Summary

In vitro-syntese af modificeret mRNA for Induktion af protein-ekspression i humane celler

Published: November 13, 2014
doi:

Summary

I denne video artiklen beskriver vi in vitro syntese af modificerede mRNA for induktion af proteinekspression i cellerne.

Abstract

Den exogene levering af kodning syntetisk messenger RNA (mRNA) for induktion af proteinsyntese i ønskede celler har et enormt potentiale inden for regenerativ medicin, grundlæggende cellebiologi, behandling af sygdomme og omprogrammering af celler. Her beskriver vi en trinvis protokol for generering af modificeret mRNA med nedsat immun aktivering potentiale og øget stabilitet, kvalitetskontrol af produceret mRNA, transfektion af celler med mRNA og verifikation af den inducerede protein-ekspression ved flowcytometri. Op til 3 dage efter en enkelt transfektion med eGFP mRNA, de transficerede HEK293-celler producerer eGFP. I denne video artiklen, er syntesen af ​​eGFP mRNA beskrevet som et eksempel. Imidlertid kan fremgangsmåden anvendes til fremstilling af andre ønskede mRNA. Anvendelse af det syntetiske modificerede mRNA kan celler induceres til transient at udtrykke de ønskede proteiner, som de normalt ikke ville udtrykke.

Introduction

I celler, transkriptionen af ​​messenger-RNA (mRNA) og følgende translation af mRNA til ønskede proteiner sikre en korrekt funktion af celler. Arvelige eller erhvervede genetiske sygdomme kan føre til utilstrækkelig og dysfunktionelle syntese af proteiner og forårsage alvorlige sygdomme. Således er en ny terapeutisk fremgangsmåde til at inducere produktion af manglende eller defekte proteiner er det exogene levering af syntetisk modificeret mRNA i celler, som koder for det ønskede protein. Derved celler udløst at syntetisere funktionelle proteiner, som de normalt ikke kan producere eller ville naturligvis ikke brug for. Med denne fremgangsmåde kan genetiske sygdomme korrigeres ved indføring af mRNA, der koder for det defekte eller manglende protein 1. MRNA terapi kan også anvendes til vaccination at syntetisere protein-antigener, som udtrykkes af tumorceller eller patogener. Derved kan værtens immunsystem aktiveres til effektivt at fjerne tumorceller eller forhindre infeKTIONER 2,3. Endvidere i de senere år blev mRNA med held anvendt til at generere inducerede pluripotente stamceller (iPSCs). Til dette formål blev fibroblaster transficeret med mRNA'er at inducere ekspressionen af omprogrammering faktorer 4-6 og omsætte dem i iPSCs med et enormt potentiale i regenerativ medicin.

Tidligere var brugen af ​​konventionelle mRNA forbundet med lav stabilitet og stærk immunogenicitet. Således blev kliniske anvendelser af konventionelle mRNA'er begrænset. Men udskiftning af cytidin og uridin med 5-methylcytidin og pseudouridine inden mRNA-molekylet ved Kariko og kolleger gjorde mRNA molekyler stabile i biologiske væsker og dramatisk reduceret immunaktivering 7-10, som nu giver mulighed for den kliniske anvendelighed af modificerede mRNA'er.

Ved hjælp af syntetisk fremstillede modificerede mRNA'er kan ønskede gentranskripter midlertidigt leveres in vivo 11eller in vitro at inducere proteinekspression. Den indførte mRNA translateres under fysiologiske betingelser af den cellulære translation maskineri. På grund af manglende integration i værtscellegenomet i forhold til virale genterapivektorer, er risikoen for onkogenese forhindret 12,13. Således vil behandling med modificeret syntetisk mRNA få bedre klinisk accept i fremtiden.

Her beskriver vi en detaljeret protokol til fremstilling af modificerede mRNA (figur 1) transfektion af celler med mRNA og evaluering af protein-ekspression i transficerede celler.

Protocol

1. Augmentation af plasmider indeholdende Nødvendig kodende DNA sekvenser (CDS) Pre-varm SOC medium, der er inkluderet i transformation kit, til stuetemperatur, og de LB-agarplader indeholdende 100 ug / ml ampicillin til 37 ° C. Ækvilibrere vandbad til 42 ° C. Optø et hætteglas af kemisk komponent E. coli på is. Tilføj 1-5 pi af plasmidet (10 pg til 100 ng) indeholdende CDS i hætteglasset med kemisk komponent E. coli og blandes forsigtigt. Bland ikke cellerne ved…

Representative Results

Ved hjælp af en pcDNA 3.3 plasmid indeholdende CDS af eGFP, blev syntesen af modificeret eGFP mRNA etableret (figur 1). Efter insert amplifikation ved PCR og poly-T-hale, er et klart bånd med en længde på ca. 1.100 bp påvist (figur 2). Forøgelse af IVT tid forøgede udbyttet af mRNA (figur 3). Efter IVT blev en klar mRNA bånd med en længde på ca. 1.100 bp påvises, hvilket svarer til længden af eGFP mRNA skal fremstilles (figur 4). <p clas…

Discussion

MRNA terapi har et enormt potentiale inden for regenerativ medicin, behandling af sygdomme og vaccination. I denne video viser vi, fremstilling af en stabiliseret, modificeret mRNA for induktion af proteinekspression i cellerne. Anvendelse af denne protokol, kan andre ønskede mRNA genereres. In vitro syntese af modificerede mRNA giver transfektion af celler med ønskede mRNA'er at inducere ekspression af målproteiner. Derved er det ønskede protein udtrykkes forbigående under fysiologiske betingelser, in…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette projekt blev finansieret af Den Europæiske Socialfond i Baden-Wuerttemberg, Tyskland.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cell culture
DMEM, high glucose PAA E15-009
FBS Life Technologies 10500
Penicillin/Streptomycin  PAA P11-010 100x
L-glutamine  PAA M11-004 200 mM
DPBS without calcium and magnesium  PAA E15-002
0.04% Trypsin / 0.03% EDTA  Promocell C-41020
TNS Promocell C-41120 Trypsin Neutralizing Solution, 0.05% trypsin inhibitor in 0.1% BSA
HEK-293 cells ATCC CRL-1573
Consumables
Tissue culture plates, 12-well  Corning 3512
Cell culture flask (75 cm2 Corning 430641
DNase-and RNase-free 1.5 ml sterile microcentrifuge tubes  Eppendorf 0030 121.589 Safe-Lock, Biopur
15 ml conical tubes  greiner bio-one 188271
PCR clean and sterile epT.I.P.S. dualfilter pipette tips  Eppendorf 10 µl: 022491202,    100 µl: 022491237, 1000 µl: 022491253
Cryovial greiner bio-one 122279-128 Cryo.s 
14 ml polypropylene round bottom tube for bacterial culture  BD Falcon 352059
Plasmid amplification and purification
pcDNA 3.3_eGFP Plasmid  Addgene 26822
One Shot Top10 chemically component Escherichia coli  Invitrogen C4040-10
Sterile water (Ampuwa) Fresenius Kabi 1636071
LB medium (Luria/Miller)  Carl Roth X968.1 Dissolve 25 g l-1 in sterile water.
LB agar (Luria/Miller)  Carl Roth X969.1 Dissolve 40 g l-1 in sterile water.
Ampicillin Ready Made Solution Sigma Aldrich A5354 100 mg/ml 
Glycerol Sigma Aldrich G2025
QIAprep Spin Miniprep Kit  Qiagen 27104
mRNA production
HotStar HiFidelity Polymerase Kit  Qiagen 202602
QIAquick PCR Purification Kit  Qiagen 28106
MEGAscript T7 Kit  Life Technologies AM1334
5-Methylcytidine-5´-triphosphate  Trilink N1014 5-Methyl-CTP
Pseudouridine-5´-triphosphate  Trilink N1019 Pseudo-UTP
3´-O-Me-m7G(5´)ppp(5`)G RNA cap structure analog  New England Biolabs S1411L
RiboLock RNase Inhibitor Thermo Scientific EO0381 40 U/µl 
TURBO DNase Life Technologies AM1334 2 U/µl (from MEGAscript T7 Kit)
Antarctic phosphatase  New England Biolabs MO289S
RNeasy mini kit  Qiagen 74104
RNaseZap solution  Life Technologies AM9780
Transfection
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent  Invitrogen 11668-019 Cationic lipid transfection reagent
Opti-MEM I Reduced Serum Media  Invitrogen 11058-021 Improved Minimal Essential Medium (MEM) with  reduced Fetal Bovine Serum (FBS) supplementation 
Gel electrophoresis
Agarose Sigma-Aldrich A9539
Gelred Nucleic Acid Gel Stain Biotium 41003 10,000x in water 
peqGOLD Range Mix DNA-Ladder  Peqlab 25-2210
0.5-10 kb RNA Ladder  Invitrogen 15623-200
1x TBE buffer
Flow cytometry analyses
CellFIX (1x) BD Biosciences 340181 10x concentrate 
Primer for insert amplification and         poly (T) tail PCR
Forward Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´-TTGGACCCTCGTACAGAAGCTAATACG-3´
Reverse Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´- T120-CTTCCTACTCAGGCTTTATTCAAAGACCA-3´
Equipment
Cell incubator Binder CO2 (5%) and O2 (20%) 
CASY cell counter  Schärfe System
Sterile workbench  BDK Luft-und Reinraumtecknik GmbH
Bacterial incubator  Incutec
Water bath
ScanDrop spectrophotometer  Analytic Jena
PCR thermocycler  Eppendorf
Microcentrifuge Eppendorf
Vortex peqlab
Thermomixer Eppendorf
Gel apparatus for electrophoresis  Bio-Rad
Gel documentation system  Bio-Rad
FACScan System  BD Biosciences
Fluorescence microscope  Nikon
Phase-contrast microscope  Zeiss

References

  1. Bangel-Ruland, N., et al. CFTR-mRNA delivery: a novel alternative for cystic fibrosis "gene therapy". The journal of gene medicine. , (2013).
  2. Benteyn, D., et al. Design of an Optimized Wilms" Tumor 1 (WT1) mRNA Construct for Enhanced WT1 Expression and Improved Immunogenicity In Vitro and In Vivo. Molecular therapy Nucleic acids. 2, 134 (2013).
  3. Petsch, B., et al. Protective efficacy of in vitro synthesized, specific mRNA vaccines against influenza A virus infection. Nature. 30, 1210-1216 (2012).
  4. Mandal, P. K., Rossi, D. J. Reprogramming human fibroblasts to pluripotency using modified mRNA. Nature protocols. 8, 568-582 (2013).
  5. Warren, L., et al. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell stem cell. 7, 618-630 (2010).
  6. Yakubov, E., Rechavi, G., Rozenblatt, S., Givol, D. Reprogramming of human fibroblasts to pluripotent stem cells using mRNA of four transcription factors. Biochemical and biophysical research communications. 394, 189-193 (2010).
  7. Anderson, B. R., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA enhances translation by diminishing PKR activation. Nucleic acids research. 38, 5884-5892 (2010).
  8. Kariko, K., Buckstein, M., Ni, H., Weissman, D. Suppression of RNA recognition by Toll-like receptors: the impact of nucleoside modification and the evolutionary origin of RNA. Immunity. 23, 165-175 (2005).
  9. Kariko, K., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA yields superior nonimmunogenic vector with increased translational capacity and biological stability. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 16, 1833-1840 (2008).
  10. Kariko, K., Weissman, D. Naturally occurring nucleoside modifications suppress the immunostimulatory activity of RNA: implication for therapeutic RNA development. Current opinion in drug discovery & development. 10, 523-532 (2007).
  11. Kormann, M. S., et al. Expression of therapeutic proteins after delivery of chemically modified mRNA in mice. Nature biotechnology. 29, 154-157 (2011).
  12. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Insertional oncogenesis in 4 patients after retrovirus-mediated gene therapy of SCID-X1. The Journal of clinical investigation. 118, 3132-3142 (2008).
  13. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. The New England journal of medicine. 363, 355-364 (2010).
  14. Avci-Adali, M., et al. Optimized conditions for successful transfection of human endothelial cells with in vitro synthesized and modified mRNA for induction of protein expression. Journal of biological engineering. 8, 8 (2014).
check_url/fr/51943?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Avci-Adali, M., Behring, A., Steinle, H., Keller, T., Krajeweski, S., Schlensak, C., Wendel, H. P. In Vitro Synthesis of Modified mRNA for Induction of Protein Expression in Human Cells. J. Vis. Exp. (93), e51943, doi:10.3791/51943 (2014).

View Video