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Article de méthode

Modélisation astrocytome pathogenèse In Vitro Et In Vivo Utilisation corticale astrocytes ou cellules souches neurales à partir de, souris génétiquement modifiées conditionnelle

13.3K vues

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DOI :

10.3791/51763

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12 août 2014

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Dans cet article

Résumé

Les astrocytes phénotypiquement sauvages et les cellules souches neurales récoltées sur des souris modifiées avec des allèles oncogéniques conditionnels floxés et transformés par recombinaison virale médiée par Cre peuvent être utilisés pour modéliser la pathogenèse de l’astrocytome in vitro et in vivo par injection orthotopique de cellules transformées dans le cerveau de compagnons de portée syngéniques et immunocompétents.

Résumé

Les modèles actuels d’astrocytome sont limités dans leur capacité à définir les rôles des mutations oncogéniques dans des types spécifiques de cellules cérébrales au cours de la pathogenèse de la maladie et leur utilité pour le développement préclinique de médicaments. Afin de concevoir un meilleur système modèle pour ces applications, des astrocytes corticaux phénotypiquement sauvages et des cellules souches neurales (NSC) provenant de souris conditionnelles génétiquement modifiées (GEM) qui hébergent diverses combinaisons d’allèles oncogènes floxés ont été récoltés et cultivés. La recombinaison génétique a été induite in vitro à l’aide de la recombinaison adénovirale médiée par Cre, entraînant l’expression d’oncogènes mutés et la délétion de gènes suppresseurs de tumeurs. Les conséquences phénotypiques de ces mutations ont été définies en mesurant la prolifération, la transformation et la réponse aux médicaments in vitro. Des modèles d’allogreffes orthotopiques, dans lesquels des cellules transformées sont injectées de manière stéréotaxique dans le cerveau de compagnons de portée syngéniques immunocompétents, ont été développés pour définir le rôle des mutations oncogéniques et du type de cellule sur la tumorigenèse in vivo. Contrairement à la plupart des xénogreffes de lignées cellulaires de glioblastome humain établies, l’injection d’astrocytes corticaux transformés dérivés de GEM dans le cerveau de compagnons de portée immunocompétents a produit des astrocytomes, y compris le sous-type le plus agressif, le glioblastome, qui récapitulait les caractéristiques histopathologiques des astrocytomes humains, y compris l’invasion diffuse du parenchyme cérébral normal. L’imagerie par bioluminescence d’allogreffes orthotopiques d’astrocytes transformés modifiés pour exprimer la luciférase a été utilisée pour surveiller la croissance tumorale in vivo au fil du temps. Ainsi, les modèles d’astrocytome utilisant des astrocytes et des NSC récoltés à partir de GEM avec des allèles oncogènes conditionnels fournissent un système intégré pour étudier la génétique et la biologie cellulaire de la pathogenèse de l’astrocytome in vitro et in vivo et peuvent être utiles dans le développement préclinique de médicaments pour ces maladies dévastatrices.

Introduction

Les astrocytomes sont tumeur la plus fréquente primaire du cerveau et le glioblastome (GBM), un astrocytome de grade IV, est le sous-type le plus commun et agressif avec une survie médiane de 1,2 mois 12-15. Invasion de astrocytomes diffus, en particulier GBM, s'oppose à la résection chirurgicale complète, limite l'efficacité des traitements adjuvants, et conduit inévitablement à un post-traitement récidive 3. Les patients initialement présents soit avec de novo (primaire) GBM ou l'astrocytome de grade inférieur qui progresse inévitablement (secondaire) GBM 4. GBM est hétérogène sur le plan génomique et caractérisé par des....

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Protocole

Toutes les études sur les animaux ont été approuvés par l'Université de Caroline du Nord institutionnel de protection des animaux et l'utilisation Comité.

1 Culturing corticale astrocytes de souris néonatale

  1. Préparation
    1. 3.2 froisser les tissus de tâches délicates et la placer dans le fond d'un ballon contenant 70% d'éthanol. Placez ciseaux de dissection, pinces courbes et 2 paires de pince micro droites dans ce flacon. Les tissus sont utilisés pour éviter de plier les pince micro.
    2. Ajouter 1 ml de HBSS à une boîte de culture tissulaire de 60 mm. Préparer un plat séparé pour chaque animal et de ....

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Résultats

Nous avons développé un système modèle nGEM avec des astrocytes corticaux et NSC récoltées à partir néonatale GEM l'hébergement floxé allèles oncogènes conditionnels qui peuvent être caractérisées phénotypiquement in vitro et in vivo (figure 1). Afin d'étudier les conséquences de mutations oncogéniques spécifiquement dans les astrocytes corticaux in vitro, il est essentiel de d'abord enrichir pour les astrocytes. Récoltes astrocytes corticaux contiennent un mélange de la micro.......

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Discussion

Les étapes les plus critiques pour assurer la récolte et la culture d'astrocytes corticaux sont 1) le bon d'exciser le cortex sans prendre le tissu situé sous le corps calleux, 2) pour enlever les méninges, 3) de dissocier complètement les cellules, et 4) pour enrichir pour GFAP + astrocytes. Bien que nous utilisions mécanique (agitation) et génétiques (restriction d'une recombinaison génétique avec un vecteur d'Ad5GFAPCre ou l'utilisation d'un transgène de transformation dominant .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

CRM est un investigateur clinique Damon Runyon-Genentech. Ce travail a été soutenu, en partie, par des subventions à la CRM de la Fondation Damon Runyon pour la recherche sur le cancer (CI-45-09), du ministère de la Défense (W81XWH-09-2-0042) et du Fonds de recherche sur le cancer de l’Université de l’Université de Caroline du Nord (UCRF). Les auteurs souhaitent remercier Daniel Roth pour son aide dans l’élevage des souris. Les auteurs souhaitent également remercier Hannah Chae, Carter McCormick, Demi Canoutas, Stephanie Gillette et Susannah Krom pour leur aide en matière de culture tissulaire et d’immunofluorescence.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) (1X)Invitrogen11995065DMEM peut également être acheté auprès d’autres fournisseurs, notamment GIBCOSigma et Cellgro
Fetal Bovin Serum, RegularCellgro35-010-CV
Penicillin-StreptomycinInvitrogen15140122
Ciseaux de dissection à pointes acéréesFisher Scientific08-395
Pince à cartilage pour le pouce, incurvéeFisher Scientific1631
Miltex 17-301 Style 1 Pince de style bijoutier, fine, 4Miltex17-301
Éthanol (200 proof)Decon Labs2710
Lames de rasoirVWR55411-050
Solution saline équilibrée de Hanks (HBSS) (1x), liquideInvitrogen14175-095
TrypLE Express (1x), Phenol RedInvitrogen12605-010D’autres solutions de trypsine conviennent également pour l’avarie et la culture d’astrocytes corticaux
Boîte de culture, 60 x 15 mmThomas Scientific9380H77
15 ml TubesBD Biosciences352096
50 ml TubesBD Biosciences352070
Stock d’adénovirusTransfert de gènes Vector Core, U. IowaAd5CMVCreStore en 5 & micro ; l aliquotes à -80 ° ;C. Dangereux. Sulfate
de sodium (Na2SO<>4)  ;Sigma-Aldrich238597
Sulfate de potassium (K2SO4)Sigma-Aldrich221325
Chlorure de magnésium (MgCl2)Sigma-AldrichM8266
Chlorure de calcium (CaCl2)Sigma-Aldrich746495
HEPES selde potassiumSigma-AldrichH0527
D-(+)- GlucoseSigma-AldrichG8270  ;
Rouge phénoliqueSigma-AldrichP3532
Hydroxyde de sodium (NaOH)Sigma-AldrichS5881
PapainWorthingtonLS003127
L-Cystéine-HClSigma-AldrichC1276
Filtre à seringue (0,22 & micro ; m taille des pores)MilliporeSLGP033NS
Neurocult kit de prolifération, sourisStemcell Technologies5702Ce kit contient le milieu basal NeuroCult NSC et le supplément NeuroCult NSC nécessaires pour la culture NSC
0,2 % solution d’héparineStemcell Technologies7980
EGF  ;InvitrogenPMG8041
bFGF  ;InvitrogenPHG0261
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) (10x)Invitrogen14185-052
Sulfate de magnésium (MgSO4)Sigma-AldrichM7506
Bicarbonate de sodium (NaHCO3)Sigma-AldrichS5761
E-64Sigma-AldrichE3132Faire 10 mM de stock en DMSO, stocker à -20 ° ; C
Plaques à 6 puitsFisher Scientific07-200-83
Passoire à cellules (40 & micro ; m taille des pores)Corning352340
Solution de dissociation des cellules souchesStemcell Technologies5707Alternativement, utilisez des solutions enzymatiques douces telles que l’accutase
méthylcellulose 15 cPSigma-AldrichM7027
Dulbecco’s Modified Eagle’s Media 2xMilliporeSLM-202-BPour faire une solution de méthylcellulose à 5 %
1,7 ml Snap Cap Tube de microcentrifugationCorning3620
Seringue Hamilton, 250 & micro ; l LT sans aiguilleFisher Scientific14-815-92
PB600-1 Distributeur d’antigèneHamilton  ; 83700
Aiguilles jetables de 18 gFisher ScientificNC9015638
27 ga 1/2" Aiguille à pointe luerFisher Scientific14-826-48
2,2,2-tribromoéthanol (Avertin)Sigma-AldrichT48402
BétadineFisher ScientificNC9386574
Puralube Pommade ophtalmiqueFisher Scientific Fisher Scientific
Modèle 900 Cadre stéréotaxiqueKopf Instruments
VETBONDFisher ScientificNC9259532  ;Adhésif tissulaire  ;
Lidocaïne  ;ShopMedVetRXLIDO-EPI
CellTiter 96 AQueous One Solution Cell Prolifération Assay (MTS)PromegaG3580
Anti-Sox2MilliporeAB5603
Polyclonal Rabbit Anti-glial Fibrillary Acidic Protein (GFAP)DakoZ0334  ;
IVIS KineticPerkinElmerPour l’imagerie in vivo
D-Luciferin - K+ Salt Substrat bioluminescentPerkinElmer122796Pour in vivo Imagerie par bioluminescence
EdU Imaging KitInvitrogenC10340
MSCV Luciferase PGK-hygroAddgene18782
NC9689910

Références

  1. Dolecek, T. A., Propp, J. M., Stroup, N. E., Kruchko, C. CBTRUS statistical report: primary brain and central nervous system tumors diagnosed in the United States in 2005-2009. Neuro Oncol. 14, suppl 5 1-49 (2012).
  2. Stupp, R., et al.

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Réimpressions et autorisations

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