Summary

En fuld huddefekten model til evaluering Vaskularisering biomaterialer<em> In Vivo</em

Published: August 28, 2014
doi:

Summary

Vaskularisering er nøglen til tilgange i vellykket tissue engineering. Derfor er pålidelige teknologier nødvendige for at vurdere udviklingen af ​​vaskulære netværk i væv-konstruktioner. Her præsenterer vi en enkel og omkostningseffektiv metode til at visualisere og kvantificere vaskularisering in vivo.

Abstract

Utilstrækkelig vaskularisering anses for at være en af ​​de vigtigste faktorer, der begrænser den kliniske succes for væv-manipuleret konstruktioner. For at vurdere nye strategier, der sigter mod at forbedre vaskularisering, er pålidelige metoder kræves for at gøre det i vækst af nye blodkar i bio-kunstige stilladser synlige og kvantificere resultaterne. Gennem de seneste par år, har vores gruppe indført et komplet hud defekt model, der gør det muligt direkte visualisering af blodkar ved gennemlysning og giver mulighed for kvantificering via digital segmentering. I denne model, en kirurgisk skaber fuld overfladefejl i ryggen af ​​mus og erstatter dem med det afprøvede materiale. Molekyler eller celler af interesse kan også indgå i sådanne materialer til at studere deres potentielle effekt. Efter en observationstid på ens egen valg, materialer eksplanteret til evaluering. Bilaterale sår giver muligheden for at gøre de interne sammenligninger thved minimering af artefakter mellem individer samt mindske antallet af dyr, der er nødvendige for undersøgelsen. I sammenligning med andre fremgangsmåder, vores metode giver en enkel, pålidelig og omkostningseffektiv analyse. Vi har implementeret denne model som en rutine værktøj til at udføre høj opløsning screening ved test vaskularisering af forskellige biomaterialer og bio-aktivering tilgange.

Introduction

I de seneste årtier har tissue engineering åbnet en ny terapeutisk mulighed for at erstatte vævsdefekter med kroppens egne celler 1. For at støtte den fysiologiske proces vævsregenerering er stilladser udformet som en bionedbrydelig struktur, der giver et scenarie, hvor celler fra sårlejet kan vokse og genoprette defekten 2,3.

Utilstrækkelig vaskularisering anses for at være den største hindring, som holder tilbage den kliniske gennembrud Bioartificial stilladser 4. Med indvækst af celler, bliver væsentlig efterspørgsel efter næringsstoffer og ilt stiger, og vaskularisering af materialet. Utilstrækkelig eller forsinket vaskularisering kan derfor føre til central nekrose af væv-manipuleret 5. Desuden blodkar forsyner immunkompetente celler og fjerne de metaboliske rester i regenererende område. Høje infektion satser og lav regenerering er kunnogle af konsekvenserne af utilstrækkelig blodperfusion observeret i tissue engineering, der har til formål at afværges ved at øge vaskularisering af stilladser 6,7.

Adskillige strategier, der sigter mod at forbedre vaskularisering fokus på den centrale rolle, biomaterialet selv og mikrostruktur af stilladset. Der er intensiv forskning bestræbelser på at udvikle nye tilgange i skiftende helingsprocessen fra reparation til regenerering, og dermed (gen) generere en væv med de nærmeste fysiologiske egenskaber til en, der skal genoprettes 8,9. Biomaterialer, der blev undersøgt og evalueret med hensyn til deres regenerative potentiale inkluderet kollagen, fibrin, chitosan og alginat 10,11. Disse biomaterialer kan bruges og kombineres som en rygrad til at bygge nye stilladser ved hjælp af forskellige strategier såsom væv decellularization, self-assembly, rapid prototyping og electrospinning 12. For at ENHstemmelse kroppens egen regenerationsevne kan stilladser blive bioaktiveres. Inkorporeringen af rekombinant angiogene vækstfaktorer 13 eller gen vektorer, der koder for sådanne faktorer, 14 har vist sig at forbedre vaskularisering af stilladset. Anvendelsen af stamceller er i vid udstrækning blevet vist at være en lovende strategi til forbedring vaskularisering, hvor mesenchymale stromale celler og endotheliale progenitorceller har fået mest opmærksomhed 15,16. Andre tilgange forsøger at bygge konstruktioner, der indeholder præfabrikerede netværk fartøj før transplantation 17. Trods intensiv indsats i stillads design og deres bio-aktivering, har ingen strategi forbedret vaskularisering ved et klinisk signifikant niveau, og med undtagelse af dermale udskiftninger i massive forbrændinger, er oversættelsen af gensplejsede materialer i klinisk rutine kun finder sted tøvende 18 .

En af grundene til, at vaskulariseringaf kunstige vævskonstruktioner er stadig et uløst problem, er vanskeligheden ved at evaluere resultaterne af nye teknologier i in vivo-metoder. Selvom in vitro-forsøg kan give vigtige indsigter vaskulariseringen potentiale stilladser, er egnede dyremodeller der kræves for at studere centrale parametre såsom biokompatibilitet af materialet, sikkerhed og effekt af behandlingen, og af særlig betydning, at vaskularisering af vævet konstruere. Derfor er pålidelige værktøjer visualisere og kvantificere blodkar netværk in vivo er afgørende.

I denne undersøgelse præsenterer vi en enkel og pålidelig metode, der tillader visualisering og kvantificering af det vaskulære netværk inde eksplanterede stillads. Denne metode er baseret på væv gennemlysning og digital segmentering. Da denne metode er ikke-invasiv, det giver mulighed for yderligere molekylære og histologiske analyser af målmaterialet.

Protocol

1. Fremstilling af stilladser Generer prøver af stilladser ved hjælp af 12 mm biopsi slag. At introducere bioaktive molekyler eller celler i stillads, dræne stilladser ved forsigtigt at klemme dem med en steril gaze. Derefter rehydrere stilladser ved tilsætning af 160 pi af en opløsning indeholdende de bioaktive molekyler eller celler af interesse. Dobbelt-tjek succes bioaktivering med celler gennem metaboliske assays, såsom MTT assays. Hvis det er nødvendigt, fastsætte forbindelse…

Representative Results

Der kan skabes en pålidelig bilateral fuld hud defekt i mus (figur 1), hvor huden kan erstattes af et biomateriale under undersøgelse (figur 2). Her er ingen større komplikationer under eller efter den operative procedure, hverken makroskopiske tegn på infektion eller udenlandsk organ reaktion. I sjældne tilfælde, bliver et stillads tabt, når en mus fjerner det. Sårkontraktion blev aldrig observeret (figur 3). Tissue gennemlysning tilladt klar visualisering af v…

Discussion

Der er behov for at etablere vellykkede tilgange til at forbedre blodperfusion i manipuleret væv konstruktioner, som kræver udvikling af nye pålidelige metoder til at studere vaskulariseringen processer inden for biomaterialer. Almindelige metoder til fremstilling stillads vaskularisering ex vivo synlig indbefatter anvendelse af mikroskopi, som giver en høj opløsning værktøj. I de fleste tilfælde, selv om denne metode er begrænset til analyse af små vævs områder, og har tendens til at være dyrt og …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Integra dermal regenerering skabelon er venligst leveret af Integra LifeSciences Corporation. Kilder til midlerne til støtte for arbejdet: Dette arbejde blev delvist finansieret af CIRM-BMBF Tidlig Translationel II Award og FONDAP Center for Genome regulering både JTE (Nr 15090007.).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Ethilon P-3 13 mm 3/8 circle 5-0 Ethicon, Norderstedt, Germany 698G Ethilon polyamid-6 precision point-reverse cutting suture
Biopsy punches (10 mm) Xiomedics, Acuderm inc., Fort Lauderdale, FL, USA P1050
Biopsy punches (12 mm) Xiomedics, Acuderm inc., Fort Lauderdale, FL, USA P1250
Digital camera  Ricoh, Hannover, Germany Cx1
Gazin Mullkompresse  Lohmann und Rauscher, Neuwied, Germany 13622 Sterile gauze (10 cm x 10 cm)
Double-layer collagen-based scaffold (8 'x 10') Integra Life Science Corporation, Plainsboro, NJ, USA 88101
Isoflurane, liquid-gas for inhalative anesthesia  Baxter, Unterschleissheim, Germany 100196040
Pentobarbital, 16 g / 100 ml Fa. Merial, Hallbergmoos
Nuri Nu/Nu Nude mice, CrLNU-Foxn1nu Charles River, Sulzfeld, Germany Strain code 088 Athymic nude mice, 6 to 8 weeks of age and with a body weight between 20 to 25 g 
Buprenorphine (0.3 mg/ml) Essex Pharma GmbH, Munich, Germany
Titanized mesh (15 cm x 15 cm), extralight PFM Medical AG, Köln, Germany 6000029
Tissucol Duo S Immuno 2 ml Baxter Germany GmbH, Unterschleißheim, Germany B1332020110614 Fibrin-thrombin solution 
Transparent adhesove drape (30.5 cm x 26 cm) KCI Medical Products, Wimborne Dorset, UK M6275009/10

References

  1. Rahaman, M. N., Mao, J. J. Stem cell-based composite tissue constructs for regenerative medicine. Biotechnology and Bioengineering. 91 (3), 261-284 (2005).
  2. Lutolf, M. P., Hubbell, J. A. Synthetic biomaterials as instructive extracellular microenvironments for morphogenesis in tissue engineering. Nature Biotechnology. 23, 47-55 (2005).
  3. Machens, H. G., Berger, A. C., Mailaender, P. Bioartificial skin. Cells Tissues Organs. 167, 88-94 (2000).
  4. Priya, S. G., Jungvid, H., Kumar, A. Skin tissue engineering for tissue repair and regeneration. Tissue Engineering Part B: Reviews. 14, 105-118 (2008).
  5. Papavasiliou, G., Cheng, M. H., Brey, E. M. Strategies for vascularization of polymer scaffolds. Journal of Investigative Medicine. 58 (7), 838-844 (2010).
  6. Laschke, M. W., et al. Angiogenesis in tissue engineering: breathing life into constructed tissue substitutes. Tissue Engineering. 12, 2093-2104 (2006).
  7. Zhong, S. P., Zhang, Y. Z., Lim, C. T. Tissue scaffolds for skin wound healing and dermal reconstruction. Wiley Interdisciplinary Reviews Nanomedicine and Nanobiotechnology. 2 (5), 510-525 (2010).
  8. Liu, G., Zhang, Y., Liu, B., Sun, J., Li, W., Cui, L. Bone regeneration in a canine cranial model using allogeneic adipose derived stem cells and coral scaffold. Biomaterials. 34 (11), 2655-2664 (2013).
  9. Hansson, A., Di Francesco, T., Falson, F., Rousselle, P., Jordan, O., Borchard, G. Preparation and evaluation of nanoparticles for directed tissue engineering. International Journal of Pharmaceutics. 439 (1-2), 73-80 (2012).
  10. Sarkar, S. D., Farrugia, B. L., Dargaville, T. R., Dhara, S. Chitosan-collagen scaffolds with nano/microfibrous architecture for skin tissue engineering. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 18, (2013).
  11. Wang, X., et al. The roles of knitted mesh-reinforced collagen-chitosan hybrid scaffold in the one-step repair of full-thickness skin defects in rats. Acta Biomaterials. 9 (8), 7822-7832 (2013).
  12. Rizzi, S. C., Upton, Z., Bott, K., Dargaville, T. R. Recent advances in dermal wound healing: biomedical device approaches. Expert Review of Medical Devices. 1, 143-154 (2010).
  13. des Rieux, A., et al. 3D systems delivering VEGF to promote angiogenesis for tissue engineering. Journal of Controlled Release. 150, 272-278 (2011).
  14. Reckhenrich, A. K., et al. Bioactivation of dermal scaffolds with a non-viral copolymer-protected gene vector. Biomaterials. 32, 1996-2003 (2011).
  15. Chen, J., et al. The Key Regulatory Roles of the PI3K/Akt Signaling Pathway in the Functionalities of Mesenchymal Stem Cells and Applications in Tissue Regeneration. Tissue Engineering Part B Rev. 19, 516-528 (2013).
  16. Fedorovich, N. E., et al. The role of endothelial progenitor cells in prevascularized bone tissue engineering: development of heterogenous constructs. Tissue Engineering Part A. 16 (7), 2355-2367 (2010).
  17. Wang, L., et al. Osteogenesis and angiogenesis of tissue-engineered bone constructed by prevascularized β-tricalcium phosphate scaffold and mesenchymal stem cells. Biomaterials. 36, 9452-9461 (2010).
  18. Cuadra, A., et al. Functional results of burned hands treated with Integra. Journal of Plastic, Reconstructive & Aesthetic Surgery. 65 (2), 228-234 (2012).
  19. Wilcke, I., et al. VEGF(165) and bFGF protein-based therapy in a slow release system to improve angiogenesis in a bioartificial dermal substitute in vitro and in vivo. Langenbecks Arch Surg. 392 (3), 305-314 (2007).
  20. Condurache, A., Aach, T., Grzybowsky, S., Machens, H. G. Vessel segmentation and analysis in laboratory skin transplant micro-angiograms. Proceedings of the Eighteenth IEEE Symposium on Computer-Based Medical Systems. , 21-26 (2005).
  21. Danner, S., et al. The use of human sweat gland-derived stem cells for enhancing vascularization during dermal regeneration. Journal of Investigative Dermatology. 132 (6), 1707-1716 (2012).
  22. Shaterian, A., et al. Real Time Analysis of the Kinetics of Angiogenesis and Vascular Permeability in an Animal Model of Wound Healing. Burns. 35 (6), 811-817 (2009).
  23. McDonald, D. M., Choyke, P. L. Imaging of angiogenesis: from microscope to clinic. Nature Medicine. 9 (6), 713-725 (2003).
  24. Bergeron, L., Tang, M., Morris, S. F. A review of vascular injection techniques for the study of perforator flaps. Plastic and Reconstructive Surgery. 117, 2050-2057 (2006).
  25. Schlatter, P., König, M. F., Karlsson, L. M., Burri, P. H. Quantitative study of intussusceptive capillary growth in the chorioallantoic membrane (CAM) of the chicken embryo. Microvascular Research. 54 (1), 65-73 (1997).
  26. Lehr, H. A., Leunig, M., Menger, M. D., Nolte, D., Messmer, K. Dorsal skinfold chamber technique for intravital microscopy in nude mice. American Journal of Pathology. 143 (4), 1055-1062 (1993).
  27. Menger, M. D., Jäger, S., Walter, P., Hammersen, F., Messmer, K. A novel technique for studies on the microvasculature of transplanted islets of Langerhans in vivo. International journal of microcirculation, clinical and experimental. 9 (1), 103-117 (1990).
  28. Laschke, M. W., et al. Three-dimensional spheroids of adipose-derived mesenchymal stem cells are potent initiators of blood vessel formation in porous polyurethane scaffolds. Acta Biomaterials. 9 (6), 6876-6884 (2013).
  29. Egaña, J. T., et al. Use of human mesenchymal cells to improve vascularization in a mouse model for scaffold-based dermal regeneration. Tissue Eng Part A. 15 (5), 1191-1200 (2009).
  30. Condurache, A., Aach, T. Vessel segmentation in angiograms using hysteresis thresholding. Proceedings of the Ninth IAPR Conference on Machine Vision Applications. , 269-272 (2005).
  31. Egaña, J. T., et al. Ex vivo method to visualize and quantify vascular networks in native and tissue engineered skin. Langenbecks Archives of Surgery. 394, 349-356 (2009).
check_url/fr/51428?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Schenck, T. L., Chávez, M. N., Condurache, A. P., Hopfner, U., Rezaeian, F., Machens, H., Egaña, J. T. A Full Skin Defect Model to Evaluate Vascularization of Biomaterials In Vivo. J. Vis. Exp. (90), e51428, doi:10.3791/51428 (2014).

View Video