Summary

تقييم استجابة عضلي وVasoactivity في الشرايين المقاومة مساريقي عن طريق تخطيط العضل الضغط

Published: July 06, 2015
doi:

Summary

يستخدم تخطيط العضل الضغط لتقييم vasoactivity من الشرايين الصغيرة التي تطور انقباض مستمر عند الضغط. توفر هذه المخطوطة بروتوكول مفصلة لتقييم في قطاعات معزولة الشرايين المساريقي صغيرة من الفئران، vasoactivity وتأثير الضغط داخل اللمعة على قطر الأوعية الدموية.

Abstract

الشرايين مقاومة صغيرة انقباض وتمدد على التوالي ردا على زيادة أو نقصان الضغط داخل اللمعة. هذه الظاهرة المعروفة باسم استجابة عضلي هو المنظم الرئيسي لتدفق الدم المحلي. في ظروف إسوي الضغط الشرايين مقاومة صغيرة تتطور يستمر انقباض عضلي يعرف لهجة (MT)، والذي هو أحد المحددات الرئيسية لمقاومة الأوعية الدموية الجهازية (SVR). وبالتالي، خارج الحي الاستعدادات الضغط في الشرايين مقاومة صغيرة هي الأدوات الرئيسية لدراسة وظيفة الاوعية الدموية الدقيقة في ولايات شبه الفسيولوجية. لتحقيق ذلك، هي التي شنت على قطاع سليمة المعزولة حديثا في الشريان مقاومة صغيرة (قطر ~ 260 ميكرون) على اثنين قنية كوب صغير والضغط. هذه الاستعدادات الشرايين تحتفظ معظم الخصائص في الجسم الحي وتقييم تصريح لهجة الأوعية الدموية في الوقت الحقيقي. هنا نقدم بروتوكول مفصلة لتقييم vasoactivity في ضغط الشرايين الصغيرة مقاومة المساريقي من الفئران. هذه الشرايين تطويرتضيق الأوعية المستدام – ما يقرب من 25٪ من القطر الأقصى – عند الضغط على 70 مم زئبقي. ويمكن استخدام هذه الاستعدادات الشرايين لدراسة تأثير مجمعات الفحص على العلاقة بين الضغط داخل الشريان وvasoactivity وتحديد التغيرات في وظيفة الاوعية الدموية الدقيقة في النماذج الحيوانية من الأمراض المختلفة.

Introduction

الشرايين مقاومة صغيرة هي المحددات الرئيسية للSVR وتلعب دورا هاما في الفيزيولوجيا المرضية لكثير من الأمراض 1،2. أمراض مثل السكري 3، 4 الحمل، نقص التروية، ضخه والسمنة وارتفاع ضغط الدم 6،7 كثيرا ما ترتبط مع وظيفة الاوعية الدموية الدقيقة المتغيرة. يمكن تخطيط العضل الأوعية الدموية ليس فقط توفير معلومات هامة إلى تغيرات في وظيفة الاوعية الدموية الدقيقة في أمراض مختلفة ولكنها تساعد أيضا في تحديد الأهداف العلاجية وتقييم فعالية مركبات فعال في الأوعية. وقد درس وظيفة الأوعية الدموية باستخدام الشرايين الصغيرة المعزولة في ظل ظروف سفينة متساوي القياس أو إسوي الضغط 8. وتقدم وصفا تفصيليا للتخطيط العضل متساوي القياس في أماكن أخرى 9. ولكن هناك اختلافات في البيانات التي تم الحصول عليها من متساوي القياس مقابل الاستعدادات إسوي الضغط 10-12. منذ الاستعدادات الشرايين الضغط تسمح للدراسة وظيفة الاوعية الدموية الدقيقة في ظروف شبه الفسيولوجية، والنتائج التي تم الحصول عليها قد ترتبط بشكل أفضل مع السلوك في الجسم الحي من السرير الوعائي 8،13.

في عام 1902 وصف بايليس أول تأثير الضغط على الأوعية الدموية بطريق قطر 14. ولاحظ في الشرايين مقاومة صغيرة من مختلف سرير الأوعية الدموية من الأرانب والقطط والكلاب التي تم إتباع انخفاض في الضغط من قبل توسع الأوعية، وأعقب زيادة في الضغوط التي تضيق الأوعية. وتعرف هذه الظاهرة باسم استجابة عضلي. لاحظ بايليس والمحققين لاحقا أنه في الظروف إسوي الضغط الشرايين مقاومة صغيرة تتطور انقباض مستمر المعروفة باسم MT 15،16. كلا استجابة عضلي وMT يمكن تقييمها باستخدام الضغط تخطيط العضل (PM) تقنية. يستخدم PM أساسا لتحديد vasoactivity من الشرايين الصغيرة والأوردة والأوعية الأخرى. بالإضافة إلى تقييم أثر فعال في الأوعية المركبات على قطر الأوعية الدموية، وPM – كما يشير الاسم – يستخدم لتقييم داخل الأوعية الفصل الضغط بوساطةفي نفس الفئة على قطر الأوعية الدموية. على مدى العقود القليلة الماضية التقدم في برامج الكمبيوتر، مما عزز المجهر الفيديو والزجاج ماصة سحب، جعلت PM اسهل أداء. ومع ذلك، تشريح قطاعات سليمة قابلة للحياة من الأوعية الدموية الصغيرة لا تزال شاقة وصعبة في بعض الأحيان. نحن هنا الخطوط العريضة لبروتوكول مفصلة لدراسة استجابة عضلي في الشرايين مقاومة المساريقي صغيرة معزولة عن الفئران.

Protocol

الأمثلة المعروضة هنا هي من التجارب التي وافقت عليها IACUC في جورجيا الحكام جامعة – البروتوكول رقم: # 2011-0408 1. إعداد الكواشف إعداد الأسهم حل تشريح: للحصول على 500 مل من محلول المخزون تشري?…

Representative Results

ويرد التمثيل التخطيطي الضغط نموذجي مخطاط العضل انشاء في الشكل 1. ومقنى طرفي السفينة مع micropipette الزجاج والمضمون مع الغرز على الجانبين. عبر أنابيب ومحبس مفتوحة، يتم توصيل قنية واحد إلى الضغط المنظم التي تسيطر عليها مضاعفات. يتم توصيل قنية أخرى إلى محبس مغلقة. وp…

Discussion

خطوات حاسمة، استكشاف الأخطاء وإصلاحها وتعديلها

في إعداد سفينة إسوي الضغط نموذجي، يتم ضغط الشريان في 70 مم زئبق بين اثنين قنية الزجاج مع perfused دافئ (37 درجة مئوية) PSS. بعد 30-45 دقيقة والشرايين تطوير MT، التي تتميز بانخفاض عفوية في قطر أن ي?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويدعم سانديب كورانا من قبل المعاهد الوطنية للصحة (K08DKO81479). ويدعم فيكرانت Rachakonda التي كتبها (T32DK067872).

Materials

Chemical
Acetylcholine Sigma Aldrich A6625
Calcium chloride (CaCl2) Sigma Aldrich 223506
D-(+)-Glucose Sigma Aldrich G5767
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N’,N’-tetra acetic acid (EGTA) Sigma Aldrich E3889
Ethylene diamine tetra acetic acid (EDTA) Sigma Aldrich E9884
HEPES Sigma Aldrich H3784
Magnesium sulfate (MgSO4) Sigma Aldrich M7506
MOPS Sigma Aldrich M5162
Phenylephrine Sigma Aldrich P6126
Potassium chloride (KCl) Sigma Aldrich P3911
Potassium phosphate (KH2PO4) Sigma Aldrich P5655
Sodium bicarbonate (NaHCO3 ) Sigma Aldrich S6014
Sodium chloride (NaCl) Sigma Aldrich S7653
Sodium hydroxide (NaOH) Sigma Aldrich S5881
Sodium nitroprusside Sigma Aldrich 13451
Sodium phosphate monobasic monohydrate (NaH2PO4) Sigma Aldrich S9638
Sodium pyruvate Sigma Aldrich P8574
Table 1.
Physiological salt solution (1000 ml) mM
KCl 4.9 0.365 g
NaCl 112 6.545 g
MgSO4.7H2O 1.2 0.296 g
KH2PO4 1.2 0.163 g
Glucose 11.5 2.072 g
NaHCO3 26 2.184 g
HEPES 10 2.383 g
CaCl2 2 2 ml (1M stock)
De-ionized water 998 ml
Ca2+ free physiological salt solution (100 ml) mM
KCl 4.9 0.036 g
NaCl 112 0.645 g
MgSO4.7H2O 1.2 0.029 g
KH2PO4 1.2 0.016 g
Glucose 11.5 0.207 g
NaHCO3 26 0.218 g
HEPES 10 0.238 g
EGTA 0.39 0.015 g
Sodium nitroprusside 0.1 0.0026 g
De-ionized water 100 ml
Dissection solution, stock (500 ml) mM
NaCl 145 21.18 g
KCl 4.7 0.875 g
MgSO4 1.2 0.739 g
MOPS 2 1.049 g
EDTA 0.02 0.019 g
De-ionized water 500 ml
Working dissection solution (100 ml) mM
Dissection solution stock 20 ml
Glucose 1.2 0.091 g
NaH2PO4 5 0.016 g
Sodium pyruvate 2 0.022 g
CaCl2 2 0.2 ml (1M stock)
De-ionized water 79.8 ml
Table 2. Composition of Experimetnal solutions
Equipment
CCD Monochrome Camera The imaging Source DMK 21AU04
Single inline solution heater Warner Instruments 64-0102
Thermistor Warner Instruments 64-0108
Dual automatic temperature controller Warner Instruments TC-344B
Flaming/Brown micropipette puller Sutter Instruments P-97
Fluorescence System Interface IonOptix model FSI-700
Forceps and scissors World Precision Instruments
Ion Wizard-Core and Analysis IonOptix Ion Wizard 6.0
Laboratory tubing Silastic 508-005
Male Sprague Dawley rat Harlan Laboratories
Master flex console drive Cole-parmer
Milli-Q Plus Ultrapure Water System Millipore ZD5211584
Ophthalmic monofilament nylon suture Ethicon 9007G
Photometry and Dimensioning Microscope Motic AE31
Pressure Servo Controller with peristaltic pump and pressure transducer Living Systems Instrumentation PS-200
Stereomicroscope Nikon Instruments Inc SMZ660
Vessel Chamber Living Systems Instrumentation CH-1
Dissection dish Living Systems Instrumentation DD-90-S
Thin Wall Glass Capillaries World Precision Instruments TW120-6
Microforge Stoelting 51550
Table 3.

References

  1. Christensen, K. L., Mulvany, M. J. Location of resistance arteries. J Vasc Res. 38, 1-12 (2001).
  2. Rietzschel, E. R. Oxidized low-density lipoprotein cholesterol is associated with decreases in cardiac function independent of vascular alterations. Hypertension. 52, 535-541 (2008).
  3. Hill, M. A., Ege, E. A. Active and passive mechanical properties of isolated arterioles from STZ-induced diabetic rats. Effect of aminoguanidine treatment. Diabetes. 43, 1450-1456 (1994).
  4. Osol, G., Cipolla, M. Interaction of myogenic and adrenergic mechanisms in isolated, pressurized uterine radial arteries from late-pregnant and nonpregnant rats. Am J Obstet Gynecol. 168, 697-705 (1993).
  5. Cipolla, M. J., McCall, A. L., Lessov, N., Porter, J. M. Reperfusion decreases myogenic reactivity and alters middle cerebral artery function after focal cerebral ischemia in rats. Stroke. 28, 176-180 (1997).
  6. Ren, Y., et al. Enhanced myogenic response in the afferent arteriole of spontaneously hypertensive rats. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 298, H1769-H1775 (2010).
  7. Hayashi, K., Epstein, M., Saruta, T. Altered myogenic responsiveness of the renal microvasculature in experimental hypertension. J Hypertens. 14, 1387-1401 (1996).
  8. Schubert, R., Mulvany, M. J. The myogenic response: established facts and attractive hypotheses. Clin Sci (Lond). 96, 313-326 (1999).
  9. Bridges, L. E., Williams, C. L., Pointer, M. A., Awumey, E. M. Mesenteric artery contraction and relaxation studies using automated wire myography. J Vis Exp. , (2011).
  10. Buus, N. H., Vanbavel, E., Mulvany, M. J. Differences in Sensitivity of Rat Mesenteric Small Arteries to Agonists When Studied as Ring Preparations or as Cannulated Preparations. British Journal of Pharmacology. 112, 579-587 (1994).
  11. Falloon, B. J., Stephens, N., Tulip, J. R., Heagerty, A. M. Comparison of small artery sensitivity and morphology in pressurized and wire-mounted preparations. Am J Physiol. 268, H670-H678 (1995).
  12. Schubert, R., Wesselman, J. P. M., Nilsson, H., Mulvany, M. J. Noradrenaline-induced depolarization is smaller in isobaric compared to isometric preparations of rat mesenteric small arteries. Pflugers Archiv-European Journal of Physiology. 431, 794-796 (1996).
  13. Khurana, S., Raina, H., Pappas, V., Raufman, J. P., Pallone, T. L. Effects of deoxycholylglycine, a conjugated secondary bile acid, on myogenic tone and agonist-induced contraction in rat resistance arteries. PLoS One. 7, e32006 (2012).
  14. Bayliss, W. M. On the local reactions of the arterial wall to changes of internal pressure. J Physiol. 28, 220-231 (1902).
  15. Hughes, J. M., Bund, S. J. Arterial myogenic properties of the spontaneously hypertensive rat. Exp Physiol. 87, 527-534 (2002).
  16. Mulvany, M. J., Halpern, W. Mechanical properties of vascular smooth muscle cells in situ. Nature. 260, 617-619 (1976).
  17. Raina, H., Zacharia, J., Li, M., Wier, W. G. Activation by Ca2+/calmodulin of an exogenous myosin light chain kinase in mouse arteries. J Physiol. 587, 2599-2612 (2009).
  18. Fenger-Gron, J., Mulvany, M. J., Christensen, K. L. Mesenteric blood pressure profile of conscious, freely moving rats. J Physiol. 488 (Pt 3), 753-760 (1995).
  19. Davis, M. J., Hill, M. A. Signaling mechanisms underlying the vascular myogenic response). Physiol Rev. 79, 387-423 (1999).
  20. Osmond, J. M., Mintz, J. D., Dalton, B., Stepp, D. W. Obesity increases blood pressure, cerebral vascular remodeling, and severity of stroke in the Zucker rat. Hypertension. 53, 381-386 (2009).
  21. Ge, Y., et al. Endogenously produced 20-HETE modulates myogenic and TGF response in microperfused afferent arterioles. Prostaglandins Other Lipid Mediat. 102-103, 42-48 (2013).
  22. Ryan, M. J., et al. Placental ischemia impairs middle cerebral artery myogenic responses in the pregnant rat. Hypertension. 58, 1126-1131 (2011).
  23. Bagi, Z., et al. Type 2 diabetic mice have increased arteriolar tone and blood pressure: enhanced release of COX-2-derived constrictor prostaglandins. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 25, 1610-1616 (2005).
check_url/fr/50997?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Jadeja, R. N., Rachakonda, V., Bagi, Z., Khurana, S. Assessing Myogenic Response and Vasoactivity In Resistance Mesenteric Arteries Using Pressure Myography. J. Vis. Exp. (101), e50997, doi:10.3791/50997 (2015).

View Video