Summary

Дистанционное Магнитный Приведение в микрометрической зондов для<em> На месте</em> 3D Mapping бактериальных биопленок физических свойств

Published: May 02, 2014
doi:

Summary

В данной работе показано оригинальную методологию, основанную на пульте дистанционного приведения в действие магнитных частиц, посеянных в бактериальной биопленки и развитие специализированных магнитных пинцетом для измерения на месте местные механические свойства комплексной жилой материала построен микроорганизмов на границах.

Abstract

Бактериальной адгезии и роста на интерфейсах привести к образованию трехмерных гетерогенных структур так называемых биопленки. Клетки, живущие в этих структурах скрепляются физических взаимодействий, опосредованных сети внеклеточных полимерных веществ. Бактериальные биопленки влиять на многие виды деятельности человека и понимание их свойств имеет решающее значение для лучшего контроля их развития – сохранение или ликвидация – в зависимости от их отрицательное или положительное исходом. Эта статья описывает новую методологию, направленную для измерения на месте местные физические свойства биопленки, которая была, до сих пор рассматривалось только от макроскопического и однородного материального точки зрения. Эксперимент, описанный здесь включает введение магнитных частиц в растущую биопленки, чтобы отобрать местные зондов, которые могут быть дистанционным управлением, не нарушая структурные свойства биопленки. Выделенные магнитные пинцет были развивприпрыжку приложить определенное усилие на каждой частице, встроенного в биопленки. Установка монтируется на этапе микроскопом, чтобы включить запись покадровой изображений на период частиц потянув. Траектории частиц затем извлекают из тянущего последовательности и местные вязкоэластичные параметры выводятся из каждой кривой частиц смещения, тем самым обеспечивая 3D-пространственное распределение параметров. Получение взглянуть на биопленки механической профиль имеет важное значение с точки инженера зрения для целей контроля биопленки, но и с фундаментальной точки зрения, чтобы уточнить связь между архитектурными свойствами и конкретного биологии этих структур.

Introduction

Бактериальные биопленки сообщества бактерий, связанных с биологическими или искусственных поверхностей 1-3. Они образуют с помощью механизма адгезии роста в сочетании с производством полисахарида богатых внеклеточного матрикса, который защищает и стабилизирует здание 4,5. Эти биопленки не просто пассивные комплексы клеток, застрявших на поверхности, но организовал и динамические сложные биологические системы. Когда бактерии переключаться с планктонных в биопленки образа жизни, изменения в экспрессии генов и клеточной физиологии наблюдаются, а также повышенной устойчивостью к противомикробным препаратам и провести иммунную защиту будучи в начале многих стойких и хронических инфекций 6. Тем не менее, под контролем развитие этих живых структур также предлагают возможности для промышленных и экологических применений, таких как биоремедиации мест захоронения опасных отходов, био-фильтрации технической воды или образования био-барьеров для защиты почвы и грунтовых вод от разлиAtion.

В то время как молекулярные особенности, характерные для биопленки образа жизни все чаще описываются механизмы, способствующие развитию развитию общин и упорство остаются неясными. Используя последние достижения на микромасштабных измерений с использованием сканирования электрохимические или флуоресцентной микроскопии, эти живые организации было показано, обладает значительным структурным, химической и биологической гетерогенности 7. Тем не менее, до сих пор, механика биопленки не были в основном рассмотрены макроскопически. Например, наблюдение биопленки стримеров деформации из-за различий в жидкости расхода 8,9, одноосное сжатие биопленки штук поднять из агаровой среде или выращивают на покрытие скользит 10,11, сдвиг биопленки, собранной из окружающей среды, а затем перевели в параллельный пластина Реометр 12,13, атомно-силовая спектроскопия с использованием бусины и покрытием с бактериальной биопленки, прикрепленной к АСМ кантилевера 14 или выделенной микрocantilever метод измерения прочности на разрыв отдельные фрагменты биопленки 15,16 были реализованы в течение десяти последних лет, предоставляя полезную информацию о вязкоупругой природы материала 17. Тем не менее, вполне вероятно, что информация о в точке биопленки механических свойств теряется, когда материал будет удален из его родной среде, которая была часто бывает в этих подходов. Кроме того, лечение биопленки в виде однородного материала попадает в информацию о возможном неоднородности физических свойств в обществе. Таким образом, точные последствия механике структуры в формировании биопленок и биологических черт, таких как экспрессии генов паттерна или химических градиентов вряд ли могут быть признаны. Для продвижения к микромасштабной описания биопленки физических свойств, новые специализированные инструменты необходимы.

Эта статья подробно оригинальный подход задуман для достиженияизмерение локальных механических параметров в месте, не нарушая биопленки и позволяет чертеж пространственного распределения микромасштабных свойств материала, а затем механической неоднородности. Принцип эксперимента опирается на легирования растущей биопленки с магнитными микрочастицами с последующим их удаленной загрузки с использованием магнитных пинцетом в зрелом биопленки. Смещение частиц при контролируемой магнитной силовой применения отображаемого под микроскопом позволяет местным вывод параметров вязкоупругих, каждую частицу отчетности собственную локальную среду. Исходя из этих данных, 3D механический профиль биопленки можно сделать, открыв пространственных и экологических условий зависимости. Весь эксперимент будет показано здесь на Е. палочка биопленки сделаны генной инженерии штамм, несущий derepressed F-как плазмиды. Результаты подробно изложены в недавней работе 18 обеспечивают уникальное видение интерьера интактных механики биопленки.

Protocol

1. Бактерии Культура и подготовка Подвеска Выберите только что выращенного колонию из чашки с агаром лизогении бульон (LB), привить его в 5 мл жидкость LB среду, содержащую 100 μ г / мл ампициллина и 7,5 μ г / мл тетрациклина и инкубировать в течение 5 до 6 часов при 37 ° С на встряхив…

Representative Results

Типичный анализ даст пространственное распределение вязкоупругих параметров на микрон шкалой на живого биопленки, не нарушая его оригинальное расположение. Типичные результаты приведены на рисунке 7, где значения J 0 – упругой податливости, – приводятся в зависимости от …

Discussion

Это магнитная частица посева и потянув эксперимент включен на месте 3D отображения вязкоупругих параметров растущего биопленки в исходное состояние. Этот подход показал механическую неоднородность Е. палочка биопленки вырос здесь и дал ключи, чтобы указать на компоненты био…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была частично поддержана грантами от Agence Nationale Pour La Recherche, программы PIRIbio Dynabiofilm и от CNRS программы Междисциплинарный рисками. Мы благодарим Филиппа Томен за его критическое прочтение рукописи и Кристоф Beloin за предоставление E. Штамм используется в этой работе.

Materials

Table 1: Reagents and cells
Magnetic particles Life technologies 14307D Micrometric magnetic particle, 2.8 µm diameter
Ampicillin (Antibiotic) Sigma-Aldrich A9518
Tetracycline (Antibiotic) Sigma-Aldrich 87128
Bacterial strain MG1655gfpF UGB, Institut Pasteur, France produces F pili at its surface, resistant to Ampicilllin and tetracycline
Table 2:  Capillaries and tubing
Filters for pediatric perfusion Prodimed-Plastimed 6932002
Hollow Square Capillaries Composite Metal Scientific 8280-100 Manufactured in Borosilicate glass. Square 0.8mm x0.8mm
Tubing silicone peroxyde VWR international 228-0512 Diameter 1mm
Tubing silicone peroxyde VWR international 228-0700 Diameter 3mm
Table 3: Biofilm growth
Lysogeny Broth (LB) solution Amresco-VWR J106-10PK standard medium used to grow bacteria
M63B1 solution Home-made Standard minimum  medium used to grow bacteria
Glucose Sigma-Aldrich G8270 Used to make M63B1 medium with 0.4% glucose
Table 4: Electronics
Camera EMCCD   Hamamatsu C9100-02
Heater controller World precision instruments 300354
Function generator Agilent technologies 33210A
Power amplifier Home-made It gives a current signal with amplitudes up to 4 A.
Syringe pumps Kd Scientific KDS-220
Shutter Vincent Associates Uniblitz T132
Magnetic tweezers Home-made Two electromagnetic poles, each made of a copper coil with 2,120 turns of 0.56 mm in diameter copper wire and soft magnetic alloy cores (Supra50-Arcelor Mittal, France) square shaped according to the blueprint shown in Fig. 10. The two cores are mounted north pole facing south pole, in order to generate a magnetic force in one direction along the length of the capillary. See coil wiring details in Figure 11.
Table 5: Optics
Inverted microscope  Nikon TE-300
S Fluor x40 Objective (NA 0.9, WD0.3) Nikon This a long working distance ojective enabling observation of the biofilm in the depth
Epifluorescence filters: 1) for green fluorescence: Exc 480/20 nm; DM 495; Em 510/20  2) for Red fluorescence: Exc 540/25 nm; DM 565; Em 605/55 Chroma 1)#49020 2)#31002 Particle displacement upon force application is recorded using the red fluoresecnce filter block.
Table 6: Image analysis
ImageJ NIH – particle tracker plugin

References

  1. Hall-Stoodley, L., Costerton, J. W., Stoodley, P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases. Nat Rev Microbiol. 2, 95-108 (2004).
  2. Donlan, R. M. Biofilms: microbial life on surfaces. Emerg Infect Dis. 8, 881-890 (2002).
  3. Costerton, J. W., Stewart, P. S. Battling biofilms. Scientific American. 285, 74-81 (2001).
  4. Branda, S. S., Vik, S., Friedman, L., Kolter, R. Biofilms: the matrix revisited. Trends Microbiol. 13, 20-26 (2005).
  5. Flemming, H. C., Wingender, J. The biofilm matrix. Nat Rev Microbiol. 8, 623-633 (2010).
  6. Costerton, J. W., Stewart, P. S., Greenberg, E. P. Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections. Science. 284, 1318-1322 (1999).
  7. Stewart, P. S., Franklin, M. J. Physiological heterogeneity in biofilms. Nat Rev Microbiol. 6, 199-210 (2008).
  8. Stoodley, P., Lewandowski, Z., Boyle, J. D., Lappin-Scott, H. M. Structural deformation of bacterial biofilms caused by short-term fluctuations in fluid shear: an in situ investigation of biofilm rheology. Biotechnology and bioengineering. 65, 83-92 (1999).
  9. Klapper, I., Rupp, C. J., Cargo, R., Purvedorj, B., Stoodley, P. Viscoelastic fluid description of bacterial biofilm material properties. Biotechnol Bioeng. 80, 289-296 (2002).
  10. Korstgens, V., Flemming, H. C., Wingender, J., Borchard, W. Uniaxial compression measurement device for investigation of the mechanical stability of biofilms. Journal of microbiological. 46, 9-17 (2001).
  11. Cense, A. W., et al. Mechanical properties and failure of Streptococcus mutans biofilms, studied using a microindentation device. Journal of microbiological methods. 67, 463-472 (2006).
  12. Shaw, T., Winston, M., Rupp, C. J., Klapper, I., Stoodley, P. Commonality of elastic relaxation times in biofilms. Physical Review Letters. 93, (2004).
  13. Towler, B. W., Rupp, C. J., Cunningham, A. B., Stoodley, P. Viscoelastic properties of a mixed culture biofilm from rheometer creep analysis. Biofouling. 19, 279-285 (2003).
  14. Lau, P. C., Dutcher, J. R., Beveridge, T. J., Lam, J. S. Absolute quantitation of bacterial biofilm adhesion and viscoelasticity by microbead force spectroscopy. Biophysical journal. 96, 2935-2948 (2009).
  15. Poppele, E. H., Hozalski, R. M. Micro-cantilever method for measuring the tensile strength of biofilms and microbial flocs. Journal of microbiological methods. 55, 607-615 (2003).
  16. Aggarwal, S., Poppele, E. H., Hozalski, R. M. Development and testing of a novel microcantilever technique for measuring the cohesive strength of intact biofilms. Biotechnology and bioengineering. 105, 924-934 (2010).
  17. Guélon, T., Mathias, J. -. D., Stoodley, P. Biofilm Highlights. Series on Biofilms (eds Hans-Curt Flemming, Jost Wingender, & Ulrich Szewzyk). 5, (2011).
  18. Galy, O., et al. Mapping of Bacterial Biofilm Local Mechanics by Magnetic Microparticle Actuation. Biophysical journal. 103, 1-9 (2012).
  19. Schnurr, B., Gittes, F., MacKintosh, F. C., Schmidt, C. F. Determining Microscopic Viscoelasticity in Flexible and Semiflexible Polymer Networks from Thermal Fluctuations. Macromolecules. 30, 7781-7792 (1997).
  20. Aggarwal, S., Hozalski, R. M. Effect of Strain Rate on the Mechanical Properties of Staphylococcus epidermidis Biofilms. Langmuir. 28, 2812-2816 (2012).
  21. Towler, B. W., Cunningham, A., Stoodley, P., McKittrick, L. A model of fluid-biofilm interaction using a Burger material law. Biotechnol Bioeng. 96, 259-271 (2007).
  22. Jones, W. L., Sutton, M. P., McKittrick, L., Stewart, P. S. Chemical and antimicrobial treatments change the viscoelastic properties of bacterial biofilms. Biofouling. 27, 207-215 (2011).
  23. Apgar, J., et al. Multiple-particle tracking measurements of heterogeneities in solutions of actin filaments and actin bundles. Biophysical journal. 79, 1095-1106 (2000).

Play Video

Citer Cet Article
Galy, O., Zrelli, K., Latour-Lambert, P., Kirwan, L., Henry, N. Remote Magnetic Actuation of Micrometric Probes for in situ 3D Mapping of Bacterial Biofilm Physical Properties. J. Vis. Exp. (87), e50857, doi:10.3791/50857 (2014).

View Video