Summary

शुक्राणुजनन की कोशिकीय विश्लेषण: की लाइव और फिक्स्ड तैयारी<em> ड्रोसोफिला</em> Testes

Published: January 20, 2014
doi:

Summary

अलग और चरण विपरीत और प्रतिदीप्ति माइक्रोस्कोपी द्वारा इमेजिंग के लिए ड्रोसोफिला वृषण नमूने (रहते हैं और फिक्स्ड) तैयार करने के लिए तरीके के साथ साथ वर्णित हैं.

Abstract

ड्रोसोफिला मेलानोगास्टर व्यापक रूप से जैविक प्रक्रियाओं की एक किस्म को स्पष्ट करने के लिए इस्तेमाल किया गया है कि एक शक्तिशाली मॉडल प्रणाली है. उदाहरण के लिए, महिला और ड्रोसोफिला के पुरुष रोगाणु लाइनों दोनों की पढ़ाई चालू अर्धसूत्रीविभाजन की समझ के साथ ही स्टेम कोशिका जीव विज्ञान के लिए बहुत योगदान दिया है. बहुत बढ़िया प्रोटोकॉल ड्रोसोफिला अंडाशय और वृषण 3-12 के अलगाव और इमेजिंग के लिए साहित्य में उपलब्ध हैं. इस के साथ साथ, सूक्ष्म विश्लेषण के लिए विच्छेदन और ड्रोसोफिला वृषण की तैयारी के लिए तरीके एक साथ वीडियो प्रदर्शन के साथ वर्णित हैं. वयस्क पुरुषों के पेट से वृषण अलग और चरण विपरीत माइक्रोस्कोपी द्वारा विश्लेषण के साथ ही प्रतिदीप्ति माइक्रोस्कोपी द्वारा विश्लेषण के लिए वृषण फिक्सिंग और immunostaining के लिए एक प्रोटोकॉल के लिए जीना ऊतक की स्लाइड तैयार करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत कर रहे हैं. इन तकनीकों में डी प्रदर्शन है कि ड्रोसोफिला म्यूटेंट के लक्षण वर्णन में लागू किया जा सकता हैशुक्राणुजनन में साथ ही साथ प्रोटीन की subcellular localizations के दृश्य में efects.

Introduction

ड्रोसोफिला वृषण स्टेम कोशिकाओं का विनियमन, अर्धसूत्रीविभाजन, और शुक्राणु विकास 13-18 सहित कई जैविक प्रक्रियाओं के अध्ययन के लिए एक आदर्श मॉडल प्रणाली रहे हैं. spermatocytes और उनके meiotic spindles बड़े और कोशिकीय विश्लेषण के लिए इसलिए सुविधाजनक हैं, और शुक्राणुजनन के दौरान आराम से सेल चक्र चौकियों सेल चक्र जीन में उत्परिवर्तन के अध्ययन की सुविधा. विभिन्न प्रकार की कोशिकाओं वृषण की लंबाई के साथ आदेश दिया प्रगति में मनाया जा सकता है, और शुक्राणुजनन में कोई व्यवधान इस समग्र व्यवस्था में परिवर्तन हो सकता है. ड्रोसोफिला आनुवंशिक उपकरणों के साथ संयुक्त इन सुविधाओं शुक्राणुजनन 21-23 की उत्परिवर्तनीय विश्लेषण में मदद की है.

ड्रोसोफिला शुक्राणुजनन के चरणों में अच्छी तरह से परिभाषित किया गया है. अल्सर के भीतर synchronously कि विकास जर्मलाइन कोशिकाओं वृषण की लंबाई के साथ शुक्राणुजनन के चरणों के माध्यम से क्रमिक रूप से प्रगति. बो के दौरानmitotic और पुरुष रोगाणु कोशिकाओं की meiotic डिवीजनों वें, cytokinesis बेटी कोशिकाओं (चित्रा 1) अंगूठी नहरों के रूप में जाना cytoplasmic पुलों से जुड़े रहते हैं कि अधूरे ऐसी होती है. वृषण के शिखर टिप प्राथमिक spermatocytes के 16 सेल अल्सर उत्पन्न करने के लिए अधूरा cytokinesis साथ चार mitotic डिवीजनों से गुजरना जो spermatogonial कोशिकाओं, को जन्म देता है कि germline स्टेम कोशिकाओं की आबादी शामिल है. Premeiotic एस चरण के बाद, प्राथमिक spermatocytes G2, ~ 90 घंटा जो सेलुलर मात्रा बढ़ जाती है ~ 25 गुना के दौरान की एक लम्बी विकास की अवधि में प्रवेश. अर्धसूत्रीविभाजन मैं और क्रमशः माध्यमिक spermatocytes और अगुणित spermatids के 64 सेल अल्सर, के 32 सेल अल्सर के गठन में अर्धसूत्रीविभाजन II परिणामों के माध्यम से प्रगति. अपरिपक्व, गोल spermatids परिपक्व शुक्राणु के लिए फार्म का व्यापक सेलुलर remodeling गुजरना. पोस्ट meiotic कोशिकाओं, elongating के बंडलों और परिपक्व spermatids विशेष रूप से, वृषण की मात्रा का ज्यादा कब्जा करना था.

टीमादा मक्खियों के लिए कार्यात्मक शुक्राणु की वह सफल परिवहन कई बनती संरचनाओं (वृषण, लाभदायक vesicles, और सहायक ग्रंथियों) और एक भी उद्गार वाहिनी से बना है जो पुरुष प्रजनन प्रणाली, चित्रा (2) के विभिन्न भागों के बीच समन्वय की आवश्यकता है. शुक्राणु वृषण भीतर उत्पादन और शयन 24 तक लाभदायक vesicles के भीतर जमा हो जाती है. सहायक ग्रंथियों लाभदायक तरल पदार्थ का उत्पादन है कि स्रावी कोशिकाओं होते हैं. लाभदायक vesicles से पलायन शुक्राणु लाभदायक vesicles और सहायक ग्रंथियों दोनों से जुड़ा है जो उद्गार वाहिनी, भीतर लाभदायक तरल पदार्थ के साथ मिश्रित कर रहे हैं. शुक्राणु और लाभदायक तरल पदार्थ के मिश्रण यह अंततः महिला पुरुष के पेट से 25 के पीछे के अंत में स्थित उद्गार बल्ब के माध्यम से उड़ान भरने की योनि में पुरुष के बाहर पंप है. लाभदायक तरल पदार्थ के भीतर प्रोटीन प्रतिनिधि में spermathecae के रूप में जाना विशेष अंगों के भीतर शुक्राणु के लंबे समय तक भंडारण के लिए आवश्यक हैंड्रोसोफिला महिलाओं की 26 roductive पथ.

ड्रोसोफिला वृषण का अलगाव और शुक्राणुजनन के विभिन्न चरणों में कोशिकाओं के दृश्य के लिए बहुत बढ़िया तरीकों वैज्ञानिक साहित्य 3-12 में उपलब्ध हैं. हम यहाँ एक साथ वीडियो प्रदर्शन के साथ इन प्रोटोकॉल का उदाहरण पेश करके ज्ञान के इस शरीर को जोड़ें. चरण विपरीत माइक्रोस्कोपी के लिए जीना वृषण नमूनों की तैयारी के लिए प्रोटोकॉल एक पहले से वर्णित विधि 27 पर आधारित है. formaldehyde के निर्धारण और वृषण के immunostaining के लिए प्रोटोकॉल भी एक पहले से वर्णित विधि 28 पर आधारित है. यहाँ बताया दृष्टिकोण (उदाहरण के लिए, ड्रोसोफिला शुक्राणुजनन के दौरान, एक शून्य से अंत निर्देशित microtubule मोटर dynein की भूमिका का आकलन करने के लिए) ड्रोसोफिला शुक्राणुजनन के कई अध्ययनों में इस्तेमाल किया गया है.

बुनियादी प्रोटोकॉल के अलावा, सुझाव varyin के लिए प्रदान की जाती हैंजी विच्छेदन spermatogonia, spermatocytes, या परिपक्व शुक्राणु के लिए समृद्ध करने के लिए इतनी के रूप में. इस तरह के अल्सर कि वृषण प्रसंस्करण के लिए विभिन्न तरीकों बरकरार रहेगा या वर्णित हैं जरूरत के रूप में बाधित कर रहे हैं. एक मॉडल प्रणाली के रूप में ड्रोसोफिला वृषण का उपयोग में एक फायदा ड्रोसोफिला oocytes और भ्रूण की तुलना में, एंटीबॉडी और रंजक आसानी वृषण से उनके प्रसार निम्नलिखित कोशिकाओं घुसना कर सकते हैं, और कम धोने कदम जरूरी हैं, वह है, इस प्रकार, प्रोटोकॉल एक अपेक्षाकृत में प्रदर्शन किया जा सकता है कम समय.

Protocol

1. Testes विच्छेदन सीओ 2 की एक धारा का उपयोग कर एक बोतल या शीशी में मक्खियों anesthetize और एक मक्खी पैड को हस्तांतरण. क्रमबद्ध एक छोटे तूलिका का उपयोग कर एक विदारक खुर्दबीन के नीचे मक्खियों, और वांछित जीन…

Representative Results

ड्रोसोफिला पुरुष प्रजनन अंगों के एक ठीक से विच्छेदित जोड़ी का एक उदाहरण चित्रा 2A में दिखाया गया है. वयस्क पुरुष मक्खी के पेट से निकाल testes आम तौर पर लाभदायक vesicles की एक जोड़ी (नीला, चित्रा 2A ')…

Discussion

जंगली प्रकार मक्खियों के वृषण आसानी के कारण उनके पीले रंग (इसके विपरीत पड़ोसी सफेद ऊतकों) को पहचाना जा सकता है, सफेद उत्परिवर्ती मक्खियों के वृषण सफेद होते हैं और इस तरह कभी – कभी पेट के साथ भ्रमित कि?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखकों ली प्रयोगशाला में करेन हेल्स से विशेषज्ञ सलाह के साथ शुक्राणुजनन के अध्ययन के लिए इन स्वीकार किए जाते हैं तरीकों की स्थापना के लिए माइकल एंडरसन को धन्यवाद देना चाहूंगा. एच. ओडीए और वाई Akiyama-ओडीए उदारता γ ट्यूबिलिन-GFP शेयर उड़ प्रदान की. इस काम के लाल (GM074044) के लिए एक एनआईएच R01 अनुदान द्वारा समर्थित किया गया.

Materials

Sylgard World Precision Instruments SYLG184 Two-part silicon elastomer for making silicone-coated dissection dish from Kimax Petri dish
PAP pen Fisher Scientific NC9888126 Ted Pella #22309
Clear nail protector Wet n Wild 7780235001
ProLong Gold Antifade Reagent with DAPI Life Technologies P36931
Mouse anti-gamma-tubulin antibody (clone GTU-88) Sigma-Aldrich T6557
Cy3-AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG  Jackson ImmunoResearch 115-165-003
Triton X-100 Fisher Scientific BP151-100
Ethanol Fisher Scientific AC61511-0040
Methanol Fisher Scientific A412-4
16% Formaldehyde Thermo Fisher Scientific 28908
Sigmacote Sigma-Aldrich SL2 Use according to manufacturer's directions to siliconize cover slips
DAPI Sigma-Aldrich D-9542 0.5 mg/ml in 75% ethanol; store at -20°C
NaCl Research Products International Corp. S23020
Na2HPO4 Sigma-Aldrich S9763
NaH2PO4 Sigma-Aldrich S0751
Kimwipes delicate task wipers Fisher Scientific S47299
BSA Research Products International Corp. A30075 Molecular biology grade
Glass Coplin staining jar, screw cap Electron Microscopy Sciences 70315
Single frosted microscope slides Corning 2948-75X25
Poly-L-lysine coated microscope slides Polysciences, Inc. 22247-1 Optional (to replace untreated microscope slides )
Square cover glass Corning 2865-22
Razor blades Fisher Scientific 12-640
Kimax Petri dish Fisher Scientific S31473 Kimble #23060 10015 EMD
Forceps Dumont 52100-51S Pattern 5 INOX
Name of Equipment Company
Stemi 2000-CS stereoscope Carl Zeiss
Eclipse 80i Nikon
Plan-Fluor 40x objective Nikon
Axiophot Carl Zeiss
Plan-Neofluar Ph2 40x objective Carl Zeiss

References

  1. McKim, K. S., Joyce, E. F., Jang, J. K. Cytological analysis of meiosis in fixed Drosophila ovaries. Methods Mol. Biol. 558, 197-216 (2009).
  2. Weil, T. T., Parton, R. M., Davis, I. Preparing individual Drosophila egg chambers for live imaging. J. Vis. Exp. , (2012).
  3. Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. . Drosophila Protocols. , 87-109 (2000).
  4. Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. Immunostaining of Drosophila testes. Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, 1273-1275 (2011).
  5. Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. Methanol-acetone fixation of Drosophila testes. Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, 1270-1272 (2011).
  6. Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. Preparation of live testis squashes in Drosophila. Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, (2011).
  7. Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. Formaldehyde fixation of Drosophila testes. Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, (2012).
  8. Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. Paraformaldehyde fixation of Drosophila testes. Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, 102-104 (2012).
  9. Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. F-actin staining of Drosophila testes. Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, 105-106 (2012).
  10. Kibanov, M. V., Kotov, A. A., Olenina, L. V. Multicolor fluorescence imaging of whole-mount Drosophila testes for studying spermatogenesis. Anal. Biochem. 436, 55-64 (2013).
  11. Singh, S. R., Hou, S. X. Immunohistological techniques for studying the Drosophila male germline stem cell. Methods Mol. Biol. 450, 45-59 (2008).
  12. Zamore, P. D., Ma, S. Isolation of Drosophila melanogaster Testes. J. Vis. Exp. (2641), (2011).
  13. de Cuevas, M., Matunis, E. L. The stem cell niche: lessons from the Drosophila testis. Development. 138, 2861-2869 (2011).
  14. Fabian, L., Brill, J. A. Drosophila spermiogenesis: Big things come from little packages. Spermatogenesis. 2, 197-212 (2012).
  15. Giansanti, M. G., Sechi, S., Frappaolo, A., Belloni, G., Piergentili, R. Cytokinesis in Drosophila male meiosis. Spermatogenesis. 2, 185-196 (2012).
  16. Matunis, E. L., Stine, R. R., de Cuevas, M. Recent advances in Drosophila male germline stem cell biology. Spermatogenesis. 2, 137-144 (2012).
  17. McKee, B. D., Yan, R., Tsai, J. H. Meiosis in male Drosophila. Spermatogenesis. 2, 167-184 (2012).
  18. Zoller, R., Schulz, C. The Drosophila cyst stem cell lineage: Partners behind the scenes. Spermatogenesis. 2, 145-157 (2012).
  19. Cenci, G., Bonaccorsi, S., Pisano, C., Verni, F., Gatti, M. Chromatin and microtubule organization during premeiotic, meiotic and early postmeiotic stages of Drosophila melanogaster spermatogenesis. J. Cell Sci.. 107, 3521-3534 (1994).
  20. Rebollo, E., Gonzalez, C. Visualizing the spindle checkpoint in Drosophila spermatocytes. EMBO Rep. 1, 65-70 (2000).
  21. Castrillon, D. H., et al. Toward a molecular genetic analysis of spermatogenesis in Drosophila melanogaster: characterization of male-sterile mutants generated by single P element mutagenesis. Genetics. 135, 489-505 (1993).
  22. Giansanti, M. G., et al. Genetic dissection of meiotic cytokinesis in Drosophila males. Mol. Biol. Cell. 15, 2509-2522 (2004).
  23. Wakimoto, B. T., Lindsley, D. L., Herrera, C. Toward a comprehensive genetic analysis of male fertility in Drosophila melanogaster. Genetics. 167, 207-216 (2004).
  24. Fuller, M. T., Bate, M., Martinez-Arias, A. . The Development of Drosophila melanogaster. , 71-147 (1993).
  25. Wolfner, M. F. Tokens of love: functions and regulation of Drosophila male accessory gland products. Insect Biochem. Mol. Biol. 27, 179-192 (1997).
  26. Tram, U., Wolfner, M. F. Male seminal fluid proteins are essential for sperm storage in Drosophila melanogaster. Genetics. 153, 837-844 (1999).
  27. Kemphues, K. J., Raff, E. C., Raff, R. A., Kaufman, T. C. Mutation in a testis-specific beta-tubulin in Drosophila: analysis of its effects on meiosis and map location of the gene. Cell. 21, 445-451 (1980).
  28. Gunsalus, K. C., et al. Mutations in twinstar, a Drosophila gene encoding a cofilin/ADF homologue, result in defects in centrosome migration and cytokinesis. J. Cell Biol. 131, 1243-1259 (1995).
  29. Anderson, M. A., et al. Asunder is a critical regulator of dynein-dynactin localization during Drosophila spermatogenesis. Mol. Biol. Cell. 20, 2709-2721 (2009).
  30. Sitaram, P., Anderson, M. A., Jodoin, J. N., Lee, E., Lee, L. A. Regulation of dynein localization and centrosome positioning by Lis-1 and asunder during Drosophila spermatogenesis. Development. 139, 2945-2954 (2012).
  31. Martins, A. R., Machado, P., Callaini, G., Bettencourt-Dias, M. Microscopy methods for the study of centriole biogenesis and function in Drosophila. Methods in cell biology. 97, 223-242 (2010).
  32. Maimon, I., Gilboa, L. Dissection and staining of Drosophila larval ovaries. J. Vis. Exp. (10), (2011).
  33. Gonzalez, C., Casal, J., Ripoll, P. Relationship between chromosome content and nuclear diameter in early spermatids of Drosophila melanogaster. Genet. Res. 54, 205-212 (1989).
  34. Liebrich, W. The effects of cytochalasin B and colchicine on the morphogenesis of mitochondria in Drosophila hydei during meiosis and early spermiogenesis. An in vitro study. Cell Tissue. Res. 224, 161-168 (1982).
  35. Wong, R., et al. PIP2 hydrolysis and calcium release are required for cytokinesis in Drosophila spermatocytes. Curr. Biol. 15, 1401-1406 (2005).
  36. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118, 401-415 (1993).
  37. White-Cooper, H. Tissue cell type and stage-specific ectopic gene expression and RNAi induction in the Drosophila testis. Spermatogenesis. 2, 11-22 (2012).
  38. Rebollo, E., Llamazares, S., Reina, J., Gonzalez, C. Contribution of noncentrosomal microtubules to spindle assembly in Drosophila spermatocytes. PLoS Biol. 2, (2004).
  39. Cheng, J., Hunt, A. J. Time-lapse live imaging of stem cells in Drosophila testis. Curr. Protoc. Stem Cell. Biol.. 2, 10-1002 (2009).
  40. Sheng, X. R., Matunis, E. Live imaging of the Drosophila spermatogonial stem cell niche reveals novel mechanisms regulating germline stem cell output. Development. 138, 3367-3376 (2011).
  41. Belloni, G., et al. Mutations in Cog7 affect Golgi structure, meiotic cytokinesis and sperm development during Drosophila spermatogenesis. J. Cell Sci. 125, 5441-5452 (2012).
  42. Moon, S., Cho, B., Min, S. H., Lee, D., Chung, Y. D. The THO complex is required for nucleolar integrity in Drosophila spermatocytes. Development. 138, 3835-3845 (2011).
  43. Wang, Z., Mann, R. S. Requirement for two nearly identical TGIF-related homeobox genes in Drosophila spermatogenesis. Development. 130, 2853-2865 (2003).
check_url/51058?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sitaram, P., Hainline, S. G., Lee, L. A. Cytological Analysis of Spermatogenesis: Live and Fixed Preparations of Drosophila Testes. J. Vis. Exp. (83), e51058, doi:10.3791/51058 (2014).

View Video