Summary

Design und Analyse des Temperaturpräferenzverhaltens und seines circadianen Rhythmus in Drosophila

Published: January 13, 2014
doi:

Summary

Wir haben vor kurzem eine neuartige Drosophila circadiane Ausgabe, Temperaturpräferenz Rhythmus (TPR), in dem die bevorzugte Temperatur in Fliegen steigt während des Tages und fällt während der Nacht identifiziert. TPR wird unabhängig von einem anderen zirkadianen Ausgang, der Motoraktivität, reguliert. Hier beschreiben wir das Design und die Analyse von TPR in Drosophila.

Abstract

Die zirkadiane Uhr reguliert viele Aspekte des Lebens, einschließlich Schlaf, Bewegungsaktivität, und Körpertemperatur (BTR) Rhythmen1,2. Wir identifizierten vor kurzem eine neuartige Drosophila zirkadiane Ausgabe, genannt die Temperaturpräferenz Rhythmus (TPR), in dem die bevorzugte Temperatur in Fliegen steigt während des Tages und fällt in der Nacht 3. Überraschenderweise werden die TPR und die motorische Aktivität durch verschiedene zirkadiane Neuronen3gesteuert. Drosophila-Bewegungsaktivität ist eine bekannte zirkadiane Verhaltensleistung und hat starke Beiträge zur Entdeckung vieler konservierter zirkadianer Uhrgene und-mechanismen4 geleistet. Daher wird das Verständnis von TPR zur Identifizierung bisher unbekannter molekularer und zellulärer zirkadianer Mechanismen führen. Hier beschreiben wir, wie der TPR-Assay durchgeführt und analysiert wird. Diese Technik ermöglicht nicht nur die Sezieren der molekularen und neuronalen Mechanismen von TPR, sondern bietet auch neue Einblicke in die grundlegenden Mechanismen der Gehirnfunktionen, die verschiedene Umweltsignale integrieren und tierseuchenverhalten regulieren. Darüber hinaus deuten unsere kürzlich veröffentlichten Daten darauf hin, dass die Fliegen-TPR Merkmale mit dem Säugetier BTR3teilt. Drosophila sind Ektothermen, bei denen die Körpertemperatur in der Regel verhaltensreguliert ist. Daher ist TPR eine Strategie, die verwendet wird, um eine rhythmische Körpertemperatur in diesen Fliegen5-8zu erzeugen. Wir glauben, dass eine weitere Erforschung von Drosophila TPR die Charakterisierung der Mechanismen erleichtern wird, die der Körpertemperaturkontrolle bei Tieren zugrunde liegen.

Introduction

Temperatur ist ein allgegenwärtiger Umwelthinweis. Tiere zeigen eine Vielzahl von Verhaltensweisen, um schädliche Temperaturen zu vermeiden und bequeme zu suchen. Drosophila weisen ein robustes Temperaturpräferenzverhaltenauf 6,7. Wenn Fliegen in einen Temperaturgradienten von 18-32 °C freigesetzt werden, vermeiden die Fliegen sowohl warme als auch kalte Temperaturen und wählen schließlich eine bevorzugte Temperatur von 25 °C am Morgen3. Die Warmtemperatursensoren sind eine Reihe von thermosensorischen Neuronen, AC-Neuronen, die Drosophila transienten Rezeptor-Potential (TPR) Kanal, TRPA16,9express. Die Kalttemperatursensoren befinden sich in den 3. Antennensegmenten, da das Abtragen der 3. Antennensegmente das Fehlen von Kalttemperaturvermeidung6verursacht. Kürzlich wurde das TRPP-Protein Brivido (Brv) identifiziert10. Da Brv in den 3. Antennensegmenten exprimiert wird und die Kalterkennung vermittelt, ist Brv ein mögliches Kaltsensormolekül, das für das Temperaturpräferenzverhalten entscheidend ist. Insgesamt verwenden die Fliegen diese beiden Temperatursensoren, um die warmen und kalten Temperaturen zu vermeiden und eine bevorzugte Temperatur zu finden.

Während Säugetiere Wärme erzeugen, um ihre Körpertemperatur zu regulieren, passen Ektoremen ihre Körpertemperaturen in der Regel an die Umgebungstemperatur11an. Einige Ektothermen sind dafür bekannt, ein tägliches TPR-Verhalten zu zeigen, von dem angenommen wird, dass es eine Strategie für die Ektothermen ist, ihre BTR12zu regulieren. Um festzustellen, ob die Fliegen TPR aufwiesen, wiederholten wir die Temperaturpräferenz-Verhaltensanalyse an verschiedenen Punkten während einer Spanne von 24 Stunden. Wir fanden heraus, dass Drosophila eine tägliche TPR aufweisen, die morgens niedrig und abends hoch ist und einem ähnlichen Muster wie BTR beim Menschen folgt13.

In Drosophilagibt es 150-Uhr-Neuronen im Gehirn. Die Uhrenneuronen, die die motorische Aktivität regulieren, werden M- und E-Oszillatoren genannt. Interessanterweise regulieren M- und E-Oszillatoren jedoch tPR nicht, stattdessen zeigten wir, dass DN2-Uhrenneuronen im Gehirn TPR regulieren, aber nicht die motorische Aktivität. Diese Daten deuten darauf hin, dass TPR unabhängig von der Motoraktivität reguliert wird. Insbesondere ist die BTR von Säugetieren auch unabhängig von der motorischen Aktivität reguliert. Ablationsstudien an Ratten zeigen, dass BTR durch spezifische SCN-Neuronen gesteuert wird, die auf eine andere Teilmenge subparaventrikulärer Zonenneuronen abzielen als solche, die die motorische Aktivität steuern14. Daher sehen unsere Daten die Möglichkeit in Betracht, dass die Säugetier-BTR und die Fliege TPR evolutionär konserviert sind3, da sowohl Fliegen-TPR als auch Säugetier-BTR zirkadiane uhrabhängige Temperaturrhythmen aufweisen, die unabhängig von der motorischen Aktivität reguliert werden.

Hier beschreiben wir die Details, wie man den TPR-Verhaltenstest in Drosophilaanalysiert. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung nicht nur des molekularen Mechanismus und der neuronalen Schaltkreise von TPR, sondern auch, wie das Gehirn verschiedene Umwelthinweise und innere biologische Uhren integriert.

Protocol

1. Vorbereitung von Fliegen Light Dark (LD) Experimente Heben Sie Fliegen in Inkubatoren (25 °C/40-60%relative Luftfeuchtigkeit (RH)) unter lichten 12 Std/dunkel 12 Std.(LD) Zyklen. Die Lichtintensität der Inkubatoren beträgt 500-1.000 Lux. Zwei Inkubatoren sind notwendig, um die Verhaltenstests über einen Zeitraum von 24 Stunden abzuschließen. Beide Inkubatoren sollten ein programmierbares Licht mit ON OFF-Funktionen haben. Sie sollten auch feste Türen haben, die nic…

Representative Results

Ein Beispiel für den Temperaturpräferenzrhythmus ist in Abbildung 5dargestellt. Wenn das Verhaltensverfahren erfolgreich durchgeführt wird, sollten die Fliegen eine TPR aufweisen, in der sie eine niedrige Temperatur am Morgen und höhere Temperatur am Abend bevorzugen. Der Anstieg der Temperaturpräferenz von 1-1,5 °C während des Tages sollte im Laufe des Tages beobachtet werden, unabhängig vom genetischen Hintergrund, da wir gezeigt haben, dass w1118, yw und Canton…

Discussion

Hier veranschaulichen wir die Details des Temperaturpräferenzverhaltensapparates und die Analyse des TPR-Verhaltens. Drosophila weist die markanten, robusten und reproduzierbaren Eigenschaften des uhrgesteuerten TPR auf. Unsere Daten deuten jedoch darauf hin, dass mindestens zwei Faktoren, Umgebungslicht und Alter, die TPR-Verhaltensphänotypen erheblich stören.

Wir beobachten, dass Licht die Temperaturpräferenz in Drosophilaerheblich beeinflusst. Es stimmt mit der Tatsach…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir sind Drs. Aravinthan Samuel und Marc Gershow dankbar, die an der Entwicklung der ursprünglichen Version des Verhaltensapparates mitgewirkt haben, und Matthew Batie, der den Verhaltensapparat modifizierte. Diese Forschung wurde von Trustee Grant von Cincinnati Children es Hospital, JST/PRESTO, March of Dimes und NIH R01 GM107582 to F.N.H. unterstützt.

Materials

Bright Lab Jr. Safelight Amazon #B00013J8UY Red light for dark rooms
Rain X SOPUS products Water repellent: Apply the plexiglass cover
C-Clamp Home Depot
Temperature/hygrometer Fisher 15-077-963
Peltier devices TE Technology, Inc. HP-127-1.4-1.15-71P
Thermometer Fluke Fluke 52II
Bench top controller Oven Industries 5R6-570-15R and 5R6-570-24R
Temperature sensor probe Oven Industries TR67-32
Generic 480 Watt ATX power supply computer cooling system
MCR220-QP-RES Dual 120 mm Radiator with reservoir  Swiftech computer cooling system
MCP350 In-Line 12V DC pump Swiftech computer cooling system
MCW50 graphics Card liquid cooler Swiftech computer cooling system
Scythe Kaze-Jyuni SY1225SL12SH fan Crazy PC computer cooling system

References

  1. Krauchi, K. The thermophysiological cascade leading to sleep initiation in relation to phase of entrainment. Sleep Med. Rev. 11, 439-451 (2007).
  2. Krauchi, K. The human sleep-wake cycle reconsidered from a thermoregulatory point of view. Physiol. Behav. 90, 236-245 (2007).
  3. Kaneko, H., et al. Circadian Rhythm of Temperature Preference and Its Neural Control in Drosophila. Curr. Biol. 22, 1851-1857 (2012).
  4. Allada, R., Chung, B. Y. Circadian organization of behavior and physiology in Drosophila. Annu. Rev. Physiol. 72, 605-624 (2010).
  5. Garrity, P. A., Goodman, M. B., Samuel, A. D., Sengupta, P. Running hot and cold: behavioral strategies, neural circuits, and the molecular machinery for thermotaxis in C. elegans and Drosophila.. Genes Dev. 24, 2365-2382 (2010).
  6. Hamada, F. N., et al. An internal thermal sensor controlling temperature preference in Drosophila. Nature. 454, 217-220 (2008).
  7. Hong, S. T., et al. cAMP signalling in mushroom bodies modulates temperature preference behaviour in Drosophila. Nature. 454, 771-775 (2008).
  8. Dillon, M. E., Wang, G., Garrity, P. A., Huey, R. B. Review: Thermal preference in Drosophila. J. Therm. Biol. 34, 109-119 (2009).
  9. Viswanath, V., et al. Opposite thermosensor in fruitfly and. Nature. 423, 822-823 (2003).
  10. Gallio, M., Ofstad, T. A., Macpherson, L. J., Wang, J. W., Zuker, C. S. The coding of temperature in the Drosophila brain. Cell. 144, 614-624 (2011).
  11. Stevenson, R. D. The relative importance of behavioral and physiological adjustments controlling body temperature in terrestrial ectotherms. Am. Nat. 126 (3), (1985).
  12. Refinetti, R., Menaker, M. The circadian rhythm of body temperature. Physiol. Behav. 51, 613-637 (1992).
  13. Duffy, J. F., Dijk, D. J., Klerman, E. B., Czeisler, C. A. Later endogenous circadian temperature nadir relative to an earlier wake time in older people. Am. J. Physiol. 275, 1478-1487 (1998).
  14. Saper, C. B., Lu, J., Chou, T. C., Gooley, J. The hypothalamic integrator for circadian rhythms. Trends Neurosci. 28, 152-157 (2005).
  15. Konopka, R. J., Pittendrigh, C., Orr, D. Reciprocal behaviour associated with altered homeostasis and photosensitivity of Drosophila clock mutants. J. Neurogenet. 6, 1-10 (1989).
  16. Qiu, J., Hardin, P. E. per mRNA cycling is locked to lights-off under photoperiodic conditions that support circadian feedback loop function. Mol. Cell Biol. 16, 4182-4188 (1996).
  17. Crocker, A., Sehgal, A. Genetic analysis of sleep. Genes Dev. 24, 1220-1235 (1220).
  18. Hendricks, J. C., et al. Rest in Drosophila is a sleep-like state. Neuron. 25, 129-138 (2000).
  19. Shaw, P. J., Cirelli, C., Greenspan, R. J., Tononi, G. Correlates of sleep and waking in Drosophila melanogaster. Science. 287, 1834-1837 (2000).
  20. Parisky, K. M., et al. PDF cells are a GABA-responsive wake-promoting component of the Drosophila sleep circuit. Neuron. 60, 672-682 (2008).
check_url/fr/51097?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Goda, T., Leslie, J. R., Hamada, F. N. Design and Analysis of Temperature Preference Behavior and its Circadian Rhythm in Drosophila. J. Vis. Exp. (83), e51097, doi:10.3791/51097 (2014).

View Video