Summary

In vitro Syntes av modifierade mRNA för induktion av proteinuttryck i humana celler

Published: November 13, 2014
doi:

Summary

I denna video artikeln beskriver vi syntesen av modifierade mRNA in vitro för induktion av proteinuttryck i celler.

Abstract

Den exogena leverans av kodning syntetisk budbärar-RNA (mRNA) för induktion av proteinsyntes i önskade celler har en enorm potential inom regenerativ medicin, grundläggande cellbiologi, behandling av sjukdomar, och omprogrammering av celler. Här beskriver vi en steg för steg-protokoll för alstring av modifierade mRNA med nedsatt immunaktivering potential och ökad stabilitet, kvalitetskontroll av producerat mRNA, transfektion av celler med mRNA och verifiering av den inducerade proteinexpression med flödescytometri. Upp till 3 dagar efter en enda transfektion med eGFP mRNA, de transfekterade HEK293 celler producerar eGFP. I denna video artikeln, är syntesen av eGFP mRNA beskrivs som ett exempel. Däremot kan förfarandet tillämpas för tillverkning av andra önskade mRNA. Med användning av den syntetiska modifierade mRNA kan celler induceras att transient uttrycka de önskade proteinerna, som de normalt inte skulle uttrycka.

Introduction

I celler, transkriptionen av budbärar-RNA (mRNA) och följande translation av mRNA till önskade proteiner säkerställa en väl fungerande celler. Ärftliga eller förvärvade genetiska sjukdomar kan leda till otillräcklig och dysfunktionella syntes av proteiner och orsaka allvarliga sjukdomar. Således, en ny terapeutisk strategi för att inducera produktionen av saknade eller defekta proteinerna är den exogena leverans av syntetiskt modifierat mRNA i celler, som kodar för det önskade proteinet. Därigenom celler aktiveras för att syntetisera funktionella proteiner, vilket de normalt inte kan producera eller skulle naturligtvis inte behöver. Genom att använda denna metod, kan genetiska sjukdomar korrigeras genom införande av mRNA som kodar för defekta eller saknas protein 1. MRNA Terapi kan också användas för vaccination för att syntetisera proteinantigener, som uttrycks av tumörceller eller patogener. Därigenom kan värdens immunsystem aktiveras för att effektivt eliminera tumörceller eller förhindra infesfunktione r 2,3. Dessutom, under de senaste åren, mRNA med framgång för att generera inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs). För detta ändamål har fibroblaster transfekterade med mRNA för att inducera uttryck av omprogrammering faktorer 4-6 och omvandla dem i iPSCs med en enorm potential inom regenerativ medicin.

Tidigare användning av konventionella mRNA förknippad med låg stabilitet och stark immunogenicitet. Således var kliniska tillämpningar av konventionella mRNA begränsad. Men byte av cytidin och uridin med 5-metylcytidin och pseudouridine inom mRNA-molekylen från Kariko och kollegor gjort mRNA-molekyler stabila i biologiska vätskor och dramatiskt minskad immunaktivering 7-10, som nu gör den kliniska tillämpningen av modifierade mRNA.

Använda syntetiskt framställda modifierade mRNA, kan önskade gentranskript tillfälligt levereras in vivo 11eller in vitro för att inducera proteinexpression. Den introducerade mRNA översätts under fysiologiska förhållanden av det cellulära översättningen maskiner. På grund av bristande integration i värdcellens genom jämförelse med virala genterapivektorer, är risken för onkogenesen förhindras 12,13. Således kommer terapi med modifierad syntetisk mRNA få bättre klinisk acceptans i framtiden.

Här beskriver vi ett detaljerat protokoll för framställning av modifierat mRNA (Figur 1), transfektion av celler med mRNA och utvärdering av proteinuttryck i transfekterade celler.

Protocol

1. Ökning av plasmider innehållande Obligatorisk Coding DNA-sekvenser (CDS) Pre-varmt SOC-medium, som ingår i omvandlingssats, till rumstemperatur och de LB-agarplattor innehållande 100 pg / ml ampicillin till 37 ° C. Ekvilibrera vattenbadet på 42 ° C. Tina en flaska kemiskt komponent E. coli på is. Lägg 1-5 pl av plasmiden (10 pg till 100 ng) som innehåller CDS i flaskan med kemiskt komponent E. coli och blanda försiktigt. Blanda inte cellerna genom pipetterin…

Representative Results

Med användning av en pcDNA 3,3 plasmid innehållande CDS av EGFP ades syntesen av modifierade EGFP mRNA fastställdes (figur 1). Efter insatsen förstärkning med PCR och poly T-tailing, är ett tydligt band med en längd på ca 1.100 bp detekterades (figur 2). Ökning av IVT tiden förstärkt utbytet av mRNA (Figur 3). Efter IVT, var en klar mRNA-band med en längd av cirka 1100 bp detekterades, vilket motsvarar längden av EGFP mRNA som skall tillverkas (fig …

Discussion

MRNA-behandling har en enorm potential inom området regenerativ medicin, behandling av sjukdomar och vaccination. I denna video visar vi framställning av en stabiliserad, modifierat mRNA för induktion av proteinuttryck i celler. Med hjälp av detta protokoll, kan andra önskade mRNA genereras. In vitro-syntes av modifierade mRNA tillåter transfektion av celler med önskade mRNA för att inducera uttryck av målproteiner. Därigenom är det önskade proteinet uttryckas transient under fysiologiska betingelse…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Projektet har finansierats av Europeiska socialfonden i Baden-Württemberg, Tyskland.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cell culture
DMEM, high glucose PAA E15-009
FBS Life Technologies 10500
Penicillin/Streptomycin  PAA P11-010 100x
L-glutamine  PAA M11-004 200 mM
DPBS without calcium and magnesium  PAA E15-002
0.04% Trypsin / 0.03% EDTA  Promocell C-41020
TNS Promocell C-41120 Trypsin Neutralizing Solution, 0.05% trypsin inhibitor in 0.1% BSA
HEK-293 cells ATCC CRL-1573
Consumables
Tissue culture plates, 12-well  Corning 3512
Cell culture flask (75 cm2 Corning 430641
DNase-and RNase-free 1.5 ml sterile microcentrifuge tubes  Eppendorf 0030 121.589 Safe-Lock, Biopur
15 ml conical tubes  greiner bio-one 188271
PCR clean and sterile epT.I.P.S. dualfilter pipette tips  Eppendorf 10 µl: 022491202,    100 µl: 022491237, 1000 µl: 022491253
Cryovial greiner bio-one 122279-128 Cryo.s 
14 ml polypropylene round bottom tube for bacterial culture  BD Falcon 352059
Plasmid amplification and purification
pcDNA 3.3_eGFP Plasmid  Addgene 26822
One Shot Top10 chemically component Escherichia coli  Invitrogen C4040-10
Sterile water (Ampuwa) Fresenius Kabi 1636071
LB medium (Luria/Miller)  Carl Roth X968.1 Dissolve 25 g l-1 in sterile water.
LB agar (Luria/Miller)  Carl Roth X969.1 Dissolve 40 g l-1 in sterile water.
Ampicillin Ready Made Solution Sigma Aldrich A5354 100 mg/ml 
Glycerol Sigma Aldrich G2025
QIAprep Spin Miniprep Kit  Qiagen 27104
mRNA production
HotStar HiFidelity Polymerase Kit  Qiagen 202602
QIAquick PCR Purification Kit  Qiagen 28106
MEGAscript T7 Kit  Life Technologies AM1334
5-Methylcytidine-5´-triphosphate  Trilink N1014 5-Methyl-CTP
Pseudouridine-5´-triphosphate  Trilink N1019 Pseudo-UTP
3´-O-Me-m7G(5´)ppp(5`)G RNA cap structure analog  New England Biolabs S1411L
RiboLock RNase Inhibitor Thermo Scientific EO0381 40 U/µl 
TURBO DNase Life Technologies AM1334 2 U/µl (from MEGAscript T7 Kit)
Antarctic phosphatase  New England Biolabs MO289S
RNeasy mini kit  Qiagen 74104
RNaseZap solution  Life Technologies AM9780
Transfection
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent  Invitrogen 11668-019 Cationic lipid transfection reagent
Opti-MEM I Reduced Serum Media  Invitrogen 11058-021 Improved Minimal Essential Medium (MEM) with  reduced Fetal Bovine Serum (FBS) supplementation 
Gel electrophoresis
Agarose Sigma-Aldrich A9539
Gelred Nucleic Acid Gel Stain Biotium 41003 10,000x in water 
peqGOLD Range Mix DNA-Ladder  Peqlab 25-2210
0.5-10 kb RNA Ladder  Invitrogen 15623-200
1x TBE buffer
Flow cytometry analyses
CellFIX (1x) BD Biosciences 340181 10x concentrate 
Primer for insert amplification and         poly (T) tail PCR
Forward Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´-TTGGACCCTCGTACAGAAGCTAATACG-3´
Reverse Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´- T120-CTTCCTACTCAGGCTTTATTCAAAGACCA-3´
Equipment
Cell incubator Binder CO2 (5%) and O2 (20%) 
CASY cell counter  Schärfe System
Sterile workbench  BDK Luft-und Reinraumtecknik GmbH
Bacterial incubator  Incutec
Water bath
ScanDrop spectrophotometer  Analytic Jena
PCR thermocycler  Eppendorf
Microcentrifuge Eppendorf
Vortex peqlab
Thermomixer Eppendorf
Gel apparatus for electrophoresis  Bio-Rad
Gel documentation system  Bio-Rad
FACScan System  BD Biosciences
Fluorescence microscope  Nikon
Phase-contrast microscope  Zeiss

References

  1. Bangel-Ruland, N., et al. CFTR-mRNA delivery: a novel alternative for cystic fibrosis "gene therapy". The journal of gene medicine. , (2013).
  2. Benteyn, D., et al. Design of an Optimized Wilms" Tumor 1 (WT1) mRNA Construct for Enhanced WT1 Expression and Improved Immunogenicity In Vitro and In Vivo. Molecular therapy Nucleic acids. 2, 134 (2013).
  3. Petsch, B., et al. Protective efficacy of in vitro synthesized, specific mRNA vaccines against influenza A virus infection. Nature. 30, 1210-1216 (2012).
  4. Mandal, P. K., Rossi, D. J. Reprogramming human fibroblasts to pluripotency using modified mRNA. Nature protocols. 8, 568-582 (2013).
  5. Warren, L., et al. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell stem cell. 7, 618-630 (2010).
  6. Yakubov, E., Rechavi, G., Rozenblatt, S., Givol, D. Reprogramming of human fibroblasts to pluripotent stem cells using mRNA of four transcription factors. Biochemical and biophysical research communications. 394, 189-193 (2010).
  7. Anderson, B. R., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA enhances translation by diminishing PKR activation. Nucleic acids research. 38, 5884-5892 (2010).
  8. Kariko, K., Buckstein, M., Ni, H., Weissman, D. Suppression of RNA recognition by Toll-like receptors: the impact of nucleoside modification and the evolutionary origin of RNA. Immunity. 23, 165-175 (2005).
  9. Kariko, K., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA yields superior nonimmunogenic vector with increased translational capacity and biological stability. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 16, 1833-1840 (2008).
  10. Kariko, K., Weissman, D. Naturally occurring nucleoside modifications suppress the immunostimulatory activity of RNA: implication for therapeutic RNA development. Current opinion in drug discovery & development. 10, 523-532 (2007).
  11. Kormann, M. S., et al. Expression of therapeutic proteins after delivery of chemically modified mRNA in mice. Nature biotechnology. 29, 154-157 (2011).
  12. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Insertional oncogenesis in 4 patients after retrovirus-mediated gene therapy of SCID-X1. The Journal of clinical investigation. 118, 3132-3142 (2008).
  13. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. The New England journal of medicine. 363, 355-364 (2010).
  14. Avci-Adali, M., et al. Optimized conditions for successful transfection of human endothelial cells with in vitro synthesized and modified mRNA for induction of protein expression. Journal of biological engineering. 8, 8 (2014).
check_url/fr/51943?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Avci-Adali, M., Behring, A., Steinle, H., Keller, T., Krajeweski, S., Schlensak, C., Wendel, H. P. In Vitro Synthesis of Modified mRNA for Induction of Protein Expression in Human Cells. J. Vis. Exp. (93), e51943, doi:10.3791/51943 (2014).

View Video