Summary

Real Time Analyse van Metabool profiel in<em> Ex Vivo</em> Muis Intestinale Crypt organoïde Cultures

Published: November 03, 2014
doi:

Summary

Dunne darm crypte organoids gekweekt ex vivo een weefselkweek systeem dat de groei van de crypten afhankelijk van stamcellen en hun niche recapituleert. We hebben een methode om het metabole profiel in real time in primaire muis crypte organoids assay. We vonden organoids behouden fysiologische eigenschappen gedefinieerd door hun bron.

Abstract

De kleine darmslijmvlies vertoont een repeterende architectuur georganiseerd in twee fundamentele structuren: villi, die uitsteekt in het darmlumen en samengesteld uit volwassen enterocyten, bekercellen en entero-endocriene cellen; en crypten, wonende proximaal van de submucosa en de muscularis, herbergen volwassen stamcellen en progenitor cellen en rijpe Paneth cellen en stromale en immuuncellen van de crypte micromilieu. Tot de laatste jaren, in vitro studies van dunne darm beperkt tot cellijnen die afkomstig zijn van zowel goedaardige of kwaadaardige tumoren, en niet de fysiologie van normale darmepitheel en de invloed van de micro-omgeving waarin zij verblijven vertegenwoordigen. Hier tonen we een aangepaste werkwijze van Sato et al. (2009) voor het kweken van primaire muis intestinale crypte organoids afgeleid uit C57BL / 6 muizen. Daarnaast presenteren we het gebruik van de crypte organoïde culturen naar de crypte metabole profiel in real time door de maatregel assayment van basale zuurstofverbruik, glycolytic rate, ATP productie en respiratoire capaciteit. Organoids behouden eigenschappen gedefinieerd door hun bron en de aspecten van hun metabolische aanpassing weerspiegeld door zuurstofverbruik en extracellulaire verzuring tarieven behouden. Real time metabole studies in deze crypte organoïde kweeksysteem zijn een krachtig hulpmiddel om crypte organoïde energiemetabolisme te bestuderen, en hoe het kan worden gemoduleerd door voedings- en farmacologische factoren.

Introduction

Colorectale kanker (CRC) is de derde belangrijke oorzaak van kanker gerelateerde sterfgevallen in de Verenigde Staten. Sporadische darmkanker – dat wil zeggen, dat later die zich voordoen in het leven (> 50 jaar) en zonder duidelijke predisponerende genetische factoren – is goed voor ~ 80% van alle gevallen, met de incidentie sterk beïnvloed door langdurige voedingspatronen 1,2. Deze tumoren vertonen een metabolische verschuiving naar afhankelijkheid oxidatieve glycolyse, zogenaamde Warburgeffect, die gedeeltelijk kunnen maken hogere concentraties van cellulaire bouwstenen en energie beschikbaar (via glutaminolysis) mogelijk te maken en wellicht hoge percentages tumorcelproliferatie 3-5 drijven . Studies darmkanker en andere gastro-intestinale kanker waaronder dunne darm kanker verschaffen belangrijke inzicht in de oorzaak van tumorvorming. Het onderzoeken van de metabole verschillen tussen normale, pro-tumorigene en tumorigeen staten van gastro-intestinale organen kan det helpenermination relatieve risico op tumorontwikkeling en vroegtijdige detectie van neoplasie. Bovendien is het begrip van bio-energetische stofwisseling waarbij mitochondriale ademhaling en glycolyse zal fundamenteel inzicht in hoe de cel fysiologie, veroudering en de ziekte staat verstoort intestinale homeostase bieden. Benutting van de bio-energetica assay technologie voor extracellulaire flux analyse kunnen de tarieven van de mitochondriale ademhaling en glycolyse gelijktijdig beoordelen in cellen groeien in cultuur in real time 6,7.

Tot voor kort, werden in vitro onderzoek van dunne darm beperkt tot cellijnen die afkomstig zijn van zowel goedaardige of kwaadaardige tumoren 8,9 en niet de fysiologie van normale darmepitheel en de invloed van de micro-omgeving waarin zij verblijven vertegenwoordigen. In 2009, Sato et al. 10 introduceerde een ex vivo cultuur systeem om driedimensionale (3D) muis intestinale epitheliale organoids groeien, of epithEliel "mini-lef", geschikt voor experimentele, diagnostische en therapeutische onderzoeken 10,11. Bovendien crypten geïsoleerd van calorisch beperkte muizen behouden hun veranderde groei-eigenschappen als organoids in dergelijke culturen 12. Vergeleken met getransformeerde cellijnen kunnen crypte organoïde culturen worden fysiologisch relevante gegevens die een beter model voor de in vivo toestand begrijpen genereren.

We aangepast bioenergetica analyse technologie om energie-metabolisme van intestinale crypte organoids assay. Muis intestinale crypte organoids werden gekweekt ex vivo naar de crypte organoïde energiemetabolisme studies gepresenteerd ontwikkelen. De zuurstof verbruik (OCR) en de extracellulaire verzuringssnelheid (ECAR) van crypte organoids werden gemeten in de afwezigheid en aanwezigheid van twee verschillende metabolische remmers (oligomycin, rotenon) en een ion drager (carbonyl cyanide-p-trifluoromethoxyphenylhydrazone). De crypte organoid metabole reactie op deze chemische verbindingen werden met succes tot uiting door middel van het wijzigen van ECAR en OCR-waarden.

Cellulaire bio-energetische studies zullen de wederzijdse interacties tussen metabole toestand en ziekterisico en fenotype verhelderen bij kanker, obesitas, diabetes, metabole stoornissen en mitochondriale ziekten en helpen vooraf screeningsmethoden met rechtstreekse gevolgen voor translationele geneeskunde. Hier beschrijven we een gedetailleerd protocol te dunne darm crypten te isoleren en cultuur crypte organoids. Bovendien introduceren we een nieuwe methode om crypte organoïde culturen gebruiken voor metabole assays.

Protocol

Deze studie werd uitgevoerd in overeenstemming met de aanbevelingen in de handleiding voor de zorg en het gebruik van proefdieren van de National Institutes of Health. Het protocol werd goedgekeurd door de Commissie voor de ethiek van dierproeven van het Albert Einstein College of Medicine. 1. Crypt Isolatie en Cultuur Isolatie van crypten uit de dunne darm: Isoleer intestinale crypten van elke muizenmodel met rente. Euthanaseren de muizen met CO2, gevolgd door…

Representative Results

Crypte organoids werden vastgesteld op basis van 8 maanden oude C57BL / 6 muizen gevoed gezuiverd knaagdierendieet American Institute of Nutrition 76A (AIN76A). Intestinale crypte organoids kunnen worden gekweekt in cultuur voor langere tijd van een enkele crypte (Figuur 1A, enkele rode pijl). Organoids groeien uit crypte-achtige structuren in 18-20 dagen in kweek (Figuur 1B, rode pijlen). Crypten werden gepasseerd om de 3 weken en organoids efficiënt hersteld na elke passage. <p c…

Discussion

We testten het zuurstofverbruik rate (OCR) en de extracellulaire aanzuursnelheid (ECAR) van crypten geïsoleerd van 8 maanden oude muizen en uitgegroeid tot organoids ex vivo. Na meting van de basale snelheid, werd crypte metabolisme geëvalueerd door het toevoegen oligomycin, carbonyl cyanide -p-trifluoromethoxyphenylhydrazone (FCCP) en rotenon, sequentieel.

Basaal OCR en basale ECAR werden geregistreerd 0-29 min (figuur 2A en 2B). Op de 29ste…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Deze studie werd ondersteund door subsidies RO1 CA 135.561, R01 CA151494, R01 CA174432 en P3013330 van de National Institutes of Health.

Wij willen Michele Houston, Elena Dhima en Dr. Anna Velcich bedanken voor hun waardevolle opmerkingen bij het ontwikkelen van de crypte isolatie protocol.

We danken ook de Diabetes Training and Research Center van het Albert Einstein College of Medicine ondersteund door NIH P60DK20541, en Dr Michael Brownlee en Dr. Xue-Liang Du, die sturing en bediening van de Seahorse faciliteit, respectievelijk.

Materials

BD Matrigel Basement Membrane Matrix, GFR, Phenol Red-free, LDEV-free BD Biosciences 356231
PBS (phosphate buffered saline), no magnesium, no calcium, pH 7.2 Life Technologies 20012-027
Advanced DMEM/F-12 (1X) Life Technologies 12634-028
Dulbecco′s Modified Eagle′s Medium without glucose, L-glutamine, Phenol Red, sodium pyruvate and sodium bicarbonate Sigma-Aldrich D5030
Phenol Red sodium salt  Sigma-Aldrich P4758 Final Concentration 15 mg / L in DMEM (D5030) – step 2.2.2
Antibiotic-Antimycotic, 100X, 100ml Life Technologies 15240-062  Final Concentration 1 X or 2 X
Penicilin-Streptomycin, liquid Life Technologies 15140-122 Final Concentration 1 X
Gibco® GlutaMAX™ supplement Life Technologies 35050061 Final Concentration 1 X
Gibco® HEPES (N-2-hydroxyethylpiperazine-N-2-ethane sulfonic acid), 1 M Life Technologies 15630-080 Final Concentration 10 mM
N-Acetyl-L-Cysteine, 25g Sigma-Aldrich A9165-25G Final Concentration 1 mM
100X N-2 supplement, liquid Invitrogen 17502-048 Final Concentration 1 X
50X B-27® supplement minus Vitamin A, liquid Invitrogen 12587-010 Final Concentration 1 X
Recombinant Mouse R-Spondin 1, CF, 50ug R&D Systems 3474-RS-050  Final Concentration 500 ng / mL
Recombinant Murine EGF, 100ug  Peprotech 315-09  Final Concentration 50 ng / mL
Recombinant Murine Noggin, 20ug  Peprotech 250-38 Final Concentration 100 ng / mL
Gibco® L-glutamine, 200 mM Life Technologies 25030-081 Final Concentration 2 mM
Gibco® Glucose powder Life Technologies 15023-021 Final Concentration 5 mM
Ambion® 0.5 M EDTA (Ethylenediaminetetraacetic acid), pH 8.0 Life Technologies AM9260G Final Concentration 3 mM for step 1.1.5; 2 mM for step 1.1.8 
DTT (Dithiothreitol), 1M Life Technologies P2325 Final Concentration 3 mM
Albumin from bovine serum (BSA) Sigma-Aldrich A2058 0.1 % in PBS
Fetal Bovine Serum (FBS) Life Technologies 16000-044 1 % in PBS
Recovery™ Cell Culture Freezing Medium Life Technologies 12648-010
ROCK inhibitor (Y-27632)  Sigma-Aldrich Y0503 Final Concentration 10 µM
Oligomycin Sigma-Aldrich O4876 Final Concentration 1 µM 
Carbonyl cyanide-p-trifluoro-methoxy-phenyl-hydrazone (FCCP) Sigma-Aldrich C2920 Final Concentration 1 µM 
Rotenone Sigma-Aldrich R8875 Final Concentration 1 µM 
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 221465 Final Concentration 0.1 N in PBS
XF24 Extracellular Flux Analyzer (XF Analyzer) Seahorse Bioscience

References

  1. Jemal, A., et al. . CA Cancer J Clin. 58, 71-96 (2008).
  2. Slattery, M. L., Boucher, K. M., Caan, B. J., Potter, J. D., Ma, K. N. Eating patterns and risk of colon cancer. Am J Epidemiol. 148, 4-16 (1998).
  3. Warburg, O. On the origin of cancer cells. Science. 123, 309-314 (1956).
  4. Coles, N. W., Johnstone, R. M. Glutamine metabolism in Ehrlich ascites-carcinoma cells. Biochem J. 83, 284-291 (1962).
  5. Medina, M. A., Castro I, N. u. n. e. z. d. e. Glutaminolysis and glycolysis interactions in proliferant cells. Int J Biochem. 22, 681-683 (1990).
  6. Anso, E., et al. Metabolic changes in cancer cells upon suppression of MYC. Cancer Metab. 1, 7 (2013).
  7. Malmgren, S., et al. Coordinate changes in histone modifications, mRNA levels, and metabolite profiles in clonal INS-1 832/13 β-cells accompany functional adaptations to lipotoxicity. J Biol Chem. 288 (17), 11973-11987 (2013).
  8. Whitehead, R. H., et al. Establishment of conditionally immortalized epithelial cell lines from both colon and small intestine of adult H-2Kb-tsA58 transgenic mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 90 (2), 587-591 (1993).
  9. Roig, A. I., et al. Immortalized epithelial cells derived from human colon biopsies express stem cell markers and differentiate in vitro. Gastroenterology. 138 (3), 1012-1021 (2010).
  10. Sato, T., et al. Single LGR5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459, 262-265 (2009).
  11. Sato, T., Clevers, H. Growing self-organizing mini-guts from a single intestinal stem cell: mechanism and applications. Science. 340, 1190-1194 (2013).
  12. Yilmaz, O. H., et al. mTORC1 in the Paneth cell niche couples intestinal stem-cell function to calorie intake. Nature. 486, 490-495 (2012).
check_url/fr/52026?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bas, T., Augenlicht, L. H. Real Time Analysis of Metabolic Profile in Ex Vivo Mouse Intestinal Crypt Organoid Cultures. J. Vis. Exp. (93), e52026, doi:10.3791/52026 (2014).

View Video