Summary

Lésion tissulaire ischémique dans le pli de la Chambre Souris Dorsale: Un lambeau de peau modèle pour étudier l'ischémie aiguë et persistante

Published: November 17, 2014
doi:

Summary

La fenêtre de la chambre du pli cutané dorsal murin présenté visualise une zone d'ischémie aiguë et persistante d'un lambeau musculo. Intravitales épi-fluorescence permet de microscopie pour l'évaluation directe et répétitive de la microvascularisation et la quantification de l'hémodynamique. Morphologique et résultats hémodynamiques peuvent en outre être en corrélation avec des analyses histologiques et moléculaires.

Abstract

Malgré expertise profonde et techniques chirurgicales de pointe, les complications induites par ischémie allant de rupture de la plaie à une nécrose des tissus se produisent encore, notamment en chirurgie reconstructive de rabat. Modèles de volets expérimentaux multiples ont été développés pour analyser les causes et les mécanismes sous-jacents et d'étudier les stratégies de traitement pour prévenir les complications ischémiques. Le facteur limitant de la plupart des modèles est la possibilité manque de visualiser directement et de façon répétitive l'architecture microvasculaire et hémodynamique. L'objectif du protocole est de présenter un modèle de souris bien établie affilier ces éléments qui manquent avant mentionnés. Plus difficile et al. Ont mis au point un modèle de lambeau musculo avec un motif de perfusion aléatoire qui subit une ischémie aiguë et persistante et résultats dans ~ 50% de nécrose après 10 jours si elle est conservée non traitée. A l'aide de la microscopie intravitale épi-fluorescence, ce modèle permet la visualisation de la chambre répétitive demorphologie et l'hémodynamique dans différentes régions d'intérêt au fil du temps. Traitements associés tels que l'apoptose, l'inflammation, l'angiogenèse et microvasculaire fuite peuvent être étudiés et corrélés à des dosages de protéines immunohistochimiques et moléculaires. À ce jour, le modèle a prouvé la faisabilité et la reproductibilité dans plusieurs études expérimentales publiées étudier l'effet de pré-, péri- et post-conditionnement de tissu ischémie contestée.

Introduction

Couverture de exposé tendon, de l'os et l'implant en chirurgie reconstructive matériau repose sur l'utilisation de volets. Un clapet est un bloc de tissu qui est transférée sur son pédicule vasculaire qui garantit afflux artériel et le débit sortant veineux. Malgré une vaste expertise et la disponibilité d'une variété de volets à être transférés, les complications induites par ischémie allant de rupture de la plaie à la perte totale du tissu sont encore rencontrés. Tandis que le traitement conservateur et la guérison par seconde intention sont à craindre après une nécrose des tissus mineure, significative nécrose du lambeau nécessite généralement une reprise chirurgicale, y compris le débridement, le conditionnement des plaies et de la reconstruction secondaire. Cela augmente la morbidité, prolonge l'hospitalisation, et par conséquent conduit à une augmentation des coûts de soins de santé.

Volets avec un modèle indéfini de la vascularisation ou zones perfusés de façon aléatoire dans la zone distale la plus éloignée de l'entrée artérielle sont particulièrement sujettes à des lésions ischémiques. Acco rdingly, de nombreuses études expérimentales et cliniques ont évalué le développement d'une nécrose à la fois, les volets de modèle axial (d'approvisionnement en sang défini) et les volets de façon aléatoire (d'approvisionnement en sang non définie) 1-3. Les principaux résultats sont généralement basées sur l'évaluation macroscopique de la taille de la zone nécrotique. Afin d'évaluer les causes et les mécanismes de la nécrose des tissus plus en détail, plusieurs études ont porté sur l'analyse de la microcirculation. Différentes techniques ont été utilisées pour mesurer la perfusion tissulaire, y compris l'analyse de la tension d'oxygène des tissus en utilisant des électrodes polarographiques 4-5, ainsi que la mesure du flux sanguin en utilisant débitmétrie laser Doppler 6-7, colorant diffusion 8, 9 à 10 et des microsphères. Ces techniques, cependant, ne permettent de mesurer des paramètres indirects de la perfusion tissulaire et ne permettent pas une analyse morphologique des procédés microhemodynamic intérieur d'une zone d'intérêt particulier d'un volet.

t "> Sandison est connu pour être le premier qui a utilisé une chambre transparente pour prolonger les études in vivo, qu'il accomplit chez les lapins 11 En 1943 -. environ 20 ans plus tard – Algire fut le premier à adapter une telle chambre transparent pour être applicable chez la souris afin d'étudier le comportement des micro-implants de cellules tumorales 12. En raison du fait que les souris sont les animaux dits de peau lâche et après quelques améliorations techniques au cours des années suivantes, Lehr et collègues ont pu adapter cette une chambre de pli cutané dorsal développement d'une chambre de titane plus petit et plus léger. Cette chambre permet l'évaluation en utilisant la microscopie à fluorescence intravitale, une technique qui permet la visualisation directe et répétitive d'un certain nombre d'morphologiques et microcirculatoires caractéristiques et leur évolution dans le temps dans différentes conditions physiologiques et pathophysiologiques, tels que l'ischémie-reperfusion 13.

Dans l'enquête de perfusion de la peau, des muscles et des os volets dans des conditions normales et pathologiques deux tendances se sont produits: d'abord, les modèles «aiguë» des volets qui ne utilisent pas la chambre dorsale du pli cutané comme le pavillon de l'oreille pédiculé chez la souris 14, le lambeau de peau de l'île sur la base latéralement chez le hamster 15 et le volet composite pédiculé chez le rat 16. Deuxièmement, le modèle «chronique» de rabat où la combinaison d'un rabat avec une microcirculation répétitif dorsale plis cutanés chambre des permis des analyses sur plusieurs jours avec la microscopie à fluorescence intravitale. Il se compose d'un lambeau musculo perfusé de manière aléatoire, qui est intégré dans la chambre de pli 17 de la souris. Son rapport largeur-longueur a été choisie d'une situation d'ischémie aiguë et persistante des résultats toujours dans ~ 50% de nécrose des tissus de rabat 10 à 14 jours après rabat élévation. Cette mesure reproductible de nécrose tissulaire permet une évaluation plus poussée des deux, de protection (c.-à-développement de less nécrose) et des facteurs néfastes (par exemple, le développement de plus de nécrose) sur la physiopathologie rabat. Au cours des dernières années, plusieurs publications expérimentales démontrant l'effet de pré différent, péri- et post-conditionnement des procédures, y compris l'administration de substances de tissus de protection 18-24 et l'application locale de facteurs de stress physiologiques tels que la chaleur et des ondes de choc 25 26, ont vu le jour.

Les analyses quantitatives de nécrose, microvasculaire morphologie et paramètres microcirculatoires peuvent en outre être corrélés à des analyses immunohistochimiques et des dosages de protéines. Différentes protéines et des molécules dont le facteur de croissance endothéliale vasculaire (VEGF), oxyde nitrique synthases (NOS), le facteur nucléaire kappa B (NF-kB) et les protéines de choc thermique (HSP-32: l'hème-oxygénase 1 (HO-1) et HSP- 70) se sont avérés jouer un rôle dans la protection des tissus. Sur la base de ce modèle, la chambre de clapet, deux modifications ont été développés in order à analyser la néovascularisation et la microcirculation pendant une greffe de peau guérison 27 et développements angiogéniques dans un lambeau pédiculé avec motif axial perfusion 28. Nous présentons un modèle reproductible et fiable qui comprend un lambeau musculo-ischémie contesté dans la chambre du pli cutané de la souris. Ce modèle permet la visualisation et la quantification de la microcirculation et l'hémodynamique par microscopie intravitale épi-fluorescence.

Protocol

NOTE: Avant la mise en œuvre du modèle présenté, les lois de protection des animaux correspondant doivent être consultés et doit être autorisée par les autorités locales. Dans ce travail, toutes les expériences ont été réalisées en conformité avec les principes directeurs pour les animaux de recherche impliquant et la législation allemande sur la protection des animaux. Les expériences ont été approuvés par le comité de protection des animaux. 1. Préparation des animaux e…

Representative Results

Nécrose Le critère d'évaluation principal de ce modèle – élévation de nécrose du lambeau de tissu suivant (ie, l'induction de l'ischémie aiguë et persistante) – est à plusieurs reprises mesurée et illustré macroscopique comme le montre la figure 3, sur une période de 10 jours. Délimitation final du rabat nécrose survient généralement entre 5 et 7 jours après l'intervention chirurgicale et est caractérisé par une f…

Discussion

Afin de diminuer les complications ischémiques et ainsi améliorer le résultat clinique, une connaissance plus approfondie des processus physiopathologiques dans le tissu rabat perfusé critique est nécessaire. Le développement de nouveaux modèles animaux qui miment l'ischémie aiguë et persistante est donc obligatoire. En conséquence, nous avons pu développer un modèle facilement reproductible et fiable permettant l'évaluation en temps réel morphologique, dynamique et fonctionnel répétitif de diver…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Katharina Haberland pour l'édition d'image. Financement: L'auteur principal a reçu une subvention de la KKF Technische Universität München à mettre en place un nouveau laboratoire de recherche.

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
C57Bl/6 mice 6-8w 20-22g Charles River
depilation cream Veet any depilation cream
titanium chamber Irola 160001 Halteblech M
slotted cheese head screw Screws and More 842210 DIN84 M2x10
hexagon full nut Screws and More 93422 DIN934 M2
snap ring Schaefer-Peters 472212 DIN472 J12x1,0
cover glass Volab custom-made cover glass 11,8mm in diameter
fixing foam tesamoll 05559-100 tesamoll Standard I-Profile
ketamine hydrochloride Parke Davis Ketavet®
dihydroxylidinothiazine hydrochloride Bayer Rompun®
Buprenorphin Essex Pharma Temgesic®
Saline 0,9%
desinfection alcohol
Vicryl 5-0 Ethicon V 490 H
Ethilon 5-0 Ethicon EH 7823 H
1ml syringes
surgical skin marker with flexible ruler Purple surgical PS3151 any surgical skin marker and flexible ruler
pointed scissors
Micro-Scissors
normal scissors
2 clamps
fine anatomic forceps
micro-forceps
hex nuter driver wiha 1018
screwdriver wiha 685
snap ring plier Knipex 4411J1 12-25mm
wire cutter Knipex 70 02 160 Wire cutter is used to cut screws short; 160mm
trans-illumination light IKEA 501.632.02 LED light Jansjö; any light 
magnification glasses
intravital microscope Zeiss 490035-0001-000 Scope.A1.Axiotech
LED system Zeiss 423052-9501-000 Colibri.2
LED module 365nm Zeiss 423052-9011-000
LED module 470nm Zeiss 423052-9052-000
LED module 540-580nm Zeiss 423052-9121-000
Filter set 62 62 HE BFP + GFP + HcRed Zeiss 489062-9901-000 range 1: 350-390nm excitation wavelength split 395 / 402-448nm; range 2: 460-488nm, split 495nm / 500-557nm; range 3: 567-602nm, split 610nm / 615-infinite
Filter set 20 Rhodamine Zeiss 485020-0000-000 540-552nm, split 560, emission 575-640nm
2,5x objective NA=0,06 Zeiss 421020-9900-000 A-Plan 2,5x/0.06
5x objective NA=0,16 Zeiss 420330-9901-000 EC Plan-Neofluar 5x/0.16 M27
10x objetive NA=0,30 Zeiss 420340-9901-000 EC Plan-Neofluar 10x/0.30 M27
20x objective NA=0.50 Zeiss 420350-9900-000 EC Plan-Neofluar 20x/0.50 M27
50x objective NA=0,55 Zeiss 422472-9960-000 LD Epiplan-Neofluar 50x/0.55 DIC 27
ZEN imaging software Zeiss ZenPro 2012
CapImage Dr. Zeintl
Fluorescein isothiocyanate-dextran Sigma-Aldrich 45946
bisBenzimide H 33342 trihydrochloride Sigma-Aldrich B2261 harmful if swallowed; causes severe skin burns and eye damage, may cause repiratory irritat
Rhodamine 6G chloride Invitrogen R634 harmful if swallowed; may cause genetic defects; may cause cancer; may damage fertility or the unborn child
Pentobarbital Merial Narcoren®

References

  1. McFarlane, R., De Young, G., Henry, R. The design of a pedicle flap in the rat to study necrosis and its prevention. Plast Reconstr Surg. 35, 177-182 (1965).
  2. Finseth, F., Cutting, C. An experimental neurovascular island skin flap for the study of the delay phenomenon. Plast Reconstr Surg. 61, 412-420 (1978).
  3. Petry, J. J., Wortham, K. A. The anatomy of the epigastric flap in the experimental rat. Plast Reconstr Surg. 74, 410-413 (1984).
  4. Achauer, B. M., Black, K. S., Litke, D. K. Transcutaneous PO2 in flaps: a new method of survival prediction. Plast Reconstr Surg. 65, 45-45 (1980).
  5. Vollmar, B., Menger, M. D. Assessment of microvascular oxygen supply and tissue oxygenation in hepatic ischemia/reperfusion. Adv. Exp. Med. Biol. 428, 403-408 (1997).
  6. Menger, M. D., Barker, J. H., Messmer, K. Capillary blood perfusion during postischemic reperfusion in striated muscle. Plast Reconstr Surg. 89, 1104-1114 (1992).
  7. Uhl, E., Rösken, F., Curri, S. B., Menger, M. D., Messmer, K. Reduction of skin flap necrosis by transdermal application of buflomedil bound to liposomes. Plast Reconstr Surg. 102, 1598-1604 (1998).
  8. Pang, C. Y., Neligan, P., Nakatsuka, T., Sasaki, G. H. Assessment of the fluorescein dye test for prediction of skin flap viability in pigs. J Surg Res. 41, 173-181 (1986).
  9. Hjortdal, V. E., Hansen, E. S., Henriksen, T. B., Kjolseth, D., Soballe, K., Djurhuus, J. C. The microcirculation of myocutaneous island flaps in pigs studied with radioactive blood volume tracers and microspheres of different sizes. Plast Reconstr Surg. 89, 116-122 (1992).
  10. Pang, C. Y., Neligan, P., Nakatsuka, T. Assessment of microsphere technique for measurement of capillary blood flow in random skin flaps in pigs. Plast Reconstr Surg. 74, 513-521 (1984).
  11. Sandison, J. C. A new method for the microscopic study of living growing tissues by the introduction of a transparent chamber in the rabbit’s ear. The Anatomical Record. 28, 281-287 (1924).
  12. Algire, G. H. An Adaptation of the Transparent-Chamber Technique to the Mouse. Journal of the National Cancer Institute. 4, 1-11 (1943).
  13. Lehr, H. A., Leunig, M., Menger, M. D., Nolte, D., Messmer, K. Dorsal skinfold chamber technique for intravital microscopy in nude mice. Am J Pathol. 4, 1055-1062 (1993).
  14. Barker, J. H., et al. An animal model to study microcirculatory changes associated with vascular delay. Br J Plast Surg. 52, 133-142 (1999).
  15. Erni, D., Sakai, H., Banic, A., Tschopp, H. M., Intaglietta, M. Quantitative assessment of microhemodynamics in ischemic skin flap tissue by intravital microscopy. Ann Plast Surg. 43, 405-414 (1999).
  16. Roesken, F., Schäfer, T., Spitzer, W. J., Vollmar, B., Menger, M. D. In vivo analysis of the microcirculation of osteomyocutaneous flaps using fluorescence microscopy. Br J Plast Surg. 52, 644-652 (1999).
  17. Harder, Y., Amon, M., Erni, D., Menger, M. D. Evolution of ischemic tissue injury in a random pattern flap: a new mouse model using intravital microscopy. J Surg Res. 121, 197-205 (2004).
  18. Harder, Y., Contaldo, C., Klenk, J., Banic, A., Jakob, S. M., Erni, D. Preconditioning with monophosphoryl lipid A improves survival of critically ischemic tissue. Anesth Analg. 100, 1786-1792 (2005).
  19. Rezaeian, F., et al. Erythropoieton protects critically perfused flap tissue. Ann Surg. 248, 919-929 (2008).
  20. Harder, Y., et al. Erythropoietin reduces necrosis in critically ischemic myocutaneous tissue by protecting nutritive perfusion in a dose-dependent manner. Surgery. 145, 10-1016 (2009).
  21. Rezaeian, F., et al. Erythropoietin-induced upregulation of endothelial nitric oxide synthase but not vascular endothelial growth factor prevents musculocutaneous tissue from ischemic damage. Lab Invest. 90, 40-51 (2010).
  22. Rezaeian, F., Ong, M. F., Harder, Y., Menger, M. D. N-acetylcysteine attenuates leukocytic inflammation and microvascular perfusion failure in critically ischemic random pattern flaps. Microvasc Res. 82, 28-34 (2011).
  23. Rezaeian, F., et al. Ghrelin protects musculocutaneous tissue from ischemic necrosis by improving microvascular perfusion. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 302, 603-610 (2012).
  24. Rezaeian, F., et al. Long-term preconditioning with Erythropoietin reduces ischemia-induced skin necrosis. Microcirculation. , (2013).
  25. Harder, Y., et al. Heat shock preconditioning reduces ischemic tissue necrosis by heat shock protein (HSP)-32-mediated improvement of the microcirculation rather than induction of ischemic tolerance. Ann Surg. 242, 869-878 (2005).
  26. Tobalem, M., et al. Local shockwave-induced capillary recruitment improves survival of musculocutaneous flaps. J Surg Res. 184, 1196-1204 (2013).
  27. Lindenblatt, N., Calcagni, M., Contaldo, C., Menger, M. D., Giovanoli, P., Vollmar, B. A new model for studying the revascularization of skin grafts in vivo: the role of angiogenesis. Plast Reconstr Surg. 122, 169-1680 (2008).
  28. Schweizer, R., et al. Morphology and hemodynamics during vascular regeneration in critically ischemic murine skin studied by intravital microscopy techniques. Eur Surg Res. 47, 222-230 (2011).
  29. Klyscz, T., Jünger, M., Jung, F., Zeintl, H. Cap image—a new kind of computer-assisted video image analysis system for dynamic capillary microscopy. Biomed. Tech. 42, 168-1675 (1997).
  30. Gross, J. F., Aroesty, J. Mathematical models of capillary flow: a critical review. Biorheology. 9, 225-264 (1972).
  31. Menger, M. D., Pelikan, S., Steiner, D. Microvascular ischemiareperfusion injury in striated muscle: significance of ‘reflow paradox. Am J Physiol. 263 (6 part 2), 1901-1906 (1992).
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Citer Cet Article
Harder, Y., Schmauss, D., Wettstein, R., Egaña, J. T., Weiss, F., Weinzierl, A., Schuldt, A., Machens, H., Menger, M. D., Rezaeian, F. Ischemic Tissue Injury in the Dorsal Skinfold Chamber of the Mouse: A Skin Flap Model to Investigate Acute Persistent Ischemia. J. Vis. Exp. (93), e51900, doi:10.3791/51900 (2014).

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