Summary

En metod för att generera Pulmonell neutrofili Använda aerosoliserad Lipopolysackarid

Published: December 15, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver en metod för att inducera neutrofil pulmonell inflammation genom utmaning för aerosoliserad lipopolysackarid genom nebulisering, att modellera akut lungskada. Dessutom är grundläggande kirurgiska tekniker för lung- isolering, trakeal intubering och bronkoalveolärt lavage också beskrivits.

Abstract

Akut lungskada (ALI) är en allvarlig sjukdom som kännetecknas av alveolär neutrofili, med begränsade behandlingsalternativ och hög dödlighet. Experimentella modeller av ALI är nyckeln för att öka vår förståelse av sjukdomen patogenes. Lipopolysackarid (LPS) härrörande från grampositiva bakterier inducerar neutrofil inflammation i luftvägarna och lungparenkym av möss. Effektiv pulmonal tillförsel av föreningar, såsom LPS är dock svårt att uppnå. I den metod som beskrivs här, är pulmonell leverans i möss uppnås genom utmaning för aerosoliserad Pseudomonas aeruginosa LPS. Löst LPS aerosol genom en nebulisator kopplad till tryckluft. Möss utsattes för ett kontinuerligt flöde av LPS aerosol i en plexiglaslåda i 10 min, följt av 2 min konditionering efter aerosol avbröts. Trakealintubation och efterföljande lungsköljning, följt av formalin perfusion var nästa utförts, vilket möjliggör för karakterisering av den sterila pulmonary inflammation. Aerosolform LPS genererar en lunginflammation som kännetecknas av alveolär neutrofili, upptäcktes i bronkoalveolärt lavage och genom histologisk bedömning. Denna teknik kan sättas upp till en liten kostnad med få apparater, och kräver minimal utbildning och kompetens. Exponeringssystemet kan således rutinmässigt vid alla laboratorier, med potential att öka vår förståelse av lungpatologi.

Introduction

Lipopolysackarid (LPS) är en cellväggkomponent av gramnegativa bakterier 1. Utmaning till LPS är en väldokumenterad modell av akut lungskada, ett syndrom som kännetecknas av akut neutrofil inflammation och ödem 2. Dessutom är lung neutrofili också ett kännetecken för kronisk obstruktiv lungsjukdom (KOL) 3, och LPS utmaningen hos människa har använts för att modellera KOL exacerbationer 4. Således experimentella modeller av LPS exponering är kliniskt relevanta och värdefulla verktyg för att förstå människans patologi.

Syftet med pulmonell leverans av aerosolform LPS beskrivs här är att generera en neutrofil inflammatoriskt svar i ledande och andningsvägarna, utan systemiskt engagemang. Flera tekniker för LPS-utmaning har beskrivits tidigare. Intra-venös injektion av LPS är den mest använda administreringssättet. Även om denna teknik är lättillgänglig, tHan primär skada är att endotelet, med sekundär förstörelse av lung epitel efter neutrofilmigrationen till lungan. Intravenös administrering inducerar även systemisk inflammation 2, vilket kan komplicera den kliniska bilden i djurmodeller. Systemisk inflammation står i kontrast inte observerats med intratrakeal administration. Denna teknik är dock arbetsintensiv och kräver bedövningsmedel samt betydande utbildning 5, 6. Dessutom är lung nedfall genom denna administreringsväg beroende andning 7. Således är lung nedfall påverkas av anestesidjupet behövs för intra trakeal administration och rörlig nedfall i luftvägarna kan observeras. Däremot kräver pulmonell leverans med aerosolform LPS minimal utbildning, och kan lätt åstadkommas på ett stort antal djur med liten eller ingen variation mellan individer 5, 8.En färsk studie bekräftar att aerosoltillförsel är överlägsen den intratrakeal väg när det gäller deponering, och att mer relevanta doser av LPS inducerar neutrofil inflammation med denna modell 8.

Tidigare studier har visat att utmaningen till aerosolisPseudoMonas aeruginosa LPS alstrar en markerad inflammatoriskt svar i luftvägslumen och lungparenkym, däribland de alveolära utrymmena 9, 10. Inflammationen karakteriseras av en övervikt av neutrofiler och förekomst av lungödem, och kan således användas för att ta itu med patogenes av akut lungskada och uppnå ytterligare kunskap om de mekanismer som bidrar till sjukdomspatologin.

Protocol

Djurstudier har godkänts av Norra Stockholms djurskydds etisk kommitté på. De experimentella procedurer utfördes i enlighet med Svensk lag. 1. Att utveckla en LPS Aerosol Lös 0,5 g renad P. aeruginosa LPS i 50 ml steril koksaltlösning under försiktig omrörning och verifiera upplösningen. Späd 1 ml upplösta LPS i 9 ml steril saltlösning, till en slutlig koncentration av 1 mg / ml. Skyddas från ljus med aluminiumfolie och förvara vid -20 ° C. Tina s…

Representative Results

Utmaning till aerosoliserad P. aeruginosa LPS ger oftast en markerad inflammatorisk reaktion i luftvägslumen och alveolär utrymme, som kännetecknas av en dominans av neutrofiler vid både tidiga och sena tidpunkter. Aerosolform LPS inducerar pulmonell neutrofili C57BL / 6BY och BALB / c-möss exponerades för aerosoliserad P. aeruginosa LPS eller ensam fordonet och neutrofiler räknades i BALF. Det totala antalet celler i BALF av C57BL / 6BY mö…

Discussion

Aerosoliserad LPS genererar en inflammatorisk reaktion i luftvägarna, som kännetecknas av neutrofiler i epitelial submukosa, utrymmen som omger luftvägarna, liksom de alveolära utrymmena. Detta är, tillsammans med den ökade totala proteininnehållet i BALF, ett tecken på plasmaläckage, representativ för patologi av akut lungskada. Som LPS inducerar en steril inflammation, är reaktionen oberoende av det adaptiva immunsvaret, och det finns begränsningar för relevans för bakterieinfektioner. Tekniken kan emell…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vill tacka Kerstin Thim (AstraZeneca, Lund, Sverige), Benita Dahlberg och Dr Anders Eklund (Karolinska Institutet, Stockholm, Sverige) samt Dr Martin Stampfli (McMaster University, Hamilton, ON, Kanada) för skickliga bistånd och expertråd.

Materials

Name of the material/equipment  Company Catalog number Comments/Description
Purified Pseudomonas aeruginosa LPS  Sigma-Aldrich Harmful. Recomended purification. LPS purified from other bactria may be used.
Pari LC sprint star nebulizer PARI Respiratory Equipment Inc.  023G1250
TSI mass flowmeter 4040 TSI 4040 Alternative product from supplier may be used.
Saint-Gobain 15.9 mm Tygon tube Sigma-Aldrich Z685704 Recomended brand.
Plexiglas boxes with removable lids Custom built N/A 150 x 163 x 205 mm (a 2 mm hole on the side). 
3M Half Facepiece Reusable Respirator 3M 7503 Recomended brand.
3M Advanced Particulate Filters (P100)  3M 2291 Recomended brand.
Sissors VWR 233-1104 Preferred scissors may be used.
Forceps  VWR 232-1313 Preferred forceps may be used.
Intramedic PE50 polyethylene tube BD 427411 Recomended brand.
Ethicon 2-0 Perma-hand silk tread  VWR 95056-992 Recomended brand.
26 ½  gage needle  Alternative suppliers exist.
1 mL BD slip-tip syringe, non-sterile BD 301025 Alternative suppliers exist.
60 mL BD Luer-Lok syringe, non-sterile, polypropolene  BD 301035 Alternative suppliers exist.
Fluka Hematoxylin-Eosin Sigma-Aldrich 3972 Alternative suppliers exist.
Türk's solution Merck Millipore 109277
Table top centrifuge Alternative manufacturers exist.
Cytospin 4 cytocentrifuge Thermo Scientific A78300003 Alternative centrifuge can be used. 
HEMA-3 stat pack Fisher Scientific 23-123-869 Alternative staining kits exists.
Formalin solution, neutral buffered, 10% Sigma-Aldrich HT501128  Alternative suppliers exist.

References

  1. King, J. D., Kocincova, D., Westman, E. L., Lam, J. S. Review: Lipopolysaccharide biosynthesis in Pseudomonas aeruginosa. Innate Immun. 15, 261-312 (2009).
  2. Grommes, J., Soehnlein, O. Contribution of neutrophils to acute lung injury. Mol Med. 17, 293-307 (2011).
  3. Pesci, A., et al. Inflammatory cells and mediators in bronchial lavage of patients with chronic obstructive pulmonary disease. Eur Respir J. 12, 380-386 (1998).
  4. Hoogerwerf, J. J., et al. Lung Inflammation Induced by Lipoteichoic Acid or Lipopolysaccharide in Humans. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 178, 34-41 (2008).
  5. Scheuchenzuber, W. J., Eskew, M. L., Zarkower, A. Comparative humoral responses to Escherichia coli and sheep red blood cell antigens introduced via the respiratory tract. Exp Lung Res. 13, 97-112 (1987).
  6. Asti, C., et al. Lipopolysaccharide-induced lung injury in mice. I. Concomitant evaluation of inflammatory cells and haemorrhagic lung damage. Pulm Pharmacol Ther. 13, 61-69 (2000).
  7. Brand, P., et al. Total deposition of therapeutic particles during spontaneous and controlled inhalations. Journal of pharmaceutical sciences. 89, 724-731 (2000).
  8. Liu, F., Li, W., Pauluhn, J., Trubel, H., Wang, C. Lipopolysaccharide-induced acute lung injury in rats: comparative assessment of intratracheal instillation and aerosol inhalation. Toxicology. 304, 158-166 (2013).
  9. Skerrett, S. J., et al. Role of the type 1 TNF receptor in lung inflammation after inhalation of endotoxin or Pseudomonas aeruginosa. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 276, L715-L727 (1999).
  10. Roos, A. B., et al. Lung epithelial-C/EBPbeta contributes to LPS-induced inflammation and its suppression by formoterol. Biochem Biophys Res Commun. 423, 134-139 (2012).
  11. Didon, L., et al. Lung epithelial CCAAT/enhancer-binding protein-beta is necessary for the integrity of inflammatory responses to cigarette smoke. Am J Respir Crit Care Med. 184, 233-242 (2011).
  12. Silverpil, E., et al. Negative feedback on IL-23 exerted by IL-17A during pulmonary inflammation. Innate Immunity. 19, 479-492 (2013).
  13. Mercer, P. F., et al. Proteinase-Activated Receptor-1, CCL2 and CCL7 Regulate Acute Neutrophilic Lung Inflammation. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. , (2013).
  14. Korkmaz, B., Horwitz, M. S., Jenne, D. E., Gauthier, F. . Neutrophil Elastase, Proteinase 3, and Cathepsin G as Therapeutic Targets in Human Diseases. Pharmacological Reviews. 62, 726-759 (2010).
  15. Bafadhel, M., et al. Acute Exacerbations of COPD: Identification of Biological Clusters and Their Biomarkers. Am. J. Respir. Crit. Care Med. , 201104-200597 (2011).
  16. Hurst, J. R., Perera, W. R., Wilkinson, T. M. A., Donaldson, G. C., Donaldson, G. C., Wedzicha, G. C. Systemic and Upper and Lower Airway Inflammation at Exacerbation of Chronic Obstructive Pulmonary. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 173, 71-78 (2006).
  17. Rabe, K. F., et al. Global Strategy for the Diagnosis, Management, and Prevention of Chronic Obstructive Pulmonary Disease: GOLD Executive Summary. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 176, 532-555 (2007).

Play Video

Citer Cet Article
Roos, A. B., Berg, T., Ahlgren, K. M., Grunewald, J., Nord, M. A Method for Generating Pulmonary Neutrophilia Using Aerosolized Lipopolysaccharide. J. Vis. Exp. (94), e51470, doi:10.3791/51470 (2014).

View Video