Summary

Visualisering neuroblast cytokinese Under<em> C. elegans</em> Embryogenesen

Published: March 12, 2014
doi:

Summary

Denne protokol beskriver, hvordan billedet dividere celler i et væv i Caenorhabditis elegans embryoner. Mens flere protokoller beskriver, hvordan du billedet celledeling i begyndelsen foster, denne protokol beskriver, hvordan billedet celledeling i et udviklingsland væv under midten sent embryogenese.

Abstract

Denne protokol beskriver anvendelsen af fluorescensmikroskopi billedet delende celler under udvikling af Caenorhabditis elegans embryoner. Især denne protokol fokuserer på, hvordan billedet dividere neuroblasts, som findes under de epidermale celler og kan være vigtige for epidermal morfogenese. Tissue dannelse er afgørende for metazoan udvikling og er afhængig af eksterne signaler fra omkringliggende væv. C. elegans er en fremragende model organisme for at studere vævsmorfogenese in vivo på grund af dets gennemsigtighed og enkel organisation gøre sine væv nemt at studere via mikroskopi. Ventral kabinettet er den proces, hvor den ventrale overflade af embryoet er dækket af et enkelt lag af epitelceller. Denne begivenhed menes at være lettet af de underliggende neuroblasts, som giver kemisk vejlednings stikord til at mægle migration af de overliggende epitelceller. Men neuroblaster er yderst proliferativ og kan også fungeresom en mekanisk substrat for ventrale epidermale celler. Undersøgelser ved hjælp af denne forsøgsplan kunne afdække betydningen af ​​intercellulær kommunikation under vævsdannelse og kunne anvendes til at afsløre de roller gener involveret i celledeling i udviklingslandene væv.

Introduction

Mens der er protokoller, der beskriver, hvordan billedet celledeling i begyndelsen C. elegans embryo, denne protokol beskriver, hvordan billedet celledeling i et væv under midten embryogenese. En af de store udfordringer i billeddannelse organismer under udvikling har været deres følsomhed over for fototoksicitet. Imidlertid har øget adgang til spinning disk konfokal mikroskoper eller fejes felt mikroskoper tilladt mere udbredte billedbehandlingsprogrammer. Begge systemer bruger solid state lasere og lysspredning, begrænse niveauerne af UV at organismerne udsættes for. Dog kan Widefield stande stadig bruges til billeddannelse in vivo, især hvis de er udstyret med kameraer med høj følsomhed (f.eks EMCCD), blænde kontrol og lysstyring (f.eks lysdioder eller justerbare kviksølv pærer). Denne protokol beskriver, hvordan man bruge enten en konfokal baseret system eller et vidvinkel-system til billede celledeling indenfor udviklingen af C. elegans </ Em> embryoner. Som et eksempel beskriver vi, hvordan billedet neuroblast celledeling. Neuroblasts kan lette epidermal morfogenese ved at give kemiske eller mekaniske signaler til de overliggende epidermale celler, og giver et glimrende eksempel på, hvor vigtigt det intercellulære kommunikation i dannelsen af ​​væv.

Caenorhabditis elegans er en ideel model organisme til mikroskopi baserede undersøgelser, på grund af sin åbenhed og enkle væv organisation 1. Endvidere C. elegans er modtagelig for genetiske metoder og RNAi, og da mange af dens gener har humane homologer, kan den anvendes til at identificere konserverede mekanismer til vævsdannelse 2-5. I C. elegans, dannelse af overhuden sker i midten embryogenese, når fosteret har> 300 celler. Epidermal morfogenese består af flere vigtige faser, hvorunder foster er indesluttet i et lag af epidermale celler, snøre og udvide til at omdanne embryo fra en ægformet form til den aflange form af en orm 6. Ventral kabinet beskriver en af disse morfogenetiske begivenheder, når ventrale epidermale celler migrere til den ventrale midterlinie til at dække den ventrale overflade af embryo (figur 1). Først to par forreste placeret forkant celler migrere til den ventrale midterlinjen hvor de klæber og sikring med deres kontralaterale 6 naboer. Dette efterfølges af migrationen af de posteriore placeret lomme celler, som danner kile lignende figurer skaber en ventral lomme 6-7. Den mekanisme, som lukker lommen er ikke godt forstået. En mulighed er, at en supracellular actin myosin kontraktile struktur binder pocket celler sammen i en pung streng som mode, svarende til sårheling 8. Interessant er migration af nogle af pocket-celler medieres af specifikke delmængder af underliggende neuroblaster 9 (neuronale prækursorer, der er fundet under epidermis; Figur 1B).

Tidligere undersøgelser viste, at de neuroblaster regulere ventrale epidermal cellemigration og ventrale kabinet. VAB-1 (Ephrin receptor) og VAB-2 (Ephrin ligand) er stærkt udtrykt i neuroblaster og lette sorteringen af forreste og bageste neuroblaster fra hinanden, og mutationer i VAB-1 eller VAB-2 årsag ventrale kabinet Fænotypers 10-13. Imidlertid viste promotor redning eksperimenter, VAB-1 også er påkrævet i de overliggende ventrale epidermale celler og receptorer for andre vejledende tidskoder udskilles af neuroblaster udtrykkes i ventrale epidermisceller 9. Selvom mutationer i nogen af disse receptorer forårsager ventrale kabinet fænotyper, er det ikke klart, om fejl opstår på grund af problemer i neuroblast positionering eller på grund af svigt af ventrale epidermale celler til at reagere på vejledning tidskoder 14. Ændring af opdelingen af ​​neuroblasts without påvirker deres evne til at udskille vejledning tidskoder kunne kaste lys over den rolle af neuroblasts og deres evne til at levere mekanisk input under epidermal morfogenese. For nylig blev det konstateret, at en celledeling gen, ani-1 (anillin) er overudtrykt i de neuroblasts (figur 2a) og udtynding forårsager neuroblast division defekter. Interessant, disse embryoner vise ventrale kabinet fænotyper (Fotopoulos, Wernike og Piekny, upublicerede observationer).

Anillin er nødvendig for celledeling, og især for cytokinese, der beskriver den proces, hvor en mor celle fysisk deler sig i to datterceller. Cytokinese er drevet af dannelsen af ​​et actomyosin kontraktile ring, som skal stramt kontrolleret i rum og tid til at sikre, at det er korrekt kombineret med søsterkromatid adskillelse. Føreren regulator af metazoan cytokinese er RhoA (RHO-1 i C. elegans), en lille GTPase, der er enctive i GTP-bundne form,. GEF Ect2/ECT-2 aktiverer RhoA, hvorefter RhoA-GTP interagerer med nedstrøms effektorer, der danner den kontraktile ringen og formidler sin indtrængen 15.. Anillin er et multi-domæne, der binder til RhoA via sin C-terminale ende og actin og myosin via sin N-terminus. Anillin er nødvendig for at stabilisere positionen af den kontraktile ringen i pattedyrs-eller Drosophila-S2-celler 16. Anillin udtømning forårsager kontraktile ringe til at gennemgå laterale svingninger, og cytokinese sidst fejler danner multinucleate celler 17-19. Interessant, selvom C. elegans ani-1 koordinater actomyosin kontraktilitet i det tidlige embryon, er det ikke afgørende for cytokinese. Men som beskrevet ovenfor, er ani-1 kræves for neuroblast cytokinese i midten af embryogenese (Fotopoulos, Wernike og Piekny, upublicerede observationer). Cytokinese fiasko ville ændre på antallet og placeringen af ​​neuroblasts og kan påvirke locning af kemiske vejledning tidskoder, eller det kan ændre de mekaniske egenskaber af vævet. Begge modeller fremhæve nonautonomous rolle neuroblasts for ventrale kabinet, og betydningen af ​​væv-væv kommunikation under fosterudviklingen.

Denne forsøgsprotokol beskriver, hvordan man billedet celledeling under C. elegans midten embryogenese ved hjælp af fluorescensmikroskopi. De fleste eksperimenter studere mekanismer celledeling blev udført i enkelte celler i dyrkningsskåle (f.eks. HeLa-eller S2-celler) eller tidlige embryoner med et begrænset antal celler (fx C. elegans en celle embryon Xenopus eller echinoderm embryoner). Men det er også vigtigt at undersøge celledeling i væv, som der er eksterne signaler, der kan påvirke timing og placering af divisionen flyet. Desuden kan celler giver kemiske eller mekaniske signaler at påvirke udviklingen af ​​tilstødende vævs, og det er vigtigt at forstå, hvordan intercellulær kommunikation hjælper væv dannes under udvikling.

Protocol

1.. Fremstilling af plader til Opretholdelse Worm Stammer og Performing RNAi Nematodevækst Media Plates Plader Forbered nematodevækst Media (NGM) plader for at opretholde ormen stammer og til at udføre genetiske kors. Kombiner 3 g NaCl, 17 g agar og 2,5 g bactopepton med 1 liter destilleret vand i en 2 liters kolbe og tilsættes et metal omrørerstav. Autoklaver kolben for at opløse agaren og at sterilisere mediet. Derefter anbringes kolben på en omrøringsplade og lade medier…

Representative Results

Denne forsøgsprotokol beskriver, hvordan man billedet celledeling i C. elegans embryoner under midten embryogenese. Især det beskriver, hvordan billed neuroblasts, der kan lette epidermal morfogenese. Epidermal morfogenese opstår på grund af en kombination af epidermal celle form ændringer, migration og adhæsion, men også er afhængig af kemiske eller mekaniske signaler fra de underliggende neuroblasts (figur 1b). De neuroblaster udskiller vejledning signaler, der modtages af receptorer …

Discussion

Denne protokol beskriver brugen af ​​forskellige typer af mikroskopi til billede celledelinger under midten embryogenese. Især denne protokol fremhæver, hvordan billedet delingen af ​​neuroblasts, celler, der kan fremme epidermal morfogenese. Celle-celle-kommunikation er vigtig for vævsdannelse under metazo udvikling og C. elegans er en fremragende model til at studere vævsdannelse in vivo. En begivenhed, der pænt skildrer samspillet af væv er epidermal morfogenese, der dækker foster i e…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne anerkende, at dette arbejde blev støttet af naturvidenskab og teknik Forskningsråd Canada (NSERC) tilskud.

Materials

Agar BioShop Canada Inc. #AGR001.1 For making C. elegans NGM and RNAi plates
Agar Bio Basic Inc. #9002-18-0 For making bacteria LB agar plates
Agarose BioShop Canada Inc. #AGA001.500
Anti-mouse Alexa 488 antibody Life Technologies Corporation (Invitrogen) #A11029
Anti-mouse anti-GFP antibody Roche Applied Science #11814460001
Anti-rabbit Alexa 568 antibody Life Technologies Corporation (Invitrogen) #A11011
Ampicillin BioShop Canada Inc. #AMP201.5 Store powder at 4 °C and dissolved ampicillin at -20 °C
Bactopetone  (peptone-A) Bio Basic Inc. #G213
CaCl2 (calcium chloride) BioShop Canada Inc. #C302.1
Cholesterol BioShop Canada Inc. #CHL380.25 Dissolve in ethanol
DAPI  Sigma-Aldrich  #D9542 Use to stain nucleic acids (DNA)
Glycerol BioShop Canada Inc. #GLY001.1
IPTG (isopropylthio-β-galactoside) Bio Basic Inc. #367-93-1 Store powder and dissolved IPTG at -20 °C
KH2PO4 (potassium phosphate, monobasic) BioShop Canada Inc. #PPM666.1
K2HPO4 (potassium phosphate, dibasic) BioShop Canada Inc. #PPD303.1
L4440  (feeding vector) Addgene #1654 Keep as glycerol stock at -80 °C
MgSO4   (magnesium sulfate) BioShop Canada Inc. #MAG511.500
NaCl (sodium chloride) Bio Basic Inc. #7647-14-5
Na2HPO4 (sodium phosphate, dibasic) Bio Basic Inc. #7558-79-4
Normal Donkey Serum (NDS) Wisent Bioproducts #035-110
n-propyl 3.4.5-trihydroxybenzoate (propyl gallate) Alfa Aesar #A10877
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich  #P8920 For optimal results coat microscope slides three times 
Streptomycin BioShop Canada Inc. #STP101.50 Store powder at 4 °C and dissolved streptomycin at -20 °C
Tetracyclin BioShop Canada Inc. #TET701.10 Store powder at 4 °C and dissolved tetracycline at -20 °C
Tween-20 Bio Basic Inc. CAS#9005-64-5
Tryptone BioShop Canada Inc. #TRP402.500
Yeast Extract Bio Basic Inc. #8013-01-2

References

  1. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Génétique. 77, 71-94 (1974).
  2. Fire, A., Xu, S., Montgomery, M. K., Kostas, S. A., Driver, S. E., Mello, C. C. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391, 806-811 (1998).
  3. . C. elegans Sequencing Consortium. Genome sequence of the nematode C. elegans: a platform for investigating biology. Science. 282, 2012-2018 (1998).
  4. Pennisi, E. Worming secrets from the C. elegans genome. Science. 282, 1972-1974 (1998).
  5. Tabara, H., et al. The rde-1 gene, RNA interference, and transposon silencing in C. elegans. Cell. 99, 123-132 (1999).
  6. Chisholm, A. D., Hardin, J. . Epidermal morphogenesis. WormBook. The C. elegans Research Community. , 1-22 (2005).
  7. Zhang, H., Gally, C., Labouesse, M. Tissue morphogenesis: how multiple cells cooperate to generate a tissue. Curr. Opin. Cell Biol. 22, 575-582 (2010).
  8. Kiehart, D. P. Wound healing: the power of the purse string. Curr. Biol. 9, 602-605 (1999).
  9. Ikegami, R., et al. Semaphorin and Eph receptor signaling guide a series of cell movements for ventral enclosure in C. elegans. Curr. Biol. 22, 1-11 (2012).
  10. Chin-Sang, I. D., George, S. E., Ding, M., Moseley, S. L., Lynch, A. S., Chisholm, A. D. The ephrin VAB-2/EFN-1 functions in neuronal signaling to regulate epidermal morphogenesis in C. elegans. C. elegans. Cell. 99, 781-790 (1999).
  11. Wang, X., Roy, P. J., Holland, S. J., Zhang, L. W., Culotti, J. G., Pawson, T. Multiple Ephrins Control Cell Organization in C. elegans Using Kinase-Dependent and -Independent Functions of the VAB-1 Eph. Mol. Cell. 4, 903-913 (1999).
  12. Chin-Sang, I. D., Moseley, S. L., Ding, M., Harrington, R. J., George, S. E., Chisholm, A. D. The divergent C. elegans ephrin EFN-4 functions in embryonic morphogenesis in a pathway independent of the VAB-1 Eph receptor. Development. 129, 5499-5510 (2002).
  13. Ghenea, S., Boudreau, J. R., Lague, N. P., Chin-Sang, I. D. The VAB-1 Eph receptor tyrosine kinase and SAX-3/Robo neuronal receptors function together during C. elegans embryonic morphogenesis. Development. 132, 3679-3690 (2005).
  14. Bernadskaya, Y. Y., Wallace, A., Nguyen, J., Mohler, W. A., Soto, M. C. UNC-40/DCC, SAX-3/Robo, and VAB-1/Eph polarize F-actin during embryonic morphogenesis by regulating the WAVE/SCAR actin nucleation complex. PLoS Genet. 8, (2012).
  15. Piekny, A. J., Werner, M., Glotzer, M. Cytokinesis: welcome to the Rho zone. Trends Cell Biol. 15, 651-658 (2005).
  16. Piekny, A. J., Maddox, A. S. The myriad roles of Anillin during cytokinesis. Sem. Cell Dev. Biol. 21, 881-891 (2010).
  17. Zhao, W. M., Fang, G. Anillin is a substrate of anaphase-promoting complex/cyclosome (APC/C) that controls spatial contractility of myosin during late cytokinesis. J. Biol. Chem. 280, 33516-33524 (2005).
  18. Piekny, A. J., Glotzer, M. Anillin is a scaffold protein that links RhoA, actin and myosin during cytokinesis. Curr. Biol. 18, 30-36 (2008).
  19. Hickson, G. R., O’Farrell, P. H. Rho-dependent control of anillin behavior during cytokinesis. J. Cell Biol. 180, 285-294 (2008).
  20. Fraser, A. G., Kamath, R. S., Zipperlen, P., Martinez-Campos, M., Sohrmann, M., Ahringer, J. Functional genomic analysis of C. elegans chromosome I by systematic RNA interference. Nature. 408, 325-330 (2000).
  21. Kamath, R. S., et al. Systematic functional analysis of the Caenorhabditis elegans genome using RNAi. Nature. 421, 231-237 (2003).
  22. Duerr, J. S. . Immunohistochemistry. WormBook, The C. elegans Research Community. , 1-61 (2006).
  23. Maddox, A. S., Habermann, B., Desai, A., Oegema, K. Distinct roles for two C. elegans anillins in the gonad and early embryo. Development. 132, 2837-2848 (2005).
  24. Sulston, J. E., Schierenberg, E., White, J. G., Thomson, J. N. The embryonic cell lineage of the nematode Caenorhabditis elegans. Dev. Biol. 100, 64-119 (1983).
  25. Chin-Sang, I. D., Chisholm, A. D. Form of the worm: genetics of epidermal morphogenesis in C. elegans. Trends Genet. 16, 544-551 (2000).
  26. Zhang, H., Labouesse, M. Signaling through mechanical inputs – a coordinated process. J. Cell Sci. 125, 3039-3049 (2012).
  27. Guenther, C., Garriga, G. Asymmetric distribution of the C. elegans HAM-1 protein in neuroblasts enables daughter cells to adopt distinct fates. Development. 122, 3509-3518 (1996).
  28. Audhya, A., et al. A complex containing the Sm protein CAR-1 and the RNA helicase CGH-1 is required for embryonic cytokinesis in Caenorhabditis elegans. J. Cell Biol. 171, 267-279 (2005).
  29. Maddox, A. S., Lewellyn , L., Desai, A., Oegema, K. Anillin and the septins promote asymmetric ingression of the cytokinetic furrow. Dev. Cell. 12, 827-835 (2007).
  30. Dorn, J. F., et al. Actomyosin tube formation in polar body cytokinesis requires Anillin in C. elegans. Curr. Biol. 20, 2046-2051 (2010).
  31. Calixto, A., Ma, C., Chalfie, M. Enhanced neuronal RNAi in C. elegans using SID-1. Nat. Methods. 7, 554-559 (2010).
check_url/fr/51188?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wernike, D., van Oostende, C., Piekny, A. Visualizing Neuroblast Cytokinesis During C. elegans Embryogenesis. J. Vis. Exp. (85), e51188, doi:10.3791/51188 (2014).

View Video