Summary

Aislamiento de cortical Microglia con Inmunofenotipo Conservas y funcionalidad de murinos Neonatos

Published: January 30, 2014
doi:

Summary

Una clave para el éxito de la investigación de la biología microglial es la preservación de immunofunction microglial ex vivo durante el aislamiento del tejido del SNC. Aislar microglia mediante agitación rotatoria resultados en cultivos de células de alta pureza y inmunofuncional según la evaluación de imágenes fluorescentes, inmunocitoquímica y ELISA después de la activación microglia con el lipopolisacárido estímulos proinflamatorias (LPS) y Pam 3 CSK 4 (Pam).

Abstract

El aislamiento de microglia de tejido del SNC es una poderosa herramienta de investigación utilizada para estudiar la biología microglial ex vivo. El presente método detalla un procedimiento para el aislamiento de la microglía de las cortezas murinos neonatales por agitación mecánica con un agitador rotatorio. Este aislamiento microglia método rendimientos microglia corticales altamente puros que exhiben características morfológicas y funcionales indicativos de la microglia en reposo en condiciones normales, no patológicas in vivo. Este procedimiento también preserva el inmunofenotipo de la microglia y la funcionalidad bioquímica como se demuestra por la inducción de cambios morfológicos, la translocación nuclear de la subunidad p65 de NF-kappa B (p65), y la secreción de la citoquina proinflamatoria sello, factor de necrosis tumoral-α (TNF-α ), al lipopolisacárido (LPS) y Pam 3 CSK 4 (Pam) desafíos. Por lo tanto, el presente procedimiento de aislamiento conserva el inmunofenotipo de tanto reposo y Actimicroglia vada, proporcionando un método experimental de la investigación de la biología de la microglía en condiciones ex vivo.

Introduction

Las células microgliales, los macrófagos de vigilancia de la parénquima del SNC, comprenden aproximadamente el 12% de la población total de células del cerebro de los mamíferos adultos. La microglía se derivan de saco vitelino mieloides precursoras células y varían en densidad celular y la morfología en diferentes regiones cytoarchitectural en el SNC adulto 1-5. En un cerebro adulto sano, la microglia son células pequeñas, ramificadas o polares, con procesos dinámicos finos. En contraste con la morfología de los macrófagos periféricos, microglia demuestran un reposo, de bajo perfil fenotipo en cerebros sanos que pueden aparecer como la inactividad celular, sin embargo, en los estudios de imagen in vivo demuestran que los procesos microgliales se extienden de forma dinámica y se retraen para monitorear su microambiente de una manera que recuerda a " muestreo y de estudio "6,7.

La microglía son altamente y diferencialmente sensibles a alteraciones ambientales y fisiopatológicos en el cerebro, de conmutacióndesde un surveillant a un estados considerados como su reposo y activadas comúnmente estatales efectoras, respectivamente. Este interruptor de activación puede estar mediada por la participación de los receptores de membrana de reconocimiento de patrones (PRRS), como los receptores tipo Toll (TLR), que responden a patrones moleculares asociados a patógenos (PAMP), lipoproteínas de saber bacterianas-y derivados-viral , ácidos nucleicos, hidratos de carbono y 8-11. Además de PAMP, parentales también se han mostrado para inducir la activación microglial contra moléculas estériles, no patógenas conocidas como patrones moleculares peligro / daño-asociado (apaga), que representan una perturbación en la homeostasis del SNC, tales como daño celular 12-16. Una vez enganchado, PRRS inician una cascada de señalización intracelular que resulta en cambios en la morfología celular microglial y la expresión génica; específicamente, microglia activada adaptar un fenotipo-ameboide como, translocate la p65 de NF-kappa B subunidad (p65) para el núcleo de la célula, y la upregulate producción y la secreción de citocinas proinflamatorias, tales como factor de necrosis tumoral-α (TNF-α), la interleucina-1 β (IL-1β), junto con especies de oxígeno reactivas (ROS) 16-24. Aunque integral en la respuesta inmune innata del sistema nervioso central, también se han encontrado estas moléculas secretadas para aumentar el estrés oxidativo neuronal, induciendo de ese modo y exacerbando la neurodegeneración en estados de enfermedad tales como Parkinson y la enfermedad de Alzheimer 25-29.

Sin embargo, los mecanismos de activación microglial en estados patológicos no se entienden completamente. Por lo tanto, el aislamiento de microglia es una poderosa herramienta de investigación en estos procesos biológicos, como muchos en funciones in vivo de la activación microglial puede ser recapitulado en la cultura. Varios métodos están disponibles para el aislamiento de la microglía, incluyendo el aislamiento a través de un gradiente de Percoll después de la digestión enzimática de tejido del SNC 30,31. Sin embargo, la digestión enzimática puede alterarel inmunofenotipo de las células mediante la reducción de la superficie celular la expresión del antígeno 32, y los resultados en el rendimiento de células por animal inferior que el método descrito en el presente documento. En concreto, se presenta un rendimiento promedio microglia por corteza cachorro de 7,5 x 10 5 células, mientras que los métodos de aislamiento de todo el SNC ya se ha informado a través de un rendimiento gradiente de Percoll 3-5 x 10 5 células 30,33,34. El presente procedimiento evita el uso de enzimas de digestión mediante el aislamiento de la microglia en base a sus propiedades de baja adherencia, preservando así el inmunofenotipo y la funcionalidad de la microglia.

En el presente estudio, se describe el aislamiento de las células microgliales de mezcla de culturas gliales derivadas de heterocigotos CX3CR1-GFP (CX3CR1-GFP + / -) neonatales, y C57BL / 6 corticales murinas mediante agitación mecánica en un agitador rotatorio, una extensión de anterioridad publicado 24,35 método. Utilizamos la antigua cepa de ratón para facilitar la visualización de la microglia, comoestos ratones expresan GFP bajo el control del locus endógeno CX3CR1 – un promotor específico de los monocitos 36-38. Este método produce microglial culturas altamente puro con un inmunofenotipo conservados ex vivo como se demuestra por cambios morfológicos, la translocación nuclear de p65, y la secreción de TNF-α cuando son desafiados con lipopolisacárido bacteriano (LPS) o Pam 3 CSK 4, TLR4 y TLR1 / 2 agonistas , respectivamente.

Protocol

Antes de iniciar este protocolo, recoger ratones recién nacidos en los días postnatales 1-3 (P1-3) en un recipiente estéril anidado con ropa de cama caja original para protegerlo y abrigarlo. Es importante trabajar de manera rápida y eficiente a través de este protocolo para optimizar el rendimiento de la microglia. Por favor consulte la Tabla 1 para la lista completa de reactivos. 1. Elaboración de instrumentos, medios de cultivo, y platos Preparar 10 ml / …

Representative Results

Conservando el inmunofenotipo y la funcionalidad de la microglia ex vivo durante el aislamiento es crítico para ser capaz de utilizar estas células como un modelo de investigación para la biología de la microglia. Con el fin de demostrar la preservación con éxito de immunofunctionality microglia utilizando el presente método, se aislaron microglia corticales de los recién nacidos P3 (CX3CR1-GFP + / – y ratones C57BL / 6) y los cultivos tratados con LPS o Pam. Como…

Discussion

El presente procedimiento ofrece un método eficaz para el aislamiento de la microglia corticales de ratones neonatales. Este procedimiento tiene un doble beneficio de 1) preservar inmunofenotipo la microglia y la funcionalidad, según lo determinado por proyección de imagen fluorescente, inmunocitoquímica, y ELISA, y, 2) que permite la microglía a madurar en presencia de otras células gliales (astrocitos y oligodentrocytes) antes de la aislamiento, lo que puede facilitar importantes interacciones célula-célula du…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el NIEHS R01ES014470 (KMZ).

Materials

Glucose Sigma G8270 Make 20% Stock Solution with MilliQ water; filter sterilize; store at 4 °C; shelf life: 3-6 months. Used to make MCM and MGM.
Sodium pyruvate 100 mM (100x) Hyclone SH30239.01 Store at 4 °C. Used to make MCM and MGM.
Penicillin/Streptomycin 10,000 units/ml (100x) Gibco 15140-122 Store at -20 °C. Used to make MCM, MGM, MM, and DM.
L-glutamine 200 mM (100x) Gibco 25030-081 Store at -20 °C. Used to make MCM and MGM.
Fetal Bovine Serum (Defined) Hyclone SH30070.03 Filter sterilize; store at -20 °C. Used to make MCM and MGM.
Minimum Essential Medium Earle's (MEM) Cellgro 15-010-CV Without L-glutamine. Contains Earle's salts. Used to make MCM, MGM, and DM.
Horse Serum Gibco 16050 Filter sterilize; store at -20 °C. Used to make MCM and MGM.
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) Cellgro 21-021-CV Without calcium and magnesium. Store at 4 °C. Used to make MM.
HEPES 1 M Gibco 15630-031 Store at 4 °C. Used to make MM.
T-75 Flask Corning 430641
4',6-Diamidino-2-Phenylindole, dilactate (DAPI) Invitrogen D3571 Used to stain cell nucleus.
Rabbit anti-Iba1 Wako 019-19741 Used at 1/750 dilution for ICC staining of Iba1. 
Rabbit anti-NFκB (p65) Abcam 7970 Used at 1/1250 dilution for ICC staining for p65.
Alexafluor 594 Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Invitrogen A11012 Used at 1/1000 dilution for visualization of antigen:antibody complex in ICC.
10 ml Disposable Serological Pipet Fisher Scientific 13-678-11E
50 ml Disposable Centrifuge Tube Fisher Scientific 05-539-8
15 ml Disposible Centrifuge Tube Fisher Scientific 05-539-12
Sterile Polystyrene Petri Dish Fisher Scientific 875713 100 mm x 15 mm
Scissor: Straight Metzembaum (scissor #1) Roboz Surgical RS-6010 1; 5 inch; used for removing head
Scissor: Vannas
(scissor #2)
Fine Science Tools 15000-08 1; non-angled; 2.5mm cutting edge; used to open scalp
Scissor: Student Vannas (scissor #3) Fine Science Tools 91501-09 1; curved; used to mince brain tissue
Forcep: Dumont #7
(forcep #1)
Fine Science Tools 91197-00 2; used to secure nose and remove cortices 
Forcep: Dumont #2
(forcep #2)
Fine Science Tools 11223-20 1; used to remove scalp
Forcep: Dumont #3
(forcep #3)
Fine Science Tools 11231-30 1; used to remove skull
Forcep: Dumont #5a
(forcep #4)
Fine Science Tools 11253-21 1; used to remove meninges
Table of specific equipment
Name of Equipment Name of Company Catalogue Number Comments
Zoom Stereo Dissection Microscope  Olympus SZ4060 Microscope is placed inside Laminar-Horizontal Flow Cabinet
Laminar-Horizontal Flow Cabinet Nuaire NU-201-330
Biological Safety Cabinet Labconco 3440001 Class II
Water-Jacketed CO2 Incubator VWR 97025-836 Set to 37 °C, 5% CO2
Swing-out buckets Fisher Scientific 75006441 To be used with Swing-out rotor
Swing-out Rotor Fisher Scientific 75006445 Max Radius: 19.2 (cm)
Sorvall Legend RT+ Centrifuge
(clinical centrifuge)
Fisher Scientific 75-004-377 With swing-out rotor
AccuSpin Micro 17 microcentrifuge
(tabletop microcentrifuge)
Fisher Scientific S98645 With microliter rotor (24 x 1.5/2.0 ml;
Cat #: 75003524)  

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check_url/fr/51005?article_type=t

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Citer Cet Article
Daniele, S. G., Edwards, A. A., Maguire-Zeiss, K. A. Isolation of Cortical Microglia with Preserved Immunophenotype and Functionality From Murine Neonates. J. Vis. Exp. (83), e51005, doi:10.3791/51005 (2014).

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