Хельсинки Крыса микрохирургии Боковина Аневризма Модель
Summary
Microsurgical sidewall aneurysms in rats are created by end-to-side anastomosis of an aortic graft to the abdominal aorta. We present step-by-step instructions and discuss anatomical and surgical details for successful experimental saccular aneurysm creation.
Abstract
Экспериментальные мешотчатых модели аневризмы необходимы для тестирования новых вариантов хирургического и эндоваскулярного лечения и устройств до их введения в клиническую практику. Кроме того, экспериментальные модели необходимы для выяснения сложного аневризмы биологию, ведущий к разрыву мешотчатые аневризмы.
Несколько различных видов экспериментальных моделей для мешотчатые аневризмы были созданы в различных видов. Многие из них, однако, требует специальных навыков, дорогостоящего оборудования или специальных условий, что ограничивает их широкое применение. Простой, надежный и недорогой экспериментальной модели необходим в качестве стандартизированного инструмента, который может быть использован в стандартизованной форме в различных учреждениях.
Микрохирургическая крысы в животе модель аорты боковины аневризма сочетает в себе возможность учиться как новые стратегии эндоваскулярного лечения и молекулярную основу аневризмы биологии в стандартизированный и недорогойманера. Стандартные трансплантаты с помощью формы, размера и геометрии собирают из нисходящей грудной аорты крысы-донора, а затем пересадили в сингенной крысы-реципиента. Аневризмы ушивают конца в сторону с непрерывным или прерывается 9-0 нейлоновые швы, чтобы инфраренальной брюшной аорты.
Мы представляем шаг за шагом процедурные инструкции, информацию о необходимой техникой, и обсудить важные анатомические и хирургические детали для успешного микрохирургической создания брюшной аорты боковины аневризмы у крыс.
Introduction
Разрыв саккулярной аневризмы мозговой артерии вызывает опасное для жизни кровотечение приводит к инсульту, постоянного неврологических повреждений или смерти. Разрыв может быть предотвращено либо микрохирургической отсечения или эндоваскулярного аневризмы окклюзии. Еще не было установлено медицинское лечение, чтобы предотвратить рост аневризмы и разрыва.
Экспериментальные модели для мешотчатые аневризмы необходимы для изучения биологии артериальных аневризм и для тестирования новых терапевтических устройств и стратегий. Для этих целей, несколько различных моделей в различных видов были разработаны и опубликованы 1. Более крупные модели аневризмы в свиней, собак и кроликов предпочтительно использовать для проверки эндоваскулярных инновации в комплексном аневризмы архитектуры 1,2. Мышиные модели аневризмы, с другой стороны, позволяют тестирования исследовательские вопросы в генетически модифицированных видов 3,4 и облегчения разъяснения аневризмы биологии в Клеточная и молекулярнаяуровень гораздо лучше, чем крупных видов 1. Хотя эндоваскулярная транс-сонной и развертывание транс-подвздошной устройства ограничен больших крыс (> 400-500 г) и стентов меньше, чем 2,0 мм и 1,5 мм в диаметре 5,6, стенты также могут быть размещены путем прямого введения в брюшной аорты сегмент укрывательство экспериментальные аневризмы. Предыдущая работа с использованием крысу микрохирургическая брюшной аорты боковины аневризма модели продемонстрировала свою целесообразность в тестирование новых эмболические устройств и его использование в изучении молекулярных основ аневризмы биологии 3,7.
Многие из опубликованных в настоящее время экспериментальных мешотчатых моделей аневризмы требует дорогостоящего оборудования, специальных предприятиях (стерильные операционные номера с рентгеноскопии возможностей), интервенционной радиологии компетентность, или использование дорогих видов. Эти требования ограничивают широкое использование этих моделей, и привести к использованию различных моделей в разных лабораториях, которые мАКЕС сравнения данных и мета-анализ трудно, если не невозможно. Простой, надежный и недорогой экспериментальной модели необходим в качестве стандартизированного инструмента, который может быть использован в стандартизованной форме в различных лабораторий, чтобы получить сопоставимые результаты из разных учреждений. Для этого, мы создали аорты крысы боковины саккулярная артериальной аневризмы модель.
Цель этого доклада заключается в представлении шаг за шагом процедурные инструкции, информацию о необходимой техникой, а также обсудить важные анатомические и хирургические характеристики для успешного микрохирургической создания брюшной аорты боковины аневризм у крыс.
Protocol
Representative Results
Discussion
Прогресс в нашем понимании комплексной биологии саккулярной аневризмы мозговой артерии зависит от анализа эпидемиологических и клинических данных, дополненных лабораторных исследований на образцах пациентов и экспериментальных работ на животных моделях 3,12,13.
…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
The authors are solely responsible for the design and conduct of the presented study. Dr. Marbacher was supported by a grant from the Swiss National Science Foundation (PBSKP3-123454). The authors declare no conflict of interests.
Author contributions to the study and manuscript preparation include the following. Conception and design: SM, JM, JF. Acquisition of data: SM, EA, JF. Analysis and interpretation of data: SM, JF, JM. Drafting the article: SM, JF, JM. Critically revising the article: JH, MN. Statistical analysis: SM, JF. Study supervision: JF, JH, MN.
Materials
| Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
| Medetomidine | Any genericon | ||
| Ketamin | Any genericon | ||
| Buprenorphine | Any genericon | ||
| Phosphate buffered saline | |||
| Sodium dodecyl sulfate (0.1%) | |||
| 3-0 resorbable suture | Ethicon Inc., USA | VCP824G | |
| 5-0 non absorbable suture | Ethicon Inc., USA | 8618G | |
| 6-0 non absorbable silk suture | B. Braun, Germany | C0761060 | |
| 9-0 nylon micro suture | B. Braun, Germany | G1118471 | |
| Spongostan | Ethicon Inc., USA | MS0002 | |
| Operation microscope | Leica , Germany | M651 | |
| Digital microscope camera | Sony, Japan | SSC-DC58AP | |
| Standard surgical instruments | B. Braun, Germany | Multiple | See protocol 1.4 |
| Microsurgical instruments | B. Braun, Germany | Multiple | See protocol 1.5 |
| Vascular clip applicator | B. Braun, Germany | FT495T | |
| Temporary vascular clamps | B. Braun, Germany | FT250T | |
| Graph Pad Prism statistical software | GraphPad Software, San Diego, California, USA | V 6.02 for Windows |
References
- Bouzeghrane, F., et al. In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review. AJNR Am J Neuroradiol. 31, 418-423 (2010).
- Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. AJNR. American journal of neuroradiology. 32, 772-777 (2011).
- Frosen, J., et al. Contribution of mural and bone marrow-derived neointimal cells to thrombus organization and wall remodeling in a microsurgical murine saccular aneurysm model. Neurosurgery. 58, 936-944 (2006).
- Marjamaa, J., et al. Mice with a deletion in the first intron of the Col1a1 gene develop dissection and rupture of aorta in the absence of aneurysms: high-resolution magnetic resonance imaging. at 4.7 T, of the aorta and cerebral arteries. Magn Reson Med. 55, 592-597 (2006).
- Oyamada, S., et al. Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis. The Journal of surgical research. , 166-191 (2011).
- Lowe, H. C., James, B., Khachigian, L. M. A novel model of in-stent restenosis: rat aortic stenting. Heart. 91, 393-395 (2005).
- Marjamaa, J., et al. Occlusion of neck remnant in experimental rat aneurysms after treatment with platinum- or polyglycolic-polylactic acid-coated coils. Surg Neurol. 71, 458-465 (2009).
- . with the support of the NC3Rs. Aseptic Technique in Rodent Surgery. , (2014).
- Bernal, J., et al. Guidelines for rodent survival surgery. Journal of investigative surgery : the official journal of the Academy of Surgical Research. 22, 445-451 (2009).
- Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new. , (2011).
- Marbacher, S., et al. Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model. Stroke. 45, 248-254 (2014).
- Frosen, J., et al. Remodeling of saccular cerebral artery aneurysm wall is associated with rupture: histological analysis of 24 unruptured and 42 ruptured cases. Stroke. 35, 2287-2293 (2004).
- Frosen, J., et al. Saccular intracranial aneurysm: pathology and mechanisms. Acta neuropathologica. , 123-773 (2012).
- Ysuda, R., Strother, C. M., Aagaard-Kienitz, B., Pulfer, K., Consigny, D. A large and giant bifurcation aneurysm model in canines: proof of feasibility. AJNR Am J Neuroradiol. 33, 507-512 (2012).
- Sherif, C., et al. Microsurgical venous pouch arterial-bifurcation aneurysms in the rabbit model: technical aspects. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).
- Marjamaa, J., et al. High-resolution TOF MR angiography at 4.7 Tesla for volumetric and morphologic evaluation of coiled aneurysm neck remnants in a rat model. Acta Radiol. 52, 340-348 (2011).
