Summary

Исследование клеточной миграции в микроизготовленном каналов

Published: February 21, 2014
doi:

Summary

Количественный метод исследования спонтанной миграцию клеток в одномерном замкнутом микросреды описано. Этот метод использует микроизготовленном каналов и может быть использован для изучения миграции большого числа клеток при различных условиях в отдельных экспериментах.

Abstract

Описанный здесь метод позволяет изучать миграцию клеток в ограниченном объеме в одном измерении. Он основан на использовании микроизготовленном каналов, которые налагают поляризованный фенотип в клетках физическими ограничениями. После того, как внутри каналов, клетки имеют только две возможности: двигаться вперед или назад. Эта упрощенная миграция, в которой направленность ограничена облегчает автоматическое отслеживание клеток и извлечение количественных параметров для описания движения клеток. Эти параметры включают скорость клеток, изменения в направлении и паузы во время движения. Микроканалы также совместимы с использованием флуоресцентных маркеров, поэтому подходят для изучения локализации внутриклеточных органелл и сооружений во время миграции клеток в высоком разрешении. И, наконец, поверхность каналов могут быть функциональными с различными субстратами, что позволяет контролировать адгезионных свойств каналов или изучении haptotaxis. Таким образом, система чпрежде чем описано предназначен для анализа миграции больших количествах клеток в условиях, в которых как геометрия и биохимический характер среды находящимися под контролем, способствуя нормализации и воспроизводимость независимых экспериментов.

Introduction

Миграция представляет собой комплекс клеточные функции, что имеет важное значение для многих физиологических процессов в многоклеточных организмов, в том числе развития, иммунного ответа и регенерации тканей. Кроме того, некоторые патологические состояния, такие как опухолевой инвазии и метастазирования полагаться на клеточной подвижности 1. По этим причинам, миграции клеток стала одним из основных области исследования в контексте фундаментальных и трансляционных исследований. В естественных условиях, большинство тканей характеризуются богатой внеклеточного матрикса и высокой плотности клеток. Миграция клеток таким образом, в физиологических условиях, происходит в сложном ограниченном окружении. Классически, скорее всего, в силу исторических причин и технических ограничений, миграции клеток изучалось в плоских 2D системах, которые не воспроизводят многие свойства окружающей среды, найденных в тканях, таких как заключения. Кроме того, факторы, как клеточной адгезии, которые необходимы для подвижности в 2D, были недавно показал, чтобы не быть necessaRily требуется для миграции в естественных условиях или внутри гелей, предполагая, что механизмы, которые управляют клеток передвижения в 2D и в других средах различны 2. Несколько системы были разработаны, чтобы имитировать сложные свойства тканей, самых известных гелей существо коллагена, которые направлены на обобщал свойства внеклеточного матрикса состава 3. Здесь мы предлагаем микроканалов в качестве простого дополнительного метода, который позволяет миграцию исследование клеток в одном измерении под замкнутом среде.

В этой системе клетки мигрируют вместе микроканалов, в которую они поступают спонтанно. Миграционные клетки затем приобретают форму каналов, приняв трубчатую геометрию, которая, скорее всего, усиливает их полярность. Линейное перемещение клеток в каналах позволяет отслеживать автоматический клеток и извлечение количественных параметров из экспериментов. С технической точки зрения, эта система легко и гибко. Coatinг стенках канала можно манипулировать, размер и форма каналов могут быть адаптированы, и большое количество клеток могут быть проанализированы в отдельных экспериментах. Эта система может быть также уменьшено, чтобы выполнить средний анализ экраном диапазон молекул, участвующих в клеточной подвижности. Протокол, описанный здесь был стандартизирован с использованием дендритных клеток (DC) в качестве клеточной модели. Эти клетки играют ключевую роль в иммунной системе, как они участвуют в инициации и поддержании специфического иммунного ответа 4. Экстракорпоральное, ДК было показано, спонтанно перейти в закрытых средах и поэтому является хорошей моделью для изучения подвижность клеток в микроканалов 5,6 . Важно отметить, что эта система может быть расширена для анализа миграции любой другой тип клеток подвижных как Т-лимфоциты, нейтрофилы, или опухолевых клеток 7-9.

Protocol

Важное примечание: Этот протокол предполагает, что формы, содержащий форму для требуемых микроканалов уже сделан. Дополнительная информация о подготовке пресс-формы уже опубликованы 10. Этот протокол также предполагает, что ДК костного мозга культура известна. <p class="jov…

Representative Results

В каждом эксперименте поверхность PDMS покрыта молекулы, адаптированной к интересам исследования. Рисунок 2 показывает каналы, покрытые флуоресцентной молекулой, PLL-г-PEG, до и после мытья (шаг 2.4). Такой эксперимент позволяет контролировать однородности покрытия в каналах. <p class…

Discussion

Здесь мы опишем устройство состоит из микроканалов в качестве метода изучения миграционных свойств большого количества клеток в отдельных экспериментах. Эта экспериментальная система имитирует замкнутые экологические ограничения, найденные в тканях эндогенными перелетных клеток. …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы значительно признать платформу PICT IBiSA в Институте Кюри (CNRS UMR144). Эта работа финансировалась за счет грантов от: Европейского исследовательского совета в AM.LD (Strapacemi 243103), Ассоциация Nationale Pour La Recherche (ANR-09-PIRI-0027-PCVI), основой InnaBiosanté (Micemico) многоцелевой и AM. LD и ERC Strapacemi молодой грант следователя AM.LD.

Materials

PolyDimethylSiloxane (PDMS) GE Silicones RTV615 Package of 90% silicone base and 10% curing agent
Core sample cutter Ted Pella Int. Harris Uni-Core  Diameter 2,5 mm
Glass-bottom dish WPI Fluorodish FD 35-100
Ultrasonic cleaner Branson Ultrasonics Branson 200
Plasma cleaner Harrick Plasma PDC 32 G For small samples (35 dishes). A bigger version is also available
Fibronectin from bovine plasma Sigma Aldrich F0895
PolyLysine grafted PEG (Pll-g-PEG) Susos PLL(20)-g[3.5]-PEG(5)
Hoechst 33342 Sigma Aldrich B2261
Y27632 TOCRIS 1254

References

  1. Lauffenburger, D. A., Horwitz, A. F. Cell migration: a physically integrated molecular process. Cell. 84 (3), 359-369 (1996).
  2. Lämmermann, T., et al. Rapid leukocyte migration by integrin-independent flowing and squeezing. Nature. 453 (7191), 51-55 (2008).
  3. Schor, S. L., Allen, T. D., Harrison, C. J. Cell migration through three-dimensional gels of native collagen fibres: collagenolytic activity is not required for the migration of two permanent cell lines. J. Cell. Sci. 41, 159-175 (1980).
  4. Steinman, R. M. Decisions about dendritic cells: past, present, and future. Annu. Rev. Immunol. 30, 1-22 (2012).
  5. Faure-André, G., et al. Regulation of dendritic cell migration by CD74, the MHC class II-associated invariant chain. Science. 322 (5908), 1705-1710 (2008).
  6. Renkawitz, J., et al. Adaptive force transmission in amoeboid cell migration. Nat. Cell Biol. 11 (12), 1438-1443 (2008).
  7. Jacobelli, J., et al. Confinement-optimized three-dimensional T cell amoeboid motility is modulated via myosin IIA-regulated adhesions. Nat. Immunol. 11 (10), 953-961 (2010).
  8. Irimia, D., Charras, G., Agrawal, N., Mitchinson, T., Toner, M. Polar stimulation and constrained cell migration in microfluidic channels. Lab Chip. 7 (12), 1783-1790 (2007).
  9. Moreau, H., et al. Dynamic in situ cytometry uncovers T cell receptor signaling during immunological synapses and kinapses in vivo. Immunity. 37 (2), 351-363 (2012).
  10. Heuzé, M. L., Collin, O., Terriac, E., Lennon-Duménil, A. M., Piel, M. Cell migration in confinement: a micro-channel-based assay. Methods Mol. Biol. 769, 415-434 (2011).
  11. Ren, K., Zhao, Y., Su, J., Ryan, D., Wu, H. Convenient method for modifying poly(dimethylsiloxane) to be airtight and resistive against absorption of small molecules. Anal. Chem. 82 (14), 5965-5971 (2010).
  12. Ren, K., Dai, W., Zhou, J., Su, J., Wu, H. Whole-Teflon microfluidic chips. PNAS. 108 (20), 8162-8166 (2011).
  13. Maiuri, P., et al. The first World Cell Race. Curr Biol. 22 (17), 673-675 (2012).

Play Video

Citer Cet Article
Vargas, P., Terriac, E., Lennon-Duménil, A., Piel, M. Study of Cell Migration in Microfabricated Channels. J. Vis. Exp. (84), e51099, doi:10.3791/51099 (2014).

View Video