Summary

Metoder til karakterisering Spontan og overraske-induceret Locomotion i en Rotenon-induceret Parkinsons sygdom Model<em> Drosophila</em

Published: August 17, 2014
doi:

Summary

Parkinsons sygdom er en neurodegenerativ lidelse, der resulterer fra degenerering af dopaminerge neuroner i centralnervesystemet, der forårsager bevægelseskomponenter defekter. Rotenon modeller Parkinsons sygdom i Drosophila. Dette papir beskriver to analyser, der kendetegner både spontane og startle-inducerede bevægelseskomponenter mangler forårsaget af rotenon.

Abstract

Parkinsons sygdom er en neurodegenerativ lidelse, der resulterer fra degenerering af dopaminerge neuroner i centralnervesystemet, især i substantia nigra. Sygdommen forårsager motoriske mangler, som præsenterer som stivhed, rystelser og demens hos mennesker. Rotenon er et insekticid, der forårsager oxidativ skade ved at inhibere funktionen af ​​elektron transportkæde i mitokondrierne. Det er også bruges til at modellere Parkinsons sygdom i Drosophila. Fluer har en iboende negativ geotactic svar, som tvinger dem til at klatre opad efter at være blevet forskrækket. Det er blevet fastslået, at rotenon forårsager tidlig dødelighed og bevægelseskomponenter fejl, der forstyrrer fluerne evne til at klatre, efter at de er blevet tappet nedad. Imidlertid er effekten af ​​rotenon på spontan bevægelse ikke veldokumenteret. Denne undersøgelse skitserer to følsomme, reproducerbare, og analyser med høj kapacitet til at karakterisere Rotenon-induceret mangler ikortsigtet startle-induceret bevægelse og langvarig spontan bevægelse i Drosophila. Disse analyser kan nemt tilpasses til at karakterisere andre Drosophila modeller af bevægelseskomponenter fejl og effekten af terapeutiske midler.

Introduction

Locomotion mangler er en vigtig symptom på Parkinsons sygdom og er i vid udstrækning skyldes forringelse af dopaminerge neuroner i substantia nigra 1. Rotenon er en ketonisk insekticid, der er blevet undersøgt grundigt at modellere Parkinsons motoriske underskud i Drosophila 2-6. Rotenon forårsager oxidative skader ved at blokere den oxidative phosphorylering vej, hvilket i sidste ende forårsager celledød 7. Dopaminerge neuroner er mere tilbøjelige til rotenon toksicitet, hvilket gør virkningen af kemikaliet primært motor baseret 2,7. Ved at inducere symptomer på Parkinsons sygdom i fluer, kan vi bedre forstå sygdommen og afhjælpe dens symptomer 6,8-11. Drosophila giver en god model til at studere denne effekt, fordi de er genetisk medgørlig, let at vedligeholde, og har en hurtig livscyklus.

Adskillige undersøgelser har vist, at rotenon forårsager kortvarig chok-induceretbevægelseskomponenter defekter i Drosophila -når fluer vedligeholdes på rotenon-suppleret mad, de viser en langsommere negativ geotactic respons efter forskrækkelse 2-6. Deres manglende evne til at klatre opad i et hætteglas apparat så hurtigt som kontrolforsøg er tegn på forskrækkelseskasser-induceret bevægelseskomponenter defekter.

Effekten af rotenon på langsigtet, er spontan bevægelse ikke velbeskrevet. Drosophila aktivitet monitorer (dæmninger) med succes er blevet anvendt til at overvåge bevægelse i Drosophila døgnrytme undersøgelser 12,13. Fluer er placeret i de enkelte rør, der er indlæst i dæmningen. Dette apparat er udstyret med en infrarød sensor, der tæller antallet af gange en flue bryder den infrarøde stråle. Disse tællinger kan bruges som et mål for uforstyrret bevægelse og aktivitet 12,13. Ved at placere fluer i et DAM, kan effekten af ​​rotenon på deres langsigtede bevægelse karakteriseres. Undersøgelsen beskriver metoder til at measURE kortsigtet startle-induceret bevægelse og langvarig spontan bevægelse for bedre at forstå virkningerne af rotenon medieret motoriske mangler. Karakterisering af bevægelseskomponenter mangler efterligner Parkinsons sygdom er vigtige, fordi de giver mulighed for undersøgelse af andre forbindelser, der kan vende disse bevægelseskomponenter defekter.

Protocol

1. Drosophila Startle-induceret Locomotion assay Drug Treatment Adstadige at immobilisere ønskede antal (ca. 8-12) på 1-3 dage gammel mand fluer ved hjælp af CO 2 og transportere dem til hætteglas indeholdende lægemidlet-suppleret fødevarer. Bemærk: En anden bedøvelsesmiddel fx kan æter eller is bruges til at bedøve fluer at muliggøre optælling og håndtering. Tillad fluer til at inddrive fra sedation i 20 min (eller indtil nyttiggørelse) med hætte…

Representative Results

Drosophila Startle-induceret Locomotion assay Vildtype, kanton-S, fluer viste en robust negativ geotactic respons med kun cirka 88% og 5% af fluer i den øverste og nederste sektioner henholdsvis af dobbelt-hætteglasset apparat efter 30 sek (figur 1). Fluer udsat for 125 m og 250 um rotenon 3 dage viste et lille fald i antallet af fluer i den øverste del og svag stigning i antallet af fluer i nederste sektion. Fluer udsat for 500 uM roten…

Discussion

I denne undersøgelse beskriver vi to procedurer for måling af både langsigtede spontan bevægelse og kortsigtede chok-induceret bevægelse i en rotenon-induceret Drosophila model af Parkinsons sygdom. Man kan også måle disse bevægelseskomponenter karakteristika fluer udsat for andre farmakologiske midler, der vides at modellere Parkinsons sygdom f.eks paraquat 14 genetiske modeller af Parkinsons sygdom fx alfa-synuclein mutanter 15 og andre flyve modeller af sygdomm…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke Qiuli Wang, sprog Resource Center, Colby College, om teknisk bistand til videobehandling og Eric Thomas, afdelingen for musik, Colby College, for at give baggrundsmusik. Dette projekt blev støttet af tilskud fra National Center for Forskning Ressourcer, INBRE (P20RR016463-12), Det Nationale Institut for General Medical Sciences (P20 GM103423-12), Nationals Institutes of Health and Science Division Grant, Colby College (STA). JL og LWM blev støttet af tilskud fra Summer Scholar Fund, Colby College.

Materials

Standard narrow vials Genesee Scientific 32-120
Rotenone Sigma R8875 Store in freezer, make fresh for each experiment
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Sigma D8418 Solvent for rotenone
Instant Drosophila medium Carolina Biological  Formula 4-24
Drosophila activity monitor (DAM) Trikinetics DAM2 trikinetics.com
DAM tubes Trikinetics Tubes 5X65 mm
Recipe for Rotenone +food (125 mM dose) Make 62.5 mM rotenone stock solution in DMSO by dissolving 25 mg rotenone in 1 ml DMSO 
For 125 mM dose, add 10 mM rotenone stock in DMSO to 5 ml water.

References

  1. Olanow, C. W., Tatton, W. G. Etiology and pathogenesis of Parkinson’s disease. Annual review of neuroscience. 22, 123-144 (1999).
  2. Coulom, H., Birman, S. Chronic exposure to rotenone models sporadic Parkinson’s disease in Drosophila melanogaster. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 24, 10993-10998 (2004).
  3. Hosamani, R., Ramesh, S. R., Muralidhara, Attenuation of rotenone-induced mitochondrial oxidative damage and neurotoxicty in Drosophila melanogaster supplemented with creatine. Neurochemical research. 35, 1402-1412 (2010).
  4. Islam, R., et al. A neuroprotective role of the human uncoupling protein 2 (hUCP2) in a Drosophila Parkinson’s disease model. Neurobiology of disease. 46, 137-146 (2012).
  5. Lawal, H. O., et al. The Drosophila vesicular monoamine transporter reduces pesticide-induced loss of dopaminergic neurons. Neurobiology of. 40, 102-112 (2010).
  6. St Laurent, ., O’Brien, R., M, L., Ahmad, S. T. Sodium butyrate improves locomotor impairment and early mortality in a rotenone-induced Drosophila model of Parkinson’s disease. Neurosciences. 246, 382-390 (2013).
  7. Sherer, T. B., et al. Mechanism of toxicity in rotenone models of Parkinson’s disease. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 23, 10756-10764 (2003).
  8. Munoz-Soriano, V., Paricio, N. Drosophila models of Parkinson’s disease: discovering relevant pathways and novel therapeutic strategies. Parkinson’s disease. , 520640 (2011).
  9. Steffan, J. S., et al. Histone deacetylase inhibitors arrest polyglutamine-dependent neurodegeneration in Drosophila. Nature. 413, 739-743 (2001).
  10. Auluck, P. K., Bonini, N. M. Pharmacological prevention of Parkinson disease in Drosophila. Nature medicine. 8, 1185-1186 (2002).
  11. Whitworth, A. J., et al. Increased glutathione S-transferase activity rescues dopaminergic neuron loss in a Drosophila model of Parkinson’s disease. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 8024-809 (2005).
  12. Ahmad, S. T., Steinmetz, S. B., Bussey, H. M., Possidente, B., Seggio, J. A. Larval ethanol exposure alters free-running circadian rhythm and per Locus transcription in adult D. melanogaster period mutants. Behavioural brain research. 241, 50-55 (2013).
  13. Seggio, J. A., Possidente, B., Ahmad, S. T. Larval ethanol exposure alters adult circadian free-running locomotor activity rhythm in Drosophila melanogaster. Chronobiology international. 29, 75-81 (2012).
  14. Chaudhuri, A., et al. Interaction of genetic and environmental factors in a Drosophila parkinsonism model. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 2457-2467 (2007).
  15. Feany, M. B., Bender, W. W. A Drosophila model of Parkinson’s disease. Nature. 404, 394-398 (2000).
  16. Ali, Y. O., Escala, W., Ruan, K., Zhai, R. G. Assaying locomotor, learning, and memory deficits in Drosophila models of neurodegeneration. Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2011).
  17. Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila. Experimental gerontology. 40, 386-395 (2005).
  18. Nichols, C. D., Becnel, J., Pandey, U. B. Methods to assay Drosophila behavior. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
  19. Slawson, J. B., Kim, E. Z., Griffith, L. C. High-resolution video tracking of locomotion in adult Drosophila melanogaster. Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2009).
check_url/fr/51625?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Liao, J., Morin, L. W., Ahmad, S. T. Methods to Characterize Spontaneous and Startle-induced Locomotion in a Rotenone-induced Parkinson’s Disease Model of Drosophila. J. Vis. Exp. (90), e51625, doi:10.3791/51625 (2014).

View Video