Summary

En fremgangsmåde til frembringelse Pulmonal Neutrofili Brug Aerosolized Lipopolysaccharid

Published: December 15, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver en fremgangsmåde til at inducere neutrofil pulmonal inflammation ved udfordring aerosoliseret lipopolysaccharid ved forstøvning, at modellere akut lungeskade. Desuden er grundlæggende kirurgiske teknikker til lunge isolation, tracheal intubation og bronchoalveolær lavage også beskrevet.

Abstract

Akut lungeskade (ALI) er en alvorlig sygdom karakteriseret ved alveolær neutrofili, med begrænsede behandlingsmuligheder og høj dødelighed. Eksperimentelle modeller af ALI er nøglen til at øge vores forståelse af sygdommen patogenese. Lipopolysaccharid (LPS) fra gram-positive bakterier inducerer neutrofil inflammation i luftvejene og lungeparenkym af mus. Effektiv pulmonal levering af forbindelser, såsom LPS er imidlertid vanskeligt at opnå. I den fremgangsmåde der er beskrevet her, er pulmonal tilførsel i mus opnås ved udfordring for aerosoliseret Pseudomonas aeruginosa LPS. Opløst LPS blev aerosoliseret af en forstøver forbundet til trykluft. Mus blev udsat for en kontinuerlig strøm af LPS aerosol i en plexiglas kasse i 10 minutter, efterfulgt af 2 minutters konditionering efter aerosolen blev afbrudt. Trakealintubation og efterfølgende bronchoalveolær lavage, efterfulgt af formalin perfusion blev dernæst udført, hvilket tillader karakterisering af den sterile pulmonary inflammation. Aerosoliseret LPS genererer en pulmonal inflammation karakteriseret ved alveolær neutrofili, detekteret i bronchoalveolær udskylning og histologisk vurdering. Denne teknik kan sættes op på en lille pris med få apparater, og kræver minimal træning og ekspertise. Eksponeringen Systemet kan således rutinemæssigt på ethvert laboratorium, med potentiale til at øge vores forståelse af lunge patologi.

Introduction

Lipopolysaccharid (LPS) er en cellevægsbestanddel af gramnegative bakterier 1. Challenge LPS er en veldokumenteret model for akut lungeskade, et syndrom karakteriseret ved akut neutrofil inflammation og ødem 2. Desuden pulmonal neutrofili er også et kendetegn for kronisk obstruktiv lungesygdom (COPD) 3, og LPS-provokationen i mennesker er blevet anvendt til at modellere KOL forværringer 4. Således eksperimentelle modeller af LPS eksponering er klinisk relevante og værdifulde værktøjer til at forstå den menneskelige patologi.

Formålet med den pulmonale levering af aerosoliserede LPS beskrevet her er at generere en neutrofil inflammatorisk respons i den ledende og luftvejene, uden systemisk involvering. Adskillige teknikker til LPS-provokationen er blevet beskrevet tidligere. Intravenøs injektion af LPS er den mest almindeligt anvendte indgivelsesvej. Selv om denne teknik er let tilgængelig, than primære skade på endotelet, med sekundær ødelæggelse af lungeepitelet efter neutrofil migration til lungen. Intravenøs administration inducerer også systemisk inflammation 2, som kan komplicere det kliniske billede i dyremodeller. Systemisk inflammation er i modsætning ikke observeret med intratracheal administration. Denne teknik er imidlertid arbejdskrævende og kræver anæstesi samt en betydelig træning 5, 6. Desuden pulmonal deposition af denne administrationsvej afhænger af vejrtrækning 7. Således lungeaflejring påvirket af dybden af ​​bedøvelse er nødvendige for kan observeres intra administration luftrør og variabel aflejring i luftvejene. I modsætning hertil pulmonal levering med aerosoliserede LPS kræver minimal træning, og kan let opnås på et stort antal dyr med lille eller ingen variation mellem individer 5, 8.En nylig undersøgelse viser, at aerosol levering er overlegen i forhold til intratracheal rute med hensyn til aflejring, og at mere relevante doser af LPS inducerer neutrofil inflammation med denne model 8.

Tidligere undersøgelser har vist, at udfordring for aerosoliseret Pseudomonas aeruginosa LPS genererer en markant inflammatorisk reaktion i luftvejslumen og lungeparenkym, herunder alveolære rum 9, 10. Inflammationen er kendetegnet ved en overvægt af neutrofiler og tilstedeværelsen af ​​lungeødem, og kan således anvendes til at behandle patogenesen af ​​akut lungeskade og få yderligere kendskab til de mekanismer, der bidrager til sygdommen patologi.

Protocol

Undersøgelserne dyr blev godkendt af Nordlige Stockholm dyrevelfærd etiske udvalg. De eksperimentelle procedurer blev udført i overensstemmelse med den svenske lovgivning. 1. Generering en LPS Aerosol 0,5 g oprenset P. Opløs aeruginosa LPS i 50 ml sterilt saltvand under forsigtig omrøring og kontrollere opløsning. Fortyndes 1 ml opløst LPS i 9 ml sterilt saltvand til en slutkoncentration på 1 mg / ml. Beskyt mod lys med alufolie og opbevares ved -20 ° C….

Representative Results

Udfordring til aerosoliseret P. aeruginosa LPS giver normalt en markant inflammatorisk reaktion i luftvejslumen og alveolære rum, kendetegnet ved en overvægt af neutrofiler på både tidlige og sene tidspunkter. Aerosoliseret LPS inducerer pulmonal neutrofili C57BL / 6by og BALB / c-mus blev udsat for aerosoliseret P. aeruginosa LPS eller alene køretøjet og neutrofiler blev optalt i BALF. Det samlede celleantal i BALF af C57BL / 6by mus udsat f…

Discussion

Aerosoliseret LPS genererer et inflammatorisk respons i luftvejene, kendetegnet ved, neutrofiler i epitel submucosa, rum omkring de ledende luftveje, samt de alveolære rum. Dette er, sammen med den øgede totale proteinindhold i BALF, indikerer plasmalækage, repræsentant for patologien af ​​akut lungeskade. Som LPS inducerer en steril inflammation, reaktionen er uafhængig af det adaptive immunrespons, og der er begrænsninger for relevans for bakterielle infektioner. Teknikken kan dog anvendes til at dissekere i…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Kerstin Thim (AstraZeneca, Lund, Sverige), Benita Dahlberg og Dr. Anders Eklund (Karolinska Instituttet, Stockholm, Sverige) samt Dr. Martin Stampfli (McMaster University, Hamilton, ON, Canada) for dygtige assistance og ekspertrådgivning.

Materials

Name of the material/equipment  Company Catalog number Comments/Description
Purified Pseudomonas aeruginosa LPS  Sigma-Aldrich Harmful. Recomended purification. LPS purified from other bactria may be used.
Pari LC sprint star nebulizer PARI Respiratory Equipment Inc.  023G1250
TSI mass flowmeter 4040 TSI 4040 Alternative product from supplier may be used.
Saint-Gobain 15.9 mm Tygon tube Sigma-Aldrich Z685704 Recomended brand.
Plexiglas boxes with removable lids Custom built N/A 150 x 163 x 205 mm (a 2 mm hole on the side). 
3M Half Facepiece Reusable Respirator 3M 7503 Recomended brand.
3M Advanced Particulate Filters (P100)  3M 2291 Recomended brand.
Sissors VWR 233-1104 Preferred scissors may be used.
Forceps  VWR 232-1313 Preferred forceps may be used.
Intramedic PE50 polyethylene tube BD 427411 Recomended brand.
Ethicon 2-0 Perma-hand silk tread  VWR 95056-992 Recomended brand.
26 ½  gage needle  Alternative suppliers exist.
1 mL BD slip-tip syringe, non-sterile BD 301025 Alternative suppliers exist.
60 mL BD Luer-Lok syringe, non-sterile, polypropolene  BD 301035 Alternative suppliers exist.
Fluka Hematoxylin-Eosin Sigma-Aldrich 3972 Alternative suppliers exist.
Türk's solution Merck Millipore 109277
Table top centrifuge Alternative manufacturers exist.
Cytospin 4 cytocentrifuge Thermo Scientific A78300003 Alternative centrifuge can be used. 
HEMA-3 stat pack Fisher Scientific 23-123-869 Alternative staining kits exists.
Formalin solution, neutral buffered, 10% Sigma-Aldrich HT501128  Alternative suppliers exist.

References

  1. King, J. D., Kocincova, D., Westman, E. L., Lam, J. S. Review: Lipopolysaccharide biosynthesis in Pseudomonas aeruginosa. Innate Immun. 15, 261-312 (2009).
  2. Grommes, J., Soehnlein, O. Contribution of neutrophils to acute lung injury. Mol Med. 17, 293-307 (2011).
  3. Pesci, A., et al. Inflammatory cells and mediators in bronchial lavage of patients with chronic obstructive pulmonary disease. Eur Respir J. 12, 380-386 (1998).
  4. Hoogerwerf, J. J., et al. Lung Inflammation Induced by Lipoteichoic Acid or Lipopolysaccharide in Humans. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 178, 34-41 (2008).
  5. Scheuchenzuber, W. J., Eskew, M. L., Zarkower, A. Comparative humoral responses to Escherichia coli and sheep red blood cell antigens introduced via the respiratory tract. Exp Lung Res. 13, 97-112 (1987).
  6. Asti, C., et al. Lipopolysaccharide-induced lung injury in mice. I. Concomitant evaluation of inflammatory cells and haemorrhagic lung damage. Pulm Pharmacol Ther. 13, 61-69 (2000).
  7. Brand, P., et al. Total deposition of therapeutic particles during spontaneous and controlled inhalations. Journal of pharmaceutical sciences. 89, 724-731 (2000).
  8. Liu, F., Li, W., Pauluhn, J., Trubel, H., Wang, C. Lipopolysaccharide-induced acute lung injury in rats: comparative assessment of intratracheal instillation and aerosol inhalation. Toxicology. 304, 158-166 (2013).
  9. Skerrett, S. J., et al. Role of the type 1 TNF receptor in lung inflammation after inhalation of endotoxin or Pseudomonas aeruginosa. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 276, L715-L727 (1999).
  10. Roos, A. B., et al. Lung epithelial-C/EBPbeta contributes to LPS-induced inflammation and its suppression by formoterol. Biochem Biophys Res Commun. 423, 134-139 (2012).
  11. Didon, L., et al. Lung epithelial CCAAT/enhancer-binding protein-beta is necessary for the integrity of inflammatory responses to cigarette smoke. Am J Respir Crit Care Med. 184, 233-242 (2011).
  12. Silverpil, E., et al. Negative feedback on IL-23 exerted by IL-17A during pulmonary inflammation. Innate Immunity. 19, 479-492 (2013).
  13. Mercer, P. F., et al. Proteinase-Activated Receptor-1, CCL2 and CCL7 Regulate Acute Neutrophilic Lung Inflammation. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. , (2013).
  14. Korkmaz, B., Horwitz, M. S., Jenne, D. E., Gauthier, F. . Neutrophil Elastase, Proteinase 3, and Cathepsin G as Therapeutic Targets in Human Diseases. Pharmacological Reviews. 62, 726-759 (2010).
  15. Bafadhel, M., et al. Acute Exacerbations of COPD: Identification of Biological Clusters and Their Biomarkers. Am. J. Respir. Crit. Care Med. , 201104-200597 (2011).
  16. Hurst, J. R., Perera, W. R., Wilkinson, T. M. A., Donaldson, G. C., Donaldson, G. C., Wedzicha, G. C. Systemic and Upper and Lower Airway Inflammation at Exacerbation of Chronic Obstructive Pulmonary. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 173, 71-78 (2006).
  17. Rabe, K. F., et al. Global Strategy for the Diagnosis, Management, and Prevention of Chronic Obstructive Pulmonary Disease: GOLD Executive Summary. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 176, 532-555 (2007).
check_url/fr/51470?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Roos, A. B., Berg, T., Ahlgren, K. M., Grunewald, J., Nord, M. A Method for Generating Pulmonary Neutrophilia Using Aerosolized Lipopolysaccharide. J. Vis. Exp. (94), e51470, doi:10.3791/51470 (2014).

View Video