Method Article

VIGS-Mediated dépistage génétique avant pour l'identification des gènes impliqués dans la résistance non hôte

DOI:

10.3791/51033

August 23rd, 2013

In This Article

Summary

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Induite par le virus gene silencing est un outil utile pour identifier les gènes impliqués dans la résistance non hôte des plantes. Nous démontrons l'utilisation d'agents pathogènes bactériens exprimant GFPuv dans l'identification des gènes des plantes silencieux sensibles aux pathogènes non hôtes. Cette approche est simple, rapide et facilite le dépistage à grande échelle et un protocole similaire peut être appliquée à l'étude de divers autres interactions plantes-microorganismes.

Abstract

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la résistance aux maladies non hôte des plantes contre les pathogènes bactériens est contrôlé par des voies de défense complexes. La compréhension de ce mécanisme est important pour le développement de plantes résistantes aux maladies durables contre la large gamme d'agents pathogènes. Induite par le virus gene silencing (VIGS) basée en avant génétique dépistage est une approche utile pour l'identification de gènes de défense des plantes conférer une résistance non hôte. Virus rattle du tabac (TRV) à base de vecteur VIGS est vecteur de VIGS la plus efficace à ce jour et a été utilisé efficacement pour faire taire des gènes cibles endogènes dans Nicotiana benthamiana.

Dans ce manuscrit, nous démontrons une approche de dépistage génétique avant pour réduire au silence des clones individuels à partir d'une banque d'ADNc dans N. benthamiana et évaluer la réponse des gènes des plantes silencieux pour compromis résistance non hôte contre les agents pathogènes non hôtes, Pseudomonas syringae pv. tomato T1, P. syringae pv. GlycINEA et X. campestris pv. vesicatoria. Ces bactéries pathogènes sont conçus pour expriment la protéine GFPuv et leurs colonies fluorescents verts peuvent être vus à l'oeil nu sous la lumière UV dans les non hôte d'agents pathogènes des plantes inoculées si le gène cible silence est impliqué dans la transmission de la résistance aux non hôte. Cela facilite l'identification fiable et rapide des gènes des plantes silencieux sensibles aux pathogènes non hôtes. En outre, les informations de gène candidat prometteur peut être connu par séquençage de l'insert de gène de plante dans TRV vecteur. Ici, nous démontrons la capacité haut débit de la génétique avant VIGS-médiation pour identifier les gènes impliqués dans la résistance non hôte. Environ 100 ADNc peuvent être réduits au silence individuellement dans environ deux à trois semaines et leur pertinence dans la résistance non hôte contre plusieurs pathogènes bactériens non hôte peut être étudiée en une semaine par la suite. Dans ce manuscrit, nous énumérons les étapes détaillées impliqués dans ce dépistage. Avant VIGS à médiation génétique screening approche peut être étendue non seulement à l'identification des gènes impliqués dans la résistance non hôte, mais aussi à l'étude des gènes conférant plusieurs tolérances de stress biotiques et abiotiques dans diverses espèces végétales.

Introduction

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résistance non hôte est la résistance de toutes les espèces végétales contre les courses d'un 1,2 pathogène particulier. Ceci confère à large spectre et une résistance durable aux maladies dans les plantes 2,3. Cependant, son mécanisme, en particulier contre les bactéries pathogènes, n'est pas bien comprise 4. Dépistage des mutants ou des plantes silencieux que la résistance non hôte de compromis et de haute profilage de transcription d'débit pour l'identification de gènes exprimés de manière différentielle au cours de la résistance non hôte 5-9 sont deux grandes approches utilisées auparavant pour disséquer....

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Protocol

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1. croissance des plantes et Gene Silencing cible

  1. conditions de croissance des plantes:
    1. Semez N. benthamiana graines sur le sol moins mélange rempotage, Metro-Mix 350 et germer les graines dans une chambre de croissance. Toute autre sol ou hors-sol moyenne peuvent également être utilisés à la place de Metro-Mix.
    2. Transplantés trois semaines vieux plants dans des pots individuels et les cultiver dans une serre maintenue à 21 ± 2 ° C ainsi que d'autres conditions de croissance tels que détaillés dans la littérature précédente 12. Deux à trois jours après la transplantation, les plantes peuvent être utilisées pour TRV....

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Results

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L'objectif majeur de cette étude est de démontrer une méthode pour l'identification facile et précise d'un gène silencieux N. benthamiana qui sont compromises pour la résistance non hôte. Il ya quatre grandes étapes de cette méthodologie. La première étape est de faire taire individuellement grand nombre de gènes en utilisant TRV-VIGS. Nous avions fait taire environ 5.000 gènes 6,18 sur une période d'environ 1,5 ans en utilisant le protocole décrit à la figure 1. Certains des gènes d.......

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Discussion

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l'immunité des plantes limite la croissance des agents pathogènes non hôtes et, par conséquent, peu ou pas de fluorescence verte est émise à partir de plantes de lutte antivectorielle feuilles inoculées avec des agents pathogènes non hôte sous une lumière UV de grande longueur d'onde (figure 3D). Cependant, quand un gène impliqué dans la résistance non hôte est réduit au silence, le gène silencieux plantes favorisent la croissance des agents pathogènes et de fluorescence verte non hôte est vu

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Disclosures

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Nous n'avons rien à révéler.

Acknowledgements

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Ce projet a été financé par la Fondation Samuel Roberts Noble. Les auteurs remercient Mss. Janie Gallaway et Colleen Elles excellente pour l'entretien des plantes, et Mme Katie Brown pour les illustrations. Nous tenons également à remercier Mss. Trina Cottrell, Pooja Uppalapati, Moumita Saha, Swetha Vinukonda et M. Isaac Greenhut de l'aide technique lors de l'établissement de ce protocole.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Plaques à fond en U à 96 puitsBecton Dickinson Labware (Franklin Lakes, NJ, USA)35-3077
Réplicateur à 96 broches en acier inoxydableNalge Nunc International (Naperville, IL, USA)250520
Lampes d’inspection UV à haute intensité, modèle B-100apThomas scientific (Swedesboro, NJ, USA)6283K50ID du fabricant 95-0127-01
Compteurde colonies Stuart SC6Bibby Scientific Limited, Staffordshire, Royaume-UniSC6PLUS Mélange d’empotage
sans sol, Metro-Mix 350SUNGRO Horticulture Distribution, Inc., (Bellevue, WA, États-Unis)
Amorces :
attB1 (GGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCT)
attB2 (GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGT)
Integrated DNA Technologies, Inc (Coralville, IA, États-Unis)synthétisé
, monohydrate VWR international (Radnor, Pennsylvanie, États-Unis)N° CAS 145224-94-8
Acétosyringone (Diméthoxy-4'-hydroxyacétophénone) Sigma Aldrich (St. Louis, MO, États-Unis)D134406
Vac-In-Stuff (Silwet L-77)Lehle Seeds (Round Rock, TX, États-Unis)VIS-30
MES sur mesure

References

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  1. Heath, M. C. Nonhost resistance and nonspecific plant defenses. Currrent Opinion in Plant Biology. 3, 315-319 (2000).
  2. Mysore, K. S., Ryu, C. -M. Nonhost resistance: how much do we know. Trends in Plant Science. 9, 97-104 (2004).
  3. Ellis, J.

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VIGS Forward GeneticsNonhost ResistanceVirus Induced Gene SilencingTobacco Rattle VirusGFP UV ExpressionPseudomonas SyringaeGene Silencing ScreeningcDNA Library ScreeningPlant Defense GenesBacterial Pathogen Assay

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