En fremgangsmåte for å evaluere evnen av isolerte mus alveolære makrofager til å kontrollere veksten av fagocytterte Aspergillus spores ved konfokal mikroskopi.
Lungene er et grensesnitt der vertsceller blir rutinemessig utsatt for mikrober og mikrobielle produkter. Alveolære makrofager er de første linjer fagocytiske celler som møter inhalert sopp og andre mikrober. Makrofager og andre immunceller gjenkjenne Aspergillus motiver etter patogen anerkjennelse reseptorer og initiere nedstrøms inflammatoriske responser. Den phagocyte NADPH oksidase genererer reaktive oksygen mellomprodukter (Rois) og er kritisk for host forsvar. Selv om NADPH oksidase er kritisk for nøytrofil-mediert vertsforsvar 1 – 3, er betydningen av NADPH oksidase i makrofager er ikke godt definert. Målet med denne studien var å avgrense den spesifikke rolle NADPH oksidase i makrofager i formidling host forsvar mot A. fumigatus. Vi fant ut at NADPH oksidase i alveolære makrofager styrer veksten av phagocytosed A. fumigatus spores fire. Her beskriver vi en fremgangsmåte for å vurdere muligheten for en muslveolar makrofager (AMS) for å kontrollere veksten av phagocytosed Aspergillus sporer (conidia). Alveolære makrofager er farget in vivo og ti dager senere isolert fra mus ved bronchoalveolar lavage (BAL). Makrofager er belagt på glass dekkglass, deretter sådd med grønt fluorescerende protein (GFP)-uttrykke A. fumigatus sporer. På bestemte tidspunkter, blir cellene fiksert og antall intakte makrofager med fagocytterte sporer vurderes av konfokalmikroskopi.
Alveolære makrofager er de første linjer fagocytiske celler som møter inhalerte mikrober. Makrofager gjenkjenner Aspergillus motiver etter patogen anerkjennelse reseptorer, svelges og begrense veksten av inhalert sporer (conidia), og sette i gang betennelsesreaksjoner. Den phagocyte NADPH oksidase konverterer molekylært oksygen til superoksydanion og nedstrøms reaktive oksygen mellomprodukter (Rois). Kronisk granulomatøs sykdom (CGD) er en arvelig lidelse av NADPH oksidase preget av alvorlige bakterie-og soppinfeksjoner, og ved overdreven inflammatoriske responser.
Selv om NADPH oksidase er kritisk for nøytrofil-mediert vertsforsvar 1 – 3, er betydningen av NADPH oksidase i makrofager er ikke godt definert. Tidligere studier har vist at alveolære makrofager svelges og drepe Aspergillus sporer, mens nøytrofile hovedsakelig rettet mot hyphal scenen fem. Imidlertid har det vært motstridende results som til rollen som NADPH oksidase i makrofag til å kontrollere veksten av A. fumigatus spores 6, 7.
Målet med denne metoden var å avgrense den spesifikke rolle NADPH oksidase i makrofager i formidling host forsvar mot A. fumigatus sporer. Vi fant ut at NADPH oksidase i alveolære makrofager styrer veksten av phagocytosed A. fumigatus spores fire. Til tettest modelverts respons på inhalert sopp, brukte vi alveolære makrofager høstes av bronchoalveolar kylling fra unstimulated mus umiddelbart etter offer. Bruken av isolerte alveolære makrofager aktivert oss til å fokusere på sine soppdrepende aktivitet i fravær av andre immunceller (f.eks rekruttert nøytrofile), som beskytter mot Aspergillus in vivo. I denne fremgangsmåten, ble det alveolære makrofager farget in vivo før høsting, slik som å minimalisere mengden av etter innhøsting manipulasjon. </ P>
En annen fordel med denne protokoll er bruken av et GFP-uttrykk A. fumigatus belastning. Denne soppen uttrykker GFP fra conidial scenen gjennom hyphal scenen og har ikke behov for ytterligere misfarging. For å oppnå bilder med større detalj, valgte vi konfokal mikroskopi som muliggjør rekonstruksjon av tredimensjonale strukturer fra de oppnådde bildene. Tredimensjonal rekonstruksjon gir muligheten til å skille mellom hyfer vokser rundt stedet for i eller gjennom en makrofag. Conidia kan også være nettopp erklæres som intracellulær versus ekstracellulært.
Ved hjelp av denne metode for ex vivo analyse av antifungal aktivitet av makrofager sammen med in vivo sopp utfordring, vi tidligere demonstrert at NADPH oksidase i makrofager spiller en viktig rolle i forsvaret mot A. fumigatus fire. Bruken av isolerte alveolære makrofager gjør oss i stand til å fokusere på sine soppdrepende aktivitet i fravær av andre immunceller (f.eks rekruttert nøytrofile), som beskytter mot Aspergillus in vivo.
<p class="jove_conten…The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av National Institute of Allergy and Infectious Disease Grant R01AI079253 (til BHS), og av National Cancer Institute Cancer Center Support Grant CA016056 til Roswell Park Cancer Institute.
PKH26 Red Fluorescent Cell Linker Kit for General Cell Membrane Labeling | Sigma | PKH26GL-1KT | |
2,2,2 Tribromoethanol | Sigma | T48402 | Used to make AvertinAnesthetic |
2-methyl-2-butanol | Sigma | A-1685 | Used to make AvertinAnesthetic |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (without calcium and magnesium) | Corning | 21-031-CV | |
NH4CL | Sigma | A0171 | Used to make ACK red cell lysis buffer |
KHCO3 | Sigma | P91444 | Used to make ACK red cell lysis buffer |
EDTA | Sigma | E6758 | Used to make ACK red cell lysis buffer |
22 gauge X 1.00 inch i.v. catheter | BD | 381523 | Insyte Autoguard Winged |
insulin syringes | |||
6 ml syringes | |||
4-way stopcock | Fisher Scientific | 50-700-077 | |
suture thread | |||
50 ml conical centrifuge tubes | |||
gauze sponges (4 inch square) | |||
RPMI 1640 with L-glutamine | Corning | 10-040-CV | |
Fetal Bovine Serum | Hyclone | SH30396.03 | heat inactivated |
Hema 3 Stain Set | Fisher Scientific | 22-122-911 | |
Cytoseal 60 | Thermo Scientific | 8310-4 | |
Sabouraud Brain Heart Infusion Agar with Chloramphenicol and Gentamicin Slants | BD | 297252 | |
Aspergillus fumigatous strain expressing green fluorescent protein | provided by Dr Margo Moore, Simon Fraser University, Burnaby, BC, Canada | ||
100 micron Cell Strainers | BD Falcon | 64753-00 | |
scissors | |||
forceps | |||
Biological Safety Cabinet Class II | |||
Sorval ST40 Centrifuge with swing bucket rotor | |||
Leica DM1000 light microscope | |||
Hemocytometer | |||
Cytospin 2 centrifuge | Thermo Scientific | ||
Cell Culture Incubator | 37 °C, 5% CO2 | ||
22X22 mm micro cover glass | VWR | 48366-227 | glass coverslips |
6 well Cell Culture Plates | Corning | 3506 | |
10% Neutral Buffered Formalin | VWR | BDH0502-1LP | |
Vectashield Mounting medium with DAPI | Vector Laboratories | H-1200 | |
Leica TCS SP2 system with a laser point scanner | Mounted on DMIRE2 fluorescence microscope |