Des mutations dans actine provoquent une gamme de maladies humaines dues à des changements moléculaires spécifiques qui modifient souvent la fonction du cytosquelette. Dans cette étude, l'imagerie de fluorescence protéines marquées par fluorescence interne totale (FRBR) microscopie est utilisée pour visualiser et quantifier les changements dans la dynamique du cytosquelette. microscopie TIRF et l'utilisation de marqueurs fluorescents permet aussi de quantifier les changements dans la dynamique du cytosquelette causées par des mutations dans l'actine. En utilisant cette technique, la quantification de la fonction du cytosquelette dans les cellules vivantes complète utilement dans des études in vitro de la fonction des protéines. A titre d'exemple, des mutations faux-sens affectent le résidu R256 de l'actine ont été identifiés dans les trois isoformes d'actine humain suggère que cet acide aminé joue un rôle important dans les interactions régulatrices. Les effets de la mutation R256H actine du cytosquelette sur les mouvements ont été étudiés à l'aide du modèle de la levure. La protéine, AIP1, qui est connu pour aider à cofilin dépolymérisation de l'actine, étaitmarqués avec la protéine fluorescente verte (GFP) à l'extrémité N-terminale et suivis in vivo en utilisant la microscopie TIRF. La vitesse de déplacement Aip1p à la fois de type sauvage et des souches mutantes a été quantifiée. Dans les cellules exprimant R256H actine mutant, le mouvement Aip1p est limitée et le taux de circulation est pratiquement la moitié de la vitesse mesurée dans des cellules de type sauvage (0,88 ± 0,30 um / sec dans les cellules R256H par rapport à 1,60 ± 0,42 um / sec dans les cellules de type sauvage, p <0,005).