Summary

माउस मैक्रोफेज में सहज प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया की जांच करने के लिए आरएनए हस्तक्षेप का प्रयोग

Published: November 03, 2014
doi:

Summary

In this protocol, we describe methods to efficiently transfect murine macrophage cell lines with siRNAs using the Amaxa Nucleofector 96-well Shuttle System, stimulate the macrophages with lipopolysaccharide, and monitor the effects on inflammatory cytokine production.

Abstract

Macrophages are key phagocytic innate immune cells. When macrophages encounter a pathogen, they produce antimicrobial proteins and compounds to kill the pathogen, produce various cytokines and chemokines to recruit and stimulate other immune cells, and present antigens to stimulate the adaptive immune response. Thus, being able to efficiently manipulate macrophages with techniques such as RNA-interference (RNAi) is critical to our ability to investigate this important innate immune cell. However, macrophages can be technically challenging to transfect and can exhibit inefficient RNAi-induced gene knockdown. In this protocol, we describe methods to efficiently transfect two mouse macrophage cell lines (RAW264.7 and J774A.1) with siRNA using the Amaxa Nucleofector 96-well Shuttle System and describe procedures to maximize the effect of siRNA on gene knockdown. Moreover, the described methods are adapted to work in 96-well format, allowing for medium and high-throughput studies. To demonstrate the utility of this approach, we describe experiments that utilize RNAi to inhibit genes that regulate lipopolysaccharide (LPS)-induced cytokine production.

Introduction

इस प्रोटोकॉल में, हम siRNAs का उपयोग माउस बृहतभक्षककोशिका सेल लाइनों में जीन को बाधित और सहज प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया पर इन उपचार के प्रभाव पर नजर रखने के लिए कारगर तरीकों का वर्णन. इन प्रक्रियाओं मध्यम या उच्च throughput फैशन में आरएनएआई स्क्रीन के लिए अनुमति देता है, 96 अच्छी तरह प्रारूप में प्रदर्शन कर रहे हैं.

संक्रमण के जवाब में, मनुष्य एक तत्काल सहज प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया और एक धीमी लेकिन अधिक विशिष्ट अनुकूली प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया माउंट. यह तेजी से सहज प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया मैक्रोफेज 1 सहित phagocytic सहज प्रतिरक्षा कोशिकाओं की भर्ती और सक्रियण शामिल है. प्रतिष्ठित सक्रिय मैक्रोफेज तीव्र भड़काऊ प्रतिक्रियाओं में शामिल और रोगाणुरोधी प्रोटीन और यौगिकों, साइटोकिन्स और chemokines, और वर्तमान एंटीजन 2,3 का उत्पादन कर रहे हैं. वैकल्पिक रूप से सक्रिय मैक्रोफेज सहिष्णुता, ऊतकों की मरम्मत को बनाए रखने, प्रतिरक्षा को विनियमित करने में एक भूमिका निभाते हैं, और 4-8 घाव भरने. क्योंकि कार्यों की उनके ठहरने का, मैक्रोफेज atherosclerosis, गठिया, और कैंसर 9 सहित कई बीमारियों में एक भूमिका निभा सकते हैं. इस प्रकार, मैक्रोफेज का अध्ययन रोग क्षेत्रों की एक विस्तृत विविधता में कुछ समय के लिए अनुसंधान का एक महत्वपूर्ण क्षेत्र रहा है.

सहज प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया में उनके महत्व के बावजूद, मैक्रोफेज के साथ काम करने के लिए कोशिकाओं को चुनौती देने जा सकता है. विशेष रूप से, यह जुड़े विषाक्तता 10,11 बिना मैक्रोफेज में लिपिड अभिकर्मकों का उपयोग कुशल अभिकर्मक प्राप्त करना कठिन है. इसके अलावा, siRNA कुशलता से मैक्रोफेज के लिए दिया जाता है, तब भी जब अक्सर पछाड़ना आरएनएआई प्रेरित जीन की मजबूती काफी उदार हो सकता है और जीन जीन से भिन्न हो सकती हैं.

इन तकनीकी चुनौतियों पर काबू पाने के लिए, हम दो माउस बृहतभक्षककोशिका सेल लाइनों, RAW264.7 17 और J774A.1 18 में अभिकर्मक और पछाड़ना तकनीक 12-16 अनुकूलित है. यह दृष्टिकोण अभिकर्मक के लिए Amaxa Nucleofector के 96 अच्छी तरह से शटल प्रणाली का उपयोग करता है; इस प्रणाली96 अच्छी तरह प्रारूप 19 में कोशिकाओं transfect करने के लिए विशेष अभिकर्मकों और electroporation की एक संयोजन का उपयोग करता है. अभिकर्मक के बाद, हम तरीकों सेल वसूली और व्यवहार्यता को अधिकतम करने के लिए और बाद में siRNA प्रेरित जीन पछाड़ना को अधिकतम करने का वर्णन है. इस दृष्टिकोण की उपयोगिता को वर्णन करने के लिए, हम lipopolysaccharide (LPS) के साथ इन कोशिकाओं को उत्तेजित, और कई समर्थक भड़काऊ साइटोकिन्स का उत्पादन के स्तर पर सहज प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया पर नजर रखने, इन बृहतभक्षककोशिका सेल लाइनों को siRNA वितरण के लिए एक प्रोटोकॉल का वर्णन. हम जिसके सदस्य LPS और अन्य रोगज़नक़ जुड़े आणविक पैटर्न (PAMPs) भावना, सहज प्रतिरक्षा को विनियमित करने के लिए टोल की तरह रिसेप्टर (TLR) परिवार, जो लक्ष्य में नमूना डेटा प्रदान करते हैं.

Protocol

बृहतभक्षककोशिका सेल लाइनों के 1. रखरखाव RAW264.7 बढ़ो और DMEM में J774A.1 सेल लाइनों 5% सीओ 2 की उपस्थिति में 37 डिग्री सेल्सियस पर 10% भ्रूण गोजातीय सीरम (FBS) के साथ पूरक. , बाँझपन बनाए रखने में मदद (इस सख्ती जरूरी नह?…

Representative Results

इस दृष्टिकोण का उपयोग अभिकर्मक की दक्षता प्रदर्शित करने के लिए, हम एक प्रवाह कोशिकामापी (चित्रा 1) का उपयोग FITC लेबल siRNA के तेज नजर रखी. सहज प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया की निगरानी के लिए हमारे ?…

Discussion

कई अध्ययनों में जो व्यक्ति जीन murine मैक्रोफेज में siRNA द्वारा लक्षित किया गया है प्रकाशित किया गया है. लिपिड की मध्यस्थता अभिकर्मक एक व्यक्ति के आधार पर बृहतभक्षककोशिका सेल लाइनों को siRNA देने के लिए इस्तेम?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Thanks to Brad Lackford for assistance optimizing some of the techniques described in this manuscript.

Materials

Amaxa nucleofector 96-well shuttle system Lonza AAM-1001S
Amaxa SF cell line 96-well nucleofector kit Lonza V4SC-2096
RAW264.7 mouse macrophage cell line ATCC TIB-71
J774A.1 mouse macrophage cell line ATCC TIB-67
siGenome smartpool siRNA Dharmacon varies depending on gene
Non-targeting control siRNA pool Dharmacon D-001206-13-20
Block-iT fluorescent oligo for electrooration Invitrogen 13750062
Ultrapure E. coli O111:B4 LPS List Biological Laboratories 421
DMEM, high glucose Invitrogen 11995-065
RPM1-1640 Invitrogen 11875-093
Penicillin-Streptomycin Solution (Pen/Strep) Fisher SV30010
0.25% Trypsin-EDTA Invitrogen 25200072
96 well tissue culture plates Fisher 07-200-89
96 well round bottom sterile plates (not coated) Fisher 07-200-745
Mouse IL-6 Duoset ELISA kit R&D Biosystems DY406
Mouse TNFa Duoset ELISA kit R&D Biosystems DY410
Fluorescein diacetate Sigma-Aldrich F7378
RLT Bufer Qiagen 79216
Rneasy mini kit Qiagen 74134
Vybrant Phagocytosis Assay Kit Invitrogen V-6694

References

  1. Kaufmann, S. H. E., Medzhitov, R., Gordon, S. . The innate immune response to infection. , (2004).
  2. Adams, D. O., Hamilton, T. A. The cell biology of macrophage activation. Annual review of immunology. 2, 283-318 (1984).
  3. Fujiwara, N., Kobayashi, K. Macrophages in inflammation. Current drug targets. Inflammation and allergy. 4, 281-286 (2005).
  4. Gordon, S., Martinez, F. O. Alternative activation of macrophages: mechanism and functions. Immunity. 32, 593-604 (2010).
  5. Martinez, F. O., Helming, L., Gordon, S. Alternative activation of macrophages: an immunologic functional perspective. Annual review of immunology. 27, 451-483 (2009).
  6. Fairweather, D., Cihakova, D. Alternatively activated macrophages in infection and autoimmunity. Journal of autoimmunity. 33, 222-230 (2009).
  7. Benoit, M., Desnues, B., Mege, J. L. Macrophage polarization in bacterial infections. Journal of immunology. 181, 3733-3739 (2008).
  8. Mantovani, A., Sica, A., Locati, M. Macrophage polarization comes of age. Immunity. 23, 344-346 (2005).
  9. Burke, B., Lewis, C. E. . The macrophage. , (2002).
  10. Lee, G., Santat, L. A., Chang, M. S., Choi, S. RNAi methodologies for the functional study of signaling molecules. PloS one. 4, (2009).
  11. Carralot, J. P., et al. Automated high-throughput siRNA transfection in raw 264.7 macrophages: a case study for optimization procedure. Journal of biomolecular screening. 14, 151-160 (2009).
  12. Alper, S., et al. Identification of innate immunity genes and pathways using a comparative genomics approach. ProcNatl Acad Sci USA. 105, 7016-7021 (2008).
  13. De Arras, L., et al. An evolutionarily conserved innate immunity protein interaction network. J. Bio. Chem. , 1967-1978 (2013).
  14. Yang, I. V., et al. Novel regulators of the systemic response to lipopolysaccharide. Am J Respir Cell Mol Biol. 45, 393-402 (2011).
  15. Yang, I. V., et al. Identification of novel innate immune genes by transcriptional profiling of macrophages stimulated with TLR ligands. Molecular immunology. 48, 1886-1895 (2011).
  16. Yang, I. V., et al. Identification of novel genes that mediate innate immunity using inbred mice. Génétique. 183, 1535-1544 (2009).
  17. Raschke, W. C., Baird, S., Ralph, P., Nakoinz, I. Functional macrophage cell lines transformed by Abelson leukemia virus. Cell. 15, 261-267 (1978).
  18. Ralph, P., Moore, M. A., Nilsson, K. Lysozyme synthesis by established human and murine histiocytic lymphoma cell lines. The Journal of experimental medicine. , 1528-1533 (1976).
  19. Zumbansen, M., et al. First siRNA library screening in hard-to-transfect HUVEC cells. Journal of RNAi and gene silencing. 6, 354-360 (2010).
  20. Lu, Y. C., Yeh, W. C., Ohashi, P. S. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 42, 145-151 (2008).
  21. Aliprantis, A. O., et al. Cell activation and apoptosis by bacterial lipoproteins through toll-like receptor-2. Science. 285, 736-739 (1999).
  22. Alexopoulou, L., Holt, A. C., Medzhitov, R., Flavell, R. A. Recognition of double-stranded RNA and activation of NF-kappaB by Toll-like receptor 3. Nature. 413, 732 (2001).
  23. Conforti, R., et al. Opposing effects of toll-like receptor (TLR3) signaling in tumors can be therapeutically uncoupled to optimize the anticancer efficacy of TLR3 ligands. Cancer Res. 70, 490-500 (2010).
  24. Fernandez-Botran, R., Větvička, V. . Methods in Cellular Immunology. 8, 8 (2001).
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Citer Cet Article
De Arras, L., Guthrie, B. S., Alper, S. Using RNA-interference to Investigate the Innate Immune Response in Mouse Macrophages. J. Vis. Exp. (93), e51306, doi:10.3791/51306 (2014).

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