Summary

Fluorescens Imaging med One-nanometer Noggrannhet (FIONA)

Published: September 26, 2014
doi:

Summary

Enstaka fluoroforer kan lokaliseras med nanometerprecision med hjälp FIONA. Här en sammanfattning av den FIONA teknik rapporteras, och hur man utför FIONA experiment beskrivs.

Abstract

Fluorescens avbildning med en nanometer precision (FIONA) är en enkel men användbar teknik för att lokalisera enskilda fluoroforer med nanometerprecision i xy-planet. Här en sammanfattning av den FIONA teknik redovisas och exempel på forskning som har utförts med användning av FIONA beskrivs kortfattat. Först, hur man ställer in den nödvändiga utrustningen för FIONA experiment, det vill säga en total inre reflektion fluorescensmikroskopi (TIRFM), med information om att rikta optiken, beskrivs. Sen hur man genomför ett enkelt FIONA experiment på lokalisera immobiliserade Cy3-DNA enstaka molekyler med hjälp av lämpliga protokoll, följt av användning av FIONA att mäta 36 nm steget storleken på en enda stympad myosin Va motor märkt med en kvantprick, illustreras. Slutligen är senaste försök att utvidga tillämpningen av FIONA till tjocka prover rapporterades. Det visar sig att, med hjälp av en vattenimmersionsobjektiv och kvantprickar indränkt djupt i sol-geler och kaninögonhornhinnor (>200 | im), lokalisering precision 2-3 nm kan uppnås.

Introduction

Omkring 1882, Ernst Abbe fann att utgången av en synlig ljusmikroskop är ~ λ / 2NA, eller ~ 200 nm (där λ är våglängden och NA är den numeriska aperturen) 1,2. Därför något föremål som är mindre än detta mått skulle framstå som ett diffraktionsbegränsad plats i ett optiskt mikroskop. Emellertid är det möjligt att bestämma den centrala platsen, dvs placeringen av objektet, med en mycket högre precision 3. Fluorescens avbildning med en nanometer precision (FIONA) är en enkel men användbar teknik för att lokalisera enskilda fluoroforer med nanometerprecision i xy-planet 4. Precisionen av lokalisering, σ μ (dvs standardavvikelsen för medelvärdet), beror på det totala antalet insamlade fotoner, Ekvation 1 , Där N är fotonräkning, s är standardavvikelsen för den fluorescerande fläck, är enpixelstorleken av avbildningsdetektorn, och b är standardavvikelsen för bakgrunden 3,4. För en fluorofor avger ~ 10000 fotoner, kan FIONA uppnå ~ 1 nm precision 4.

FIONA kan användas för att exakt bestämma läget för en stationär sändare, eller en rörlig en (förutsatt bilder kan tas tillräckligt snabbt). FIONA kan appliceras sekventiellt på ramarna i filmen och på så sätt spåra rörelse enda molekyl 4 8. Foto-skyddande reagenser kan vara nödvändiga för att säkerställa att provet inte photodegrade. Vidare kan det fluorescerande objektet i sig vara av vilken storlek, mindre eller större än den diffraktion begrän- t.ex. kan det bestå av en organell (~ 1 mikrometer) med många fluorescerande proteiner utspridda på dess membran. Använda FIONA kan ändå ge en mycket exakt (nanometer) genomsnittet av dess genomsnittliga center-of-massa. Den stora förbättringen i lokaliseringsprecision från FIONA tillåter lösa nanometer skala rörelser över tid. Detta har drivit mikroskopi i den molekylära längdskala 4 8.

Sedan uppfinning, har varianter av FIONA utvecklats. Exempelvis ljusfält avbildning med en nanometer precision (bFIONA) 9, en liten variant av FIONA, bilder och lokaliserar täta föremål såsom melanosomer vivo (mörka föremål som innehåller pigmentet melanin) i med genomlysning. Dessutom har FIONA använts för att lösa flera färgämnen. Exempelvis enda molekyl högupplösande avbildning med fotoblekning (räka) 10,11 eller enda molekyl högupplösande colocalization (SHREC) 12 har utvecklats för att lösa två färgämnen inom omkring 10 nm. (Observera att detta är upplösningen, det vill säga hur exakt man kan säga samma färger från varandra.) På senare tid har FIONA analysen bidragit till lokaliseringsprocessen av vissa superupplösning mikroskopi såsom stokastisk optisk reconstruction mikroskopi (STORM) 13-15 och fotoaktiverade lokalisering mikroskopi (PALM) 16, där tillfälliga mörka fluoroforer är glada, och sedan fluorescensen är lokaliserad. Genom att upprepade gånger spännande en ganska låg täthet av färgämnen (mindre än en per diffraktionsbegränsad fläck) och därefter uppsamling av fluorescens, analysera var och en av dem genom FIONA kan en bygga upp en högupplöst karta. Upplösningen är sedan bara begränsad av antalet fotoner varje färgämne ger ut, samt saker som att hålla prov stationära (inklusive t.ex. mikroskop scenen) vid förvärvet.

I detta papper, en sammanfattning av den FIONA Teknik och kortfattat beskriva exempel på forskning som har utförts med hjälp av FIONA rapporteras. Först, hur man ställer in den nödvändiga utrustningen för FIONA experiment, det vill säga en total inre reflektion fluorescensmikroskopi (TIRFM), med information om att rikta optiken, beskrivs. Sen hur mangenomföra en enkel FIONA experiment på lokalisera immobiliserade Cy3-DNA enstaka molekyler med hjälp av lämpliga protokoll, som är avbildad. Efter det, för att användningen av FIONA mäter 36 nm steget storleken på en enda stympad myosin Va motor märkt med en kvantprick presenteras. Myosin Va är en viktig processiv motorprotein som bär cellulära last samtidigt translokera längs aktinfilament. Här en myosin Va konstruera stympad används för att avlägsna domäner irrelevanta steget storlek och med en FLAG tagg läggs till i C-terminalen för att möjliggöra enkel märkning med kvantprickar funktion med Anti-FLAG-antikroppar. Detta experiment sker under lågt ATP att bromsa myosin och tillåta användandet av långa tillräckligt exponeringstider för att få en bra fotonräkning i varje ram. Alla tillräckligt ljusa fluorescerande märkning kan vara substituerade i följande protokoll. Slutligen är senaste insats för att utvidga tillämpningen av FIONA till tjocka prover rapporterades. Som ett proof-of-principle, var kvantprickar blöti sol-geler och kaninögonhornhinnor och sedan avbildas och lokaliseras med hjälp av FIONA. För avbildning, en 60X nedsänkning i vatten mål med NA = 1,2 användes eftersom detta mål har en längre arbetsavstånd än tidigare använda 100X oljeimmersionsobjektiv. För att kompensera förlusten i förstoring i målet, var en extra förstoringslins (3,3X eller 4,0X) insatt i vägen utsläpp. Dessutom epi-fluorescens (ej TIR) mikroskopi behöver användas för att få tillgång djupa regioner i de tjocka prover. Det visas att kvantprickar indränkt djupt i sol-geler och kaninögonhornhinnor (Z> 200 nm) kan lokaliseras med 2-3 nm precision.

Protocol

Etik Uttalande: Hornhinnan vävnad från kaniner samlades i enlighet med University of Illinois Institutional Animal Care och användning riktlinjer. 1. TIRFM Setup OBS: Använd laserskyddsglasögon hela tiden. Se till att alla nödvändiga optiska komponenter som anges i den förteckning över material finns tillgängliga och redo för anpassning. Vid behov använder substitut med likvärdiga funktioner från andra företag. Se till att speglar och li…

Representative Results

Ett typiskt mål-typ TIRFM inställning visas i fig 3. Först yta-immobiliserad Cy3-DNA-provet avbildas. En typisk bild visas i figur 4a. Bilden togs med exponeringstid 0,5 sek, med EM vinst = 50 och CCD känslighet = 12.13 för kameran. Poängen-spread-funktion (PSF) av ett enda Cy3-DNA-molekyl visas i figur 4b (från platsen som anges av pilen i figur 4a), där färgen baren visar omfattningen av pixelintensiteter. Den faktiska fotonräkningar kunde b…

Discussion

FIONA är en teknik för att lokalisera positionen för en fluorescerande sändare (organisk fluorofor eller kvant prick) med nanometerprecision och tidsmässig upplösning ner till 1 ms 4 8. När tillräckligt många fotoner samlas, gör denna teknik för att bestämma positionen för en fluorescerande emitter mycket mer exakt än diffraktionsgränsen (~ 200 nm) och därmed denna teknik öppnar ett sätt att observera vad som inte setts med konventionell / traditionell optisk mikroskopi 4 – 8. Sed…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH Grants 068.625, NSF Grants 1.063.188 och Center i fysik levande celler 0822613. särskilt tack går till Dr Marina Marjanovic i Beckman Institute for Advanced vetenskap och teknik för gåvan av kaninögon.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Double-sided tape 3M ~ 75 um thick
EMCCD camera Andor Technology DU-897E-CS0-#BV
Ultrasonic cleaner Branson 2510
Fluorescence filter set Chroma 49016
Actin polymerization buffer  Cytoskeleton  BSA02
Biotin G-actin Cytoskeleton  AB07
G-actin  Cytoskeleton  AKL95
General actin buffer  Cytoskeleton  BSA01
Laser shutter (with driver) Electro-Optical Products Corp.  SH-10-MP
IDL Exelis Visual Information Solutions
Neutravidin  Fisher Scientific PI-31000
Coverslip Fisherbrand  22X30-1.5 0.16-0.19 mm thick
Microscope slide Gold Seal Microslides  30103X1 0.93-1.05 mm thick
Plasma cleaner Harrick Plasma PDC-001
Glass bottom dish  In Vitro Scientific D35-20-1.5-N
Cy3-DNA oligos Integrated DNA Technologies 5'-Cy3/GCCTCGCTGCCGTCGCCA-3'Bio
Fluorescent beads  Invitrogen T-7280
Qdot 605-streptavidin  Invitrogen Q10101MP
Qdot605  Invitrogen Q21301MP
Qdot705 Invitrogen Q22021MP 
Qdot705 Antibody Conjugation Kit Invitrogen Q22061MP
Matlab MathWorks
Optical table Newport Corp RS4000 Series
60X Objective Nikon Plan Apo VC 60x WI
100X Objective Olympus PlanApo 100X/1.45 Oil ∞/0.17
60X Objective Olympus UPlanApo 60X/1.20W
Inverted microscope Olympus IX71/IX70/IX81
Origin OriginLab
Anti-FLAG antibody Sigma Aldrich F7425-.2MG
ATP Sigma Aldrich A7699
BME  Sigma Aldrich 63689-25ML-F
BSA Sigma Aldrich A7906
BSA-biotin Sigma Aldrich A8549-10MG
CK Sigma Aldrich C3755 Creatine Phosphokinase from rabbit muscle
CP Sigma Aldrich P1937 Phosphocreatine di(tris) salt
DTT Sigma Aldrich 43815 DL-Dithiothreitol
EGTA Sigma Aldrich E3889 Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid
HCl  Sigma Aldrich 93363-500G
HEPES  Sigma Aldrich H0887
KCl Sigma Aldrich P9333
MgCl2 Sigma Aldrich M1028
NaCl Sigma Aldrich S7653
PCA Sigma Aldrich 03930590 Protocatechuic acid 
PCD Sigma Aldrich P8279 Protocatechuate-3,4-dioxygenase 
TMOS Sigma Aldrich 341436-25G Tetramethyl orthosilicate
Tris-HCl  Sigma Aldrich 93363
Trolox Sigma Aldrich 238813 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchromane-2-carboxylic acid
1” diameter broadband dielectric mirrors with mounts Thorlabs  BB1-E02, KM100 Quantity: 2
½” diameter posts Thorlabs  TR4 Quantity ≥ 6
10x beam expander Thorlabs  BE10M-A
2” diameter broadband dielectric mirrors with mounts Thorlabs  BB2-E02, KM200 Quantity: 2
2” diameter f = 300 mm lens with mount Thorlabs  LA1256-A, LMR2 TIR lens
Fluorescent alignment target  Thorlabs  VRC2SM1
Laser safety goggles Thorlabs  LG3
ND filter(s) Thorlabs  FW1AND
Optical beam profiler Thorlabs  BP209-VIS
Post-mounted iris diaphragm Thorlabs  ID25 Quantity: 2
Shearing interferometer Thorlabs  SI100
XYZ translation stage, ½” travel  Thorlabs  T12XYZ
Laser World Star Technologies  TECGL-30 532 nm, 30 mW

References

  1. Abbe, E. The Relation of Aperture and Power in the Microscope. Journal of the Royal Microscopical Society. 2 (3), 300-309 (1882).
  2. Abbe, E. The Relation of Aperture and Power in the Microscope (continued). Journal of the Royal Microscopical Society. 2 (4), 460-473 (1882).
  3. Thompson, R. Precise Nanometer Localization Analysis for Individual Fluorescent Probes. Biophysical Journal. 82 (5), 2775-2783 (2002).
  4. Yildiz, A., et al. Myosin V Walks Hand-Over-Hand: Single Fluorophore Imaging with 1.5-nm Localization. Science. 300 (5628), 2061-2065 (2003).
  5. Yildiz, A., Tomishige, M., Vale, R. D., Selvin, P. R. Kinesin Walks Hand-Over-Hand. Science. 303 (5658), 676-678 (2004).
  6. Yildiz, A., et al. Myosin VI Steps via a Hand-over-Hand Mechanism with Its Lever Arm Undergoing Fluctuations when Attached to Actin. Journal of Biological Chemistry. 279 (36), 37223-37226 (2004).
  7. Yildiz, A., Selvin, P. R. Fluorescence Imaging with One Nanometer Accuracy: Application to Molecular Motors. Accounts of Chemical Research. 38 (7), 574-582 (2005).
  8. Toprak, E., Yildiz, A., Hoffman, M. T., Rosenfeld, S. S., Selvin, P. R. Why kinesin is so processive. Proceedings of the National Academy of Sciences. 106 (31), (2009).
  9. Kural, C., et al. Tracking melanosomes inside a cell to study molecular motors and their interaction. Proceedings of the National Academy of Sciences. 104 (13), 5378-5382 (2007).
  10. Gordon, M. P., Ha, T., Selvin, P. R. Single-molecule high-resolution imaging with photobleaching. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (17), 6462-6465 (2004).
  11. Qu, X., Wu, D., Mets, L., Scherer, N. F. Nanometer-localized multiple single-molecule fluorescence microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (31), 11298-11303 (2004).
  12. Churchman, L. S., Ökten, Z., Rock, R. S., Dawson, J. F., Spudich, J. A. Single molecule high-resolution colocalization of Cy3 and Cy5 attached to macromolecules measures intramolecular distances through time. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (5), 1419-1423 (2005).
  13. Huang, B., Wang, W., Bates, M., Zhuang, X. Three-Dimensional Super-Resolution Imaging by Stochastic Optical Reconstruction Microscopy. Science. 319 (5864), 810-813 (2008).
  14. Rust, M. J., Bates, M., Zhuang, X. Sub-diffraction-limit imaging by stochastic optical reconstruction microscopy (STORM). Nat Meth. 3 (10), 793-796 (2006).
  15. Bates, M., Huang, B., Dempsey, G. T., Zhuang, X. Multicolor Super-Resolution Imaging with Photo-Switchable Fluorescent Probes. Science. 317 (5845), 1749-1753 (2007).
  16. Betzig, E., et al. Imaging Intracellular Fluorescent Proteins at Nanometer Resolution. Science. 313 (5793), 1642-1645 (2006).
  17. Abramoff, M. D., Magalhães, P. J., Ram, S. J. Image processing with ImageJ. Biophotonics international. 11 (7), 36-42 (2004).
  18. Enderlein, J., Toprak, E., Selvin, P. R. Polarization effect on position accuracy of fluorophore localization. Optics Express. 14 (18), 8111-8120 (2006).
  19. Cheezum, M. K., Walker, W. F., Guilford, W. H. Quantitative comparison of algorithms for tracking single fluorescent particles. Biophysical Journal. 81 (4), 2378-2388 (2001).
  20. Rasnik, I., McKinney, S. A., Ha, T. Nonblinking and long-lasting single-molecule fluorescence imaging. Nature Methods. 3 (11), 891-893 (2006).
  21. Zhuang, X., et al. A Single-Molecule Study of RNA Catalysis and Folding. Science. 288 (5473), 2048-2051 (2000).
  22. Aitken, C. E., Marshall, R. A., Puglisi, J. D. An Oxygen Scavenging System for Improvement of Dye Stability in Single-Molecule Fluorescence Experiments. Biophysical Journal. 94 (5), 1826-1835 (2008).

Play Video

Citer Cet Article
Wang, Y., Cai, E., Sheung, J., Lee, S. H., Teng, K. W., Selvin, P. R. Fluorescence Imaging with One-nanometer Accuracy (FIONA). J. Vis. Exp. (91), e51774, doi:10.3791/51774 (2014).

View Video