Summary

Real-time cytotoksicitetsassays i humant fuldblod

Published: November 07, 2014
doi:

Summary

Helblodet cytotoksicitetsassay (WCA) er en cytotoksicitetsanalyse udviklet ved at inkorporere high-throughput celle positionering teknologi med fluorescensmikroskopi og automatiseret billedbehandling. Her beskriver vi, hvordan lymfom celler behandlet med et anti-CD20-antistof kan analyseres i realtid i humant fuldblod give kvantitative cellulær cytotoksicitet analyse.

Abstract

En levende celle-baserede fuldblod cytotoksicitetsassay (WCA), der giver adgang til tidsmæssig information af den samlede celle cytotoksicitet er udviklet med high-throughput celle positionering teknologi. De målrettede tumor cellepopulationer første forprogrammeret til immobilisering i et array format, og mærket med grønne fluorescerende cytosoliske farvestoffer. Efter Cellearray formation, er antistoflægemidler tilsat i kombination med humant fuldblod. Propidiumiodid (PI) tilsættes derefter til at vurdere celledød. Cellearray analyseres med en automatisk imaging system. Mens cytosolisk farvestof etiketter de målrettede tumorcellepopulationer, PI etiketter de døde tumorcellepopulationer. Således kan andelen af ​​target cancercelledrab kvantificeres ved at beregne antallet af overlevende målrettede celler til antallet af døde målceller. Med denne metode, forskerne har adgang til tidsafhængig og dosisafhængig cellecytotoksicitet information. Bemærkelsesværdigt, ingen farlige radiokemikalier anvendes. Den WCA præsenteres her er blevet testet med lymfom, leukæmi, og cellelinjer fra solide tumorer. Derfor WCA giver forskerne til at vurdere drug effekt i et yderst relevant ex vivo tilstand.

Introduction

Nylige fremskridt inden for den farmaceutiske industri har ført til en øget interesse for at realisere de specifikke identifikationer af tumor celleantistoffer og personlige kræftbehandling; dog flere hindringer i processen. Kun 5% af stoffer, der har anticancer aktivitet i præklinisk udvikling er licenseret efter viser tilstrækkelig effekt i fase II-III-test 1,2. De prækliniske strategier (både in vitro og in vivo) er suboptimal så mange eksempler har vist, at antitumorlægemidler opfører sig anderledes i mennesker og i forsøgsdyr hovedsageligt på grund af deres forskellige blodkomponenter 3-5.

At afhjælpe behovet for en antitumor drug screening platform og til at tilvejebringe en check-punkt før bekostelig dyreforsøg og kliniske forsøg, foreslås et humant fuldblod cytotoksicitetsassay (WCA) til evaluering antitumorlægemiddel effekt i en mere relevant biologisk miljø. Denfuldblod cytotoksicitet assay kan anvendes til at vurdere virkningen af ​​de enkelte celler til antistoffer og andre lægemiddelkandidater i humant fuldblod.

WCA er udviklet ved at inkorporere high-throughput celle positionering teknologi med høj kapacitet og høj indhold imaging 6. Ved anvendelse af et automatiseret billedbehandlingssystem, kan antallet af både levende og døde celler bestemmes med en høj grad af præcision. På grund af det faktum, at målceller immobiliseres på samme fokale plan, WCA er i stand til at give kvantitative cytotoksicitet analyse i realtid uden fjernelse af røde blodlegemer. Desuden automatiske imaging system giver flere fordele, såsom at kun målceller, der har nået de angivne kriterier (f.eks., Fluorescens-mærkede celler og celle morfologi) er indhegnet og forarbejdes. Det giver også mulighed for produktion af 144 plader pr dag. Derfor er dette imaging kapacitet og overførselshastighed muliggør drift af high-cIndholdsproduktion og højt gennemløb eksperimenter samtidigt. Ved at kombinere WCA og automatiseret billedbehandlingssystem kan opnås high throughput kvantitativ cellecytotoksicitet analyse inden for et mere biologisk relevant miljø.

Protocol

1. Target Cell Fremstilling Opretholde målceller (f.eks. Raji-lymfomceller) i vækstmedier (RPMI 1640 dyrkningsmedium, med 10% varmeinaktiveret føtalt bovint serum (FBS), 4 nM L-glutamin og 500 IU / ml penicillin / streptomycin) ved 37 ° C i en 5% CO 2-inkubator. Centrifuger prøven for at pelletere målcellerne i et 15 ml rør. Centrifugering tid varierer med forskellige celletyper; centrifugeres i 3 minutter ved 468 xg i Raji celler. Første aspirere eve…

Representative Results

Anti-CD20-antistoffer og lymfom celler (Raji celler og MC / CAR) blev valgt som en model for at demonstrere den fuldblod cytotoksicitetsassay (WCA) 7,8. Raji-celler havde højt kopiantal af CD20 på celleoverfladen, mens MC / CAR-celler havde lavt kopiantal af CD20 på deres membran. Målrettede celler blev først farvet grønne med grønne fluorescens cytosoliske farvestoffer og ordnet på 96-brønds plade. 10.000 – 50.000 target lymfomceller blev immobiliseret i hver brønd. 180 pi frisk udtaget humant helb…

Discussion

WCA er et kritisk in vitro-anti-cancer screening værktøj med enkelt celle resolution 12-16, ideelt udnyttet efter de traditionelle målgrupper screeninger, såsom CDC og ADCC assays 9-11, og før prækliniske dyreforsøg. I øjeblikket er det primære target screening assays, såsom CDC eller ADCC assays alle udført i en forenklet medier eller et puffersystem. Men lægemiddelkandidater, der viser effekten på disse forenklede puffersystem er ikke altid effektive i mere komplekse fuldblo…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker National Cancer Institute IMAT program fra NIH for at finansiere dette arbejde [R33 CA174616-01A1].

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Name/Discription
Cell attachment 96 well plate kits  Adheren AP9601
Suspension Single cell array 8 well chamber slide Adheren SS0801
Adherent Single cell array 8 well chamber slide Adheren SS0802
Lymphoma cell line CD20+ ATCC CCL-86 Raji cells
Lymphoma cell line CD20- ATCC CRL-8083 MC/CAR
RPMI 1640 with L-glutamine Life Technologies 11875-119
Fetal Bovine Serum Thermo SH30070.01HI
Peni/Strep Life Technologies 15070063
Cytosolic dye Life Technologies C7025 Cell Tracker Green
Rituxan (Biosimilar)  Eureka Therapeutics
Human whole blood Allcells WB001
Propidium Iodide Sigma P4170-10MG
Automatic imaging system Molecular Devices Contact Vendor Cell Reporter
Cell counting program Molecular Devices Contact Vendor Cell Reporter

References

  1. Hutchinson, L., Kirk, R. High drug attrition rates–where are we going wrong. Nat Rev Clin Oncol. 8, 189-1890 (2011).
  2. Moreno, L., Pearson, A. D. Attrition rates be reduced in cancer drug discovery. Informa healthcare. 8, 363-368 (2013).
  3. Seok, J., et al. Inflammation and Host Response to Injury, Large Scale Collaborative Research Program. Genomic responses in mouse models poorly mimic human inflammatory diseases. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 3507-3512 (2013).
  4. Suntharalingam, G., et al. Cytokine storm in a phase 1 trial of the anti-CD28 monoclonal antibody TGN1412. N Engl J Med. 355, 1018-1028 (2006).
  5. Eastwood, D., et al. Monoclonal antibody TGN1412 trial failure explained by species differences in CD28 expression on CD4+ effector memory T-cells. Br J Pharmacol. 161, 512-526 (2010).
  6. Hsiao, S. C., Liu, H., Holstlaw, T. A., Liu, C., Francis, C. Y., Francis, M. B. Real time assays for quantifying cytotoxicity with single cell resolution. PLoS One. 8, 10-1371 (2013).
  7. Wang, S. Y., Weiner, G. Rituximab: a review of its use in non-Hodgkin’s lymphoma and chronic lymphocytic leukemia. Expert Opin Biol Ther. 8, (2008).
  8. Dalle, S., Thieblemont, C., Thomas, L., Dumontet, C. Monoclonal antibodies in clinical oncology. Anticancer Agents Med Chem. 8, 523-532 (2008).
  9. Brunner, K. T., Mauel, J., Cerottini, J. C., Chapuis, B. Quantitative assay of the lytic action of immune lymphoid cells on 51-Cr-labelled allogeneic target cells in vitro; inhibition by isoantibody and by drugs. Immunology. 14, 181-196 (1968).
  10. Korzeniewski, C., Callewaert, D. M. An enzyme-release assay for natural cytotoxicity. J Immunol Methods. 64, (1983).
  11. Gerlier, D., Thomasset, N. J. Use of MTT colorimetric assay to measure cell activation. Immunol Methods. 94, 57-63 (1986).
  12. Toriello, N. M., et al. Integrated microfluidic bioprocessor for single-cell gene expression analysis. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, (2008).
  13. Douglas, E. S., Hsiao, S. C., Onoe, H., Bertozzi, C. R., Francis, M. B., Mathies, R. A. DNA-barcode directed capture and electrochemical metabolic analysis of single mammalian cells on a microelectrode array. Lab on a Chip. 9, 2010-2015 (2008).
  14. Mayr, L. M., Bojanic, D. Novel trends in high-throughput screening. Current opinion in pharmacology. 9, 580 (2009).
  15. Zanella, F., Lorens, J. B., Link, W. High content screening: seeing is believing. Trends in Biotechnology. 28, 237-245 (2010).
  16. Coelho, J., P, L., Quinn, S., Murphy, R. F. Automated image analysis for high-content screening and analysis. J Biomol Screen. 15, 726-734 (2010).
  17. Sundberg, S. A. High-throughput and ultra-high-throughput screening: solution- and cell-based approaches. Current Opinion in Biotechnology. 11, 47 (2000).
  18. Simmons, L. A. Personalized medicine is more than genomic medicine: confusion over terminology impedes progress towards personalized healthcare. PERS MED. 9, 85 (2012).
check_url/fr/51941?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hsiao, C., Lo, Y., Liu, H., Hsiao, S. C. Real-time Cytotoxicity Assays in Human Whole Blood. J. Vis. Exp. (93), e51941, doi:10.3791/51941 (2014).

View Video