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Article de méthode

Cultures organotypique de tranche d'étudier Oligodendrocyte Dynamics et myélinisation

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DOI :

10.3791/51835

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25 août 2014

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Dans cet article

Résumé

Une technique d’étude des cellules NG2 et des oligodendrocytes à l’aide d’un système de culture en tranches du cerveau antérieur et du cervelet est décrite. Cette méthode permet d’examiner la dynamique de prolifération et de différenciation des cellules au sein de la lignée des oligodendrocytes où l’environnement extracellulaire peut être facilement manipulé tout en maintenant la cytoarchitecture tissulaire.

Résumé

Les cellules exprimant NG2 (polydendrocytes, les cellules précurseurs d'oligodendrocytes) sont la quatrième grande population de cellules gliales dans le système nerveux central. Au cours du développement embryonnaire et postnatal elles prolifèrent activement et génèrent oligodendrocytes myélinisantes. Ces cellules ont souvent été étudiés dans des cultures primaires dissociées, co-cultures de neurones, et dans le tissu fixe. Utilisation de lignées de souris transgéniques nouvellement disponibles tranche systèmes de culture peuvent être utilisés pour étudier la prolifération et la différenciation des cellules de la lignée des oligodendrocytes dans les deux régions de la matière grise et blanche du cerveau et le cervelet. Cultures tranches sont préparées à partir de souris postnatales et sont maintenues en culture pendant 1 mois. Ces rondelles peuvent être imagées à plusieurs reprises au cours de la période de culture cellulaire pour étudier le comportement et les interactions. Cette méthode permet la visualisation de la division cellulaire NG2 et les étapes menant à la différenciation des oligodendrocytes, tout en permettant une analyse détaillée de région dépendent cellules oligodendrocytes et NG2 hétérogénéité fonctionnelle. Ceci est une technique puissante qui peut être utilisé pour étudier les signaux intrinsèques et extrinsèques qui influent sur ​​ces cellules au cours du temps dans un environnement cellulaire qui ressemble étroitement à celle trouvée in vivo.

Introduction

Cultures tranche Organoytpic du système nerveux central se sont avérées extrêmement utiles pour l'étude de la biologie des neurones et des cellules gliales dans un système semiintact: 1 - 4. Ces cultures sont relativement simples à adopter et à conserver de nombreux avantages des cultures de cellules dissociées primaires telles que la manipulation de l'environnement extracellulaire et un accès facile pour l'imagerie des cellules vivantes à long terme répétées et des enregistrements électrophysiologiques 5 - 9. En outre, des cultures de tranches de tissu cytoarchitecture maintenir en 3 dimensions, la connectivité neuronale régionale, ....

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Protocole

NOTE: Toutes les procédures d'animaux suivent les directives et ont été approuvés par le Comité institutionnel de protection des animaux et l'utilisation (IACUC) à l'Université du Connecticut.

NOTE: Pour ces expériences constitutifs NG2cre 18 (JAX # 008533) et inductibles NG2creER 16 (JAX # 008538) de souris transgéniques a traversé à Z / EG 19 (JAX # 003920) ou gtRosa26: YFP reporter 20 (JAX # 006148) lignes respectivement ont été utilisés à l'image des cellules NG2 et de leur progéniture. Pour l'image oligodendrocytes matures, PLPDsRed souris transgéniques 21 ont été utilisés. Pour la survie compatibles,....

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Résultats

Des exemples de données représentatives sont donnés ci-dessous qui ont été obtenus à partir de cultures de tranche de la fois le cerveau et le cervelet de P8 NG2cre: ZEG, NG2creER: YFP et PLPDsRed lignées de souris transgéniques. Cellules NG2 peuvent être visualisés sur plusieurs jours dans du cerveau antérieur et le cervelet tranches (figure 1B-D, la vidéo 1) et le phénotype de ces cellules peut être déterminé qu'après la fixation et immunologique avec des anticorps NG2 et CC1 (figure 1E).

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Discussion

La myélinisation dans le système nerveux central est essentiel pour une communication efficace neuronale et la survie des axones 22. Cellules NG2 génèrent en permanence des oligodendrocytes myélinisantes à l'âge adulte, tout en maintenant une population résidente dans la plupart des régions du cerveau 16,23 - 25. Certains mécanismes génétiques et moléculaires qui régulent la différenciation de ces cellules ont été décrits, mais beaucoup reste à découvrir. Cultures organotypique sont un outil co.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents

Remerciements

Ce travail a été financé par des subventions de la National Multiple Sclerosis Society (RG4179 à A.N.), des National Institutes of Health (NIH R01NS073425 et R01NS074870 à A.N.) et de la National Science Foundation (A.N.). Nous remercions le Dr Frank Kirchhoff (Université de la Sarre, Homburg, Allemagne) pour la fourniture de souris transgéniques PLPDsRed. Nous remercions Youfen Sun pour son aide dans le maintien de la colonie de souris transgéniques.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Milieu de culture en tranches
Minimum EssentielInvitrogen1109050 %
Hank' s Solution saline équilibréeInvitrogen1417525 %
HEPESSigma-AldrichH-403425mM
L-GlutamineInvitrogen250301mM
InsulineSigma-AldrichI66341mg/L
Acide ascorbiqueSigma-AldrichA-02780.4mM
Sérum de chevalHycloneSH30074.0325 %
Titrer à pH 7,22 avec du NaOH, filtrer avec un filtre sur le dessus de la bouteille et stocker à 4 degrés Celsius
Dissection Buffer
NaClSigma-AldrichS3014124mM
KClSigma-AldrichP54053.004mM
KH2PO4Sigma-AldrichP56551.25mM
MgSO4 (anhydre)Sigma-AldrichM75064.004mM
CaCl2 2H2OSigma-AldrichC79022mM
NaHCO3Sigma-AldrichS576126mM
D-(+)-GlucoseSigma-AldrichG702110mM
AcideascorbiqueSigma-AldrichA-02782.0mM
AdénosineSigma-AldrichA40360.075mM
Filtre avec filtre sur le bouchon de la bouteille et stocker à 4 degrés Celsius, oxygéner avec 95 %O2 5 %CO2 avant utilisation
Autres réactifs et fournitures
4-hydroxy tamoxifène (4OHT)Sigma-AldrichH7904100nM
Paraformaldéhyde (PFA)EM Sciences192004 %
L-LysineSigma-AldrichL-60270.1M
Métaperiodate de sodiumSigma-AldrichS-18780.01M
Anticorps anti NG2 de lapinChemicon (Millipore)AB53201:500
Anticorps anti CC1 de sourisCalbiochem (Millipore)OP801:200
Anticorps anti-Ki67 de sourisVision BiosystemsNCL-Ki67-MM11:300
Anticorps anti-NeuN de sourisChemicon (Millipore)MAB3771:500
Anticorps secondaires spécifiques à l’espèceJackson Immunoresearch
Sérum de chèvre normal (NGS)5 %
Triton X-1000.10 %
Milieu de montage avec inserts de membrane de culture millicellulaire DAPIVector LabsH-1200
0,45&mu ; FisherScientificPICM03050
Filtres à bouchon de bouteilleFisher Scientific09-740-25F
Éthanol
95 % O2 5 % CO2 mélange
Phosphate Saline tamponnée (PBS)
Stérile à six puits
Spatules de dissection (hippocampe) ou de pesée Hachoir
à tissus manuel ou automatique
Lames de
Pipettes de transfert jetables
Boîtes de Pétri stériles de 35 mm et 60 mm Stéréomicroscope
Phase inversée Microscope
Pare-agrumes à flux laminaire Incubateur
culture tissulaire
fluorescence inversée
gazeuxrasoir de Microcope à

Références

  1. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 37 (2), (1991).
  2. Gogolla, N., Galimberti, I., DePaola, V., Caroni, P. Preparation of organotypic hippocampal slice cultures f....

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Réimpressions et autorisations

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