Summary

Isolering och kvantifiering av botulinneurotoxin Från Komplexa matriser med de BoTest Matrix Analyser

Published: March 03, 2014
doi:

Summary

Den BoTest Matrix botulinum neurotoxin (BoNT) detektionsanalyser snabbt rena och kvantifiera BoNT från en rad olika provmatriser. Här presenterar vi ett protokoll för detektion och kvantifiering av BoNT från både fasta och flytande matriser och visar analysen med Botox, tomater, och mjölk.

Abstract

Det krävs noggrann detektering och kvantifiering av botulinumtoxin (BoNT) i komplexa matriser för läkemedels-, miljö-, och livsmedelsprov testning. Behövs Rapid BoNT testning av livsmedel under utbrottskriminalteknik, patientens diagnos, och livsmedelssäkerhet testning medan exakt potens tester krävs för BoNT-baserade läkemedlet produkttillverkning och patientsäkerhet. Den används flitigt bioassay med möss för BoNT testning är mycket känslig men saknar precision och kapacitet som behövs för snabb och rutin BoNT testning. Dessutom har bioassay användning av djur lett till samtal med läkemedelsprodukt tillsynsmyndigheter och förespråkare djur-rättigheter i USA och utomlands för att ersätta musen bioassay för BoNT testning. Flera in vitro ersättningsanalyser har utvecklats som fungerar bra med renat BoNT i enkla buffertar, men de flesta har inte visat sig gälla för att testa i mycket komplexa matriser. Här, ett protokoll för detektion avBoNT i komplexa matriser med hjälp av BoTest Matrix analyserna presenteras. Analysen består av tre delar: Den första delen handlar om förberedelse av proverna för testning, är den andra delen ett immunoprecipitation steg med hjälp av anti-BoNT antikroppsbelagda paramagnetiska kulor för att rena BoNT från matrisen, och den tredje delen kvantifierar isolerade BoNT s proteolytiska aktivitet med användning av ett fluorogent reporter. Protokollet som är skriven för hög genomströmning testning i 96-brunnars plattor med användning av både flytande och fasta matriser och kräver ca 2 h av manuell beredning med totala analystider 4-26 h beroende på den provtyp, toxin belastning, och önskad känslighet. Data presenteras för BoNT / A-testning med fosfatbuffrad koksaltlösning, en läkemedelsprodukt, odlingssupernatant, 2% mjölk, och färska tomater och inkluderar diskussion av kritiska parametrar för analys framgång.

Introduction

Botulinneurotoxiner (BoNTs) är de dödligaste ämnen som är kända, med intravenösa humana dödliga doser beräknas till 1-3 ng / kg 1,2. Sju strukturellt liknande serotyper av BoNT, märkta A till och med G, föreligger, var och en bestående av en tung kedja-domänen är ansvarig för cellbindning, upptag och translokering in i cytosolen och en lätt kedja som kodar för ett zink-endopeptidas 3-5. Den utsökta toxicitet BoNT resultat av delvis dess specifika bindande och träder i motoriska nervceller i den neuromuskulära förbindelsen 6. Väl inne i neuron, den lätta kedjan endopeptidas specifikt klyver en eller flera av den lösliga N-etylmaleimid-känslig faktor fastsättning proteinreceptor (SNARE) proteiner som krävs för vesikelfusion, hämmande neurotransmittorfrisättning och som leder till förlamning 7-14. Allmänt känd som sjukdomen "botulism", förlamning av membranet och interkostal muskler av BoNT slutändan resulterar iandningssvikt och död om inte tidig diagnos och behandling mottas.

Human livsmedelsburna botulism är oftast förknippas med BoNT serotyperna A, B, E, och F (BoNT / A, BoNT / B, etc) och oftast resulterar från intag av förorenad mat 15,16, även om flera fall av sårbotulism rapporterades bland sprutnarkomaner 17,18. I USA, är spädbarn botulism till följd av intag av Clostridium sporer av barn under ett års ålder den vanligaste formen av botulism 19-21. Dock var livsmedelsburna BoNT utbrott till följd av felaktig hemkonservering och livsmedelsförädling rapporterats i både USA och utomlands. Mellan 2000-2009 var minst 338 fall av livsmedelsburna botulism rapporterats över hela världen inklusive sex dödsfall 22. Förmågan att snabbt och känsligt upptäcka livsmedelsburna botulism utbrott är en viktig indikation på att kunna bistå tidig diagnos 23,24. Dessutom kommer detektionsmetoder som tillåter kostnadseffektiv och rutin mat testning leda till förbättrad livsmedelssäkerhet.

BoNT s neuronal specificitet och lång biologisk halveringstid gör det också en potent terapeutiskt. I USA, är BoNT-baserade läkemedel som godkänts av Food and Drug Administration för behandling av kosmetiska villkor och neuromuskulära relaterade sjukdomar inklusive glabellaveck, cervikal dystoni, migrän, överaktiv blåsa och skelning. Många program "off-label" är dokumenterade, inklusive höga doser behandlingar för svår muskeldysfunktion 25-28. Exakt toxin kvantifiering är avgörande för korrekt dosering, eftersom underdosering kan leda till ineffektiv behandling medan överdosering sätter patienter med risk för potentiellt skadliga biverkningar. Tyvärr är ingen standardiserad potens analysprotokoll delas mellan tillverkare, vilket resulterar i definitionsenhet ojämlikheter mellan BoNT-baserade läkemedlet produCTS 29-31.

Den standardtest för BoNT är bioassay med möss där BoNT-innehållande prover injiceras intraperitonealt på möss och antalet dödsfall registrerats under 1-7 dagar 16,32,33. Musen bioassay är mycket känslig med detektionsgräns (LOD) på 5-10 pg BoNT / A 34, men etiska oro över djuranvändning, de höga kostnaderna för att utbilda personal och upprätthålla djuranläggningar, långa analystider, och bristen på standardiserade protokoll ledde till samtal för att utveckla standardiserade, djurfria BoNT testning och kvantifieringsmetoder 35-39. Nyligen har flera alternativa BoNT kvantifieringsmetoderna utvecklats som erbjuder mus eller nästan bioassay på möss känslighet 40-49. Dessa metoder använder ofta fluorescens, masspektrometri, eller immunologiska metoder och erbjuda analystider avsevärt kortare än bioassay med möss utan djur. Mass-spektrometri strategier i kombination med immunologisk techniqderingar har visat att detektera och kvantifiera BoNT som finns i livsmedel och andra komplexa prover, men krav utbildning av personal och specialutrustning gräns dessa analyser 50-55. De flesta andra alternativa analyser inte är lätt tillämpliga på komplexa provtestning eller saknar kapacitet som krävs för rutin BoNT testning. Den mycket varierande karaktär av livsmedelsprov viskositet, pH, salthalt, och matrisbeståndsdelar utgör en särskilt svår utmaning när man försöker utveckla in vitro analysmetoder med känslighet för att matcha den extrema styrkan av BoNT. Dessutom, även enkla och förhållandevis godartade buffertsystem, såsom de som följer av resuspension av BoNT-baserade läkemedelsprodukter, innehåller salt, albumin, och socker stabilisatorer (dvs. hjälpämnen) som väsentligt påverkar in vitro BoNT potens 56. Toxin rening krävs för noggrann aktivitetstestning av alla utom de enklaste av proverna 56-59.

DenBoTest Matrix-analyser var utformade för snabb, hög genomströmning, och konsekvent kvantifiering av BoNT från mycket komplexa prover med utrustning som vanligen finns i forskningslaboratorier 56,60. Dessa analyser använder paramagnetiska pärlor kovalent kopplade till serotyp-specifika anti-Bont antikroppar att binda och binda BoNT ur ett prov och sedan ta bort störande matrisföreningar genom tvättning. Efter tvätt, är bunden BoNT proteolytiska aktiviteten sedan kvantifieras i en optimerad reaktionsbuffert med hjälp av en reporter kompatibelt med BoNT serotyp som testas. Dessa reportrar är fluorogena proteiner som består av en N-terminal cyan fluorescerande protein (GFP)-grupp och en C-terminal gula fluorescerande proteinderivat (Venus)-del förenade genom en BoNT substrat, SNAP25 rester 141-206 eller synaptobrevin rester 33-94 utgör den BoTest A / E eller B / D / F / G reportrar, respektive 45. Reporter klyvning med BoNT övervakas med Försters resonansenergiöverföring (FRET). När than reporter är intakt, excitation av den gemensamma fiskeripolitiken leder FRET till Venus, härdning CFP utsläpp och spännande Venus utsläpp. Klyvning av reporter av BoNT förhindrar FRET, vilket leder till en ökning av GFP emission och minskning i Venus emission. BoNT aktivitet kan sedan mätas kvantitativt med hjälp av förhållandet mellan den gemensamma fiskeripolitiken och Venus utsläpp. LOD under 3 pg är möjligt från en mängd olika livsmedel med en hög genomströmning 96-brunnar format 56. Ökad känslighet kan erhållas med användning av större provvolymer, eftersom analysen möjliggör koncentration av toxinet på pärlans yta.

De BoTest Matrix analyser för BoNTs A, B, E, och F har utvecklats och testats med livsmedel, läkemedel, och miljöprover 56,60. Här beskriver vi rutiner för att utföra dessa analyser för detektion av BoNT i låg komplexitet (t.ex. läkemedel, BoNT i buffert) och hög komplexitet (t.ex. livsmedel, miljö) prover. Särskilda bearbetningsmetoderflera provtyper behandlas i detta protokoll och provtyper som inte beskrivs här kan oftast anpassas med hjälp av en kombination av de presenterade metoderna. Protokollet har utvecklats och testats med BoNT / A, men kan anpassas till andra BoNT serotyper använder sina respektive analyser som visats på annat håll 56,60.

Protocol

1. Framställning av analysreagens Thaw 200x ditiotreitol (DTT), 10x Matrisbindningsbuffert (10x bindningsbuffert i det följande), 10x neutraliseringsbuffert (livsmedel eller pH obalanse prover endast), och 10x BoTest reaktionsbuffert (10 x reaktionsbuffert nedan) vid rumstemperatur (RT) under 15 min eller tills den är helt upptinad. Se tabell 1 för en lista över buffertar och reagenser som används i detta protokoll. Se tabell 2 för en lista på material och utrustning …

Representative Results

Ett diagram som sammanfattar de steg i den beskrivna protokollet visas i fig. 2. Analysen kräver mellan 4-26 timmar att slutföra, beroende på provtyp och önskad analyskänslighet, men bara ~ 2 timmar av praktisk tid. Analysen utförs i 96-brunnsplattor och, beroende på den typ av tester som skall utföras, möjliggör triplikat testning av upp till 20 prover inklusive standarder per platta. Figur 3 visar representativa analysresultat med användning av …

Discussion

Detta protokoll beskriver förfaranden för att kvantifiera BoNT / Komplex, holotoxin eller Clostridium odlingssupematant i komplexa matriser. Protokollet är densamma, men när man testar andra BoNT serotyper (t.ex. BoNT / B, E, och F) med deras respektive Matrix analyser 56,60, även om analyskänsligheten varierar mellan serotyper och analyser. Detta protokoll tar inte hänsyn till varje typ av prov är möjligt och vissa modifieringar kan krävas beroende på det specifika provet sammans…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka H. Olivares och D. Ruge för värdefulla diskussioner och rådgivning. Denna forskning stöds delvis av en NSF SBIR utmärkelse (IIP-1.127.245 till BioSentinel Inc.) samt en försvarsdepartementet kontrakt (W81XWH-07-2-0045 till BioSentinel Inc.).

Materials

BoTest Matrix A Botulinum Neurotoxin Detection Kit BioSentinel A1015 Detection kits for BoNT/B and F are also available.
Varioskan Flash fluorescence microplate reader Thermo-Fisher Scientific 5250040 Most monochromator- or filter-based units with 434 nm excitation and 470 and 526 nm emission capability can be used.
96-well Magnetic Bead Separation Plate V&P Scientific  VP771H Other magnetic plates may be used, but the plate should be designed to separate the beads to the side of the well.
Magnetic Bead-Compatible Plate Washer BioTek  ELx405 VSRM Optional, only required for automated plate washing.  Other magnetic bead-compatible plate washers may also be used, but should be tested before use.
Microcentrifuge Various N/A Optional, only required for samples needing centrifugation.
MixMate plate mixer Eppendorf 22674200
Orbital Shaker Various N/A Used at room temperature or at 25 °C If temperature control is available
EDTA-free Protease Inhibitor Tablets Roche 4693132001 Only required for food or environmental testing.  Protease inhibitors must be EDTA-free.
BoNT/A  Metabiologics N/A Optional, only required for standardization and quantification purposes 
Black, Flat-bottomed 96-well Plates NUNC 237105 Plates should not be treated
96-well Plate Sealing Tape Thermo Scientific 15036

References

  1. Arnon, S. S., et al. Botulinum toxin as a biological weapon: medical and public health management. J. Am. Med. Assoc. 285, 1059-1070 (2001).
  2. Gill, D. M. Bacterial toxins: a table of lethal amounts. Microbiol. Rev. 46, 86-94 (1982).
  3. Montal, M. Botulinum neurotoxin: a marvel of protein design. Annu. Rev. Biochem. 79, 591-617 (2010).
  4. Lacy, D. B., Stevens, R. C. Sequence homology and structural analysis of the clostridial neurotoxins. J. Mol. Biol. 291, 1091-1104 (1999).
  5. Montecucco, C., Schiavo, G. Structure and function of tetanus and botulinum neurotoxins. Q. Rev. Biophys. 28, 423-472 (1995).
  6. Ahnert-Hilger, G., Munster-Wandowski, A., Holtje, M. Synaptic vesicle proteins: targets and routes for botulinum neurotoxins. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 364, 159-177 (2013).
  7. Yamasaki, S., et al. Cleavage of members of the synaptobrevin/VAMP family by types D and F botulinal neurotoxins and tetanus toxin. J. Biol. Chem. 269, 12764-12772 (1994).
  8. Schiavo, G., et al. Identification of the nerve terminal targets of botulinum neurotoxin serotypes A, D, and E. J. Biol. Chem. 268, 23784-23787 (1993).
  9. Schiavo, G., et al. Tetanus and botulinum-B neurotoxins block neurotransmitter release by proteolytic cleavage of synaptobrevin. Nature. 359, 832-835 (1992).
  10. Schiavo, G., et al. Botulinum G neurotoxin cleaves VAMP/synaptobrevin at a single Ala-Ala peptide bond. J. Biol. Chem. 269, 20213-20216 (1994).
  11. Rossetto, O., et al. SNARE motif and neurotoxins. Nature. 372, 415-416 (1994).
  12. Montecucco, C., Schiavo, G. Mechanism of action of tetanus and botulinum neurotoxins. Mol. Microbiol. 13, 1-8 (1994).
  13. Blasi, J., et al. Botulinum neurotoxin A selectively cleaves the synaptic protein SNAP-25. Nature. 365, 160-163 (1993).
  14. Blasi, J., et al. Botulinum neurotoxin C1 blocks neurotransmitter release by means of cleaving HPC-1/syntaxin. EMBO J. 12, 4821-4828 (1993).
  15. Cherington, M. Clinical spectrum of botulism. Muscle Nerve. 21, 701-710 (1998).
  16. Lindstrom, M., Korkeala, H. Laboratory diagnostics of botulism. Clin. Microbiol. Rev. 19, 298-314 (2006).
  17. Werner, S. B., Passaro, D., McGee, J., Schechter, R., Vugia, D. J. Wound botulism in California, 1951-1998: recent epidemic in heroin injectors. Clin. Infect. Dis. 31, 1018-1024 (2000).
  18. Passaro, D. J., Werner, S. B., McGee, J., MacKenzie, W. R., Vugia, D. J. Wound botulism associated with black tar heroin among injecting drug users. J. Am. Med. Assoc. 279, 859-863 (1998).
  19. Brook, I. Infant botulism. J. Perinatol. 27, 175-180 (2007).
  20. Arnon, S. S. Honey, infant botulism and the sudden infant death syndrome. West J. Med. 132, 58-59 (1980).
  21. Arnon, S. S. Infant botulism. Annu. Rev. Med. 31, 541-560 (1980).
  22. Peck, M. W., Stringer, S. C., Carter, A. T. Clostridium botulinum in the post-genomic era. Food Microbiol. 28, 183-191 (2011).
  23. Sharma, S. K., Whiting, R. C. Methods for detection of Clostridium botulinum toxin in foods. J. Food Prot. 68, 1256-1263 (2005).
  24. Sobel, J. Botulism. Clin. Infect. Dis. 41, 1167-1173 (2005).
  25. Chen, S. Clinical uses of botulinum neurotoxins: current indications, limitations and future developments. Toxins. 4, 913-939 (2012).
  26. Sinha, D., Karri, K., Arunkalaivanan, A. S. Applications of Botulinum toxin in urogynaecology. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 133, 4-11 (2007).
  27. Dmochowski, R., Sand, P. K. Botulinum toxin A in the overactive bladder: current status and future directions. BJU Int. 99, 247-262 (2007).
  28. Benecke, R., Dressler, D. Botulinum toxin treatment of axial and cervical dystonia. Disabil. Rehabil. 29, 1769-1777 (2007).
  29. Hunt, T., Clarke, K. Potency evaluation of a formulated drug product containing 150-kd botulinum neurotoxin type A. Clin. Neuropharmacol. 32, 28-31 (2009).
  30. Marchetti, A., et al. Retrospective evaluation of the dose of Dysport and BOTOX in the management of cervical dystonia and blepharospasm the REAL DOSE study. Mov. Disord. 20, 937-944 (2005).
  31. Wohlfarth, K., Sycha, T., Ranoux, D., Naver, H., Caird, D. . Dose equivalence of two commercial preparations of botulinum neurotoxin type A: time for a reassessment. 25, 1573-1584 (2009).
  32. . AOAC International, Clostridium botulinum and its toxins in foods (method 977.26 section 17.7.01). , (2001).
  33. Schantz, E. J., Kautter, D. A. Microbiological methods: standardized assay for Clostridium botulinum toxins. J. AOAC. 61, 96-99 (1978).
  34. Ferreira, J. L. Comparison of amplified ELISA and mouse bioassay procedures for determination of botulinal toxins A, B, E, and F. J. AOAC. Int. 84, 85-88 (2001).
  35. . Directive 2003/15/EC of the European Parliament and of the Council. Official Journal of the European Union. , (2003).
  36. . Report on the ICCVAM-NICEATM/ECVAM Scientific Workshop on Alternative Methods to Refine, Reduce or Replace the Mouse LD50 Assay for Botulinum Toxin Testing. Report No. 08-6416, NIH. , (2008).
  37. Bitz, S. The botulinum neurotoxin LD50 test – problems and solutions. ALTEX. 27, 114-116 (2010).
  38. Balls, M. Replacing the animal testing of botulinum toxin: time to smooth out the wrinkles. Altern. Lab. Anim. 38, 1-2 (2010).
  39. Balls, M. Botulinum toxin testing in animals: the questions remain unanswered. Altern. Lab. Anim. 31, 611-615 (2003).
  40. Singh, A. K., Stanker, L. H., Sharma, S. K. Botulinum neurotoxin: where are we with detection technologies. Crit. Rev. Microbiol. 39, 43-56 (2013).
  41. Liu, Y. Y., Rigsby, P., Sesardic, D., Marks, J. D., Jones, R. G. A functional dual-coated (FDC) microtiter plate method to replace the botulinum toxin LD50 test. Anal. Biochem. 425, 28-35 (2012).
  42. Ouimet, T., Duquesnoy, S., Poras, H., Fournie-Zaluski, M. C., Roques, B. P. Comparison of Fluorigenic Peptide Substrates PL50, SNAPtide, and BoTest A/E for BoNT/A Detection and Quantification: Exosite Binding Confers High-Assay Sensitivity. J. Biomol. Screen. , (2013).
  43. Scotcher, M. C., Cheng, L. W., Stanker, L. H. Detection of botulinum neurotoxin serotype B at sub mouse LD(50) levels by a sandwich immunoassay and its application to toxin detection in milk. PLoS One. 5, (2010).
  44. Mason, J. T., Xu, L., Sheng, Z. M., O’Leary, T. J. A liposome-PCR assay for the ultrasensitive detection of biological toxins. Nat. Biotechnol. 24, 555-557 (2006).
  45. Ruge, D. R., et al. Detection of six serotypes of botulinum neurotoxin using fluorogenic reporters. Anal. Biochem. 411, 200-209 (2011).
  46. Hines, H. B., et al. Use of a recombinant fluorescent substrate with cleavage sites for all botulinum neurotoxins in high-throughput screening of natural product extracts for inhibitors of serotypes A, B, and E. Appl. Environ. Microbiol. 74, 653-659 (2008).
  47. Gilmore, M. A., et al. Depolarization after resonance energy transfer (DARET): a sensitive fluorescence-based assay for botulinum neurotoxin protease activity. Anal. Biochem. 413, 36-42 (2011).
  48. Capek, P., Dickerson, T. J. Sensing the deadliest toxin: technologies for botulinum neurotoxin detection. Toxins. 2, 24-53 (2010).
  49. Bagramyan, K., Barash, J. R., Arnon, S. S., Kalkum, M. Attomolar detection of botulinum toxin type A in complex biological matrices. PLoS One. 3, (2008).
  50. Wang, D., Baudys, J., Kalb, S. R., Barr, J. R. Improved detection of botulinum neurotoxin type A in stool by mass spectrometry. Anal. Biochem. 412, 67-73 (2011).
  51. Parks, B. A., et al. Quantification of botulinum neurotoxin serotypes A and B from serum using mass spectrometry. Anal. Chem. 83, 9047-9053 (2011).
  52. Kalb, S. R., Goodnough, M. C., Malizio, C. J., Pirkle, J. L., Barr, J. R. Detection of botulinum neurotoxin A in a spiked milk sample with subtype identification through toxin proteomics. Anal. Chem. 77, 6140-6146 (2005).
  53. Kalb, S. R., et al. The use of Endopep-MS for the detection of botulinum toxins A, B, E, and F in serum and stool samples. Anal. Biochem. 351, 84-92 (2006).
  54. Boyer, A. E., et al. From the mouse to the mass spectrometer: detection and differentiation of the endoproteinase activities of botulinum neurotoxins A-G by mass spectrometry. Anal. Chem. 77, 3916-3924 (2005).
  55. Barr, J. R., et al. Botulinum neurotoxin detection and differentiation by mass spectrometry. Emerg. Infect. Dis. 11, 1578-1583 (2005).
  56. Dunning, F. M., et al. Detection of botulinum neurotoxin serotype A, B, and F proteolytic activity in complex matrices with picomolar to femtomolar sensitivity. Appl. Environ. Microbiol. 78, 7687-7697 (2012).
  57. Jones, R. G., Ochiai, M., Liu, Y., Ekong, T., Sesardic, D. Development of improved SNAP25 endopeptidase immuno-assays for botulinum type A and E toxins. J. Immunol. Methods. 329, 92-101 (2008).
  58. Ekong, T. A., Feavers, I. M., Sesardic, D. Recombinant SNAP-25 is an effective substrate for Clostridium botulinum type A toxin endopeptidase activity in vitro. Microbiology. 143 (pt 10), 3337-3347 (1997).
  59. Shone, C. C., Roberts, A. K. Peptide substrate specificity and properties of the zinc-endopeptidase activity of botulinum type B neurotoxin. Eur. J. Biochem. 225, 263-270 (1994).
  60. Piazza, T. M., et al. In vitro detection and quantification of botulinum neurotoxin type e activity in avian blood. Appl. Environ. Microbiol. 77, 7815-7822 (2011).
  61. Mizanur, R. M., Gorbet, J., Swaminathan, S., Ahmed, S. A. Inhibition of catalytic activities of botulinum neurotoxin light chains of serotypes A, B and E by acetate, sulfate and calcium. Int. J. Biochem. Mol. Biol. 3, 313-321 (2012).
  62. Sugii, S., Sakaguchi, G. Molecular construction of Clostridium botulinum type A toxins. Infect. Immun. 12, 1262-1270 (1975).
  63. Sharma, S. K., Ramzan, M. A., Singh, B. R. Separation of the components of type A botulinum neurotoxin complex by electrophoresis. Toxicon. 41, 321-331 (2003).
  64. Bryant, A. M., Davis, J., Cai, S., Singh, B. R. Molecular composition and extinction coefficient of native botulinum neurotoxin complex produced by Clostridium botulinum hall A strain. Protein. J. 32, 106-117 (2013).
  65. Kukreja, R. V., Singh, B. R. Comparative role of neurotoxin-associated proteins in the structural stability and endopeptidase activity of botulinum neurotoxin complex types A and E. 46, 14316-14324 (2007).
  66. Eisele, K. H., Fink, K., Vey, M., Taylor, H. V. Studies on the dissociation of botulinum neurotoxin type A complexes. Toxicon. 57, 555-565 (2011).
check_url/fr/51170?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Dunning, F. M., Piazza, T. M., Zeytin, F. N., Tucker, W. C. Isolation and Quantification of Botulinum Neurotoxin From Complex Matrices Using the BoTest Matrix Assays. J. Vis. Exp. (85), e51170, doi:10.3791/51170 (2014).

View Video