delivery in mice by the endotracheal route. Eur. J. Pharm. Biopharm. 61, 214-218 (2005).
- Haegens, A., et al. Myeloperoxidase deficiency attenuates lipopolysaccharide-induced acute lung inflammation and subsequent cytokine and chemokine production. J. Immunol. 182, 7990-7996 (2009).
- Jackson, P., et al. Exposure of pregnant mice to carbon black by intratracheal instillation: toxicogenomic effects in dams and offspring. Mutat. Res. 745, 73-83 (2012).
- Bodewes, R., et al. Pathogenesis of Influenza A/H5N1 virus infection in ferrets differs between intranasal and intratracheal routes of inoculation. Am. J. Pathol. 179, 30-36 (2011).
- Winslow, M. M., et al. Suppression of lung adenocarcinoma progression by Nkx2-1. Nature. 473, 101-104 (2011).
