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Article de méthode

Modélisation des muqueuses candidose larves de poisson zèbre par injection vessie natatoire

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DOI :

10.3791/52182

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27 novembre 2014

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Dans cet article

Résumé

Les interactions spatio-temporelles in vivo des défenses pathogènes et immunitaires au niveau de la muqueuse ne sont pas facilement imagées chez les hôtes vertébrés existants. La méthode présentée ici décrit une plate-forme polyvalente pour étudier la candidose muqueuse chez les vertébrés vivants en utilisant la vessie natatoire du poisson-zèbre juvénile comme site d’infection.

Résumé

La défense précoce contre les agents pathogènes des muqueuses consiste à la fois une barrière épithéliale et les cellules immunitaires innées. Le immunocompétence des deux, et de leur intercommunication, sont primordiaux pour la protection contre les infections. Les interactions de cellules immunitaires innées et épithéliales avec un agent pathogène sont les mieux étudiés in vivo, où le comportement complexe se déroule dans le temps et l'espace. Cependant, les modèles existants ne permettent pas facile imagerie spatio-temporelle de la bataille avec des agents pathogènes au niveau de la muqueuse.

Le modèle développé ici crée une infection de la muqueuse par injection directe de l'agent pathogène fongique, Candida albicans, dans la vessie natatoire du poisson zèbre juvénile. L'infection résultant permet imagerie à haute résolution du comportement des cellules épithéliales et immunitaire innée à travers le développement de la maladie des muqueuses. La polyvalence de cette méthode permet pour interrogatoire de l'hôte à sonder la séquence détaillée des événements immunitaire conduisant à phagocyte recrutement et d'examiner les rôles de types cellulaires particuliers et voies moléculaires dans la protection. De plus, le comportement de l'agent pathogène en fonction de l'attaque immunitaire peut imager simultanément en utilisant la protéine fluorescente exprimant C. albicans. Résolution spatiale accrue de l'interaction hôte-pathogène est également possible en utilisant la technique de dissection vessie natatoire rapide décrite.

Le modèle d'infection de la muqueuse décrite ici est simple et hautement reproductible, ce qui en fait un outil précieux pour l'étude de la candidose buccale. Ce système peut également être largement traduisible à d'autres pathogènes des muqueuses comme les microbes mycobactériennes, bactériennes ou virales qui infectent normalement à travers des surfaces épithéliales.

Introduction

Les infections des muqueuses peuvent entraîner des infections du sang potentiellement mortelles en raison des dommages à la barrière épithéliale, qui permettent aux agents pathogènes d’accéder à l’environnement systémique1,2. De plus, les infections des muqueuses peuvent également provoquer une immunopathologie importante, même lorsqu’elles sont contenues à l’extérieur3-5. Le champignon unicellulaire commensal, Candida albicans, est présent dans la majorité de la population dans la cavité buccale et d’autres sites muqueux6-9. Bien qu’elles soient normalement limitées par des réponses immunitaires innées et adaptatives, les ano....

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Protocole

REMARQUE: Tous les protocoles et les expériences de soins de poisson zèbre ont été effectuées conformément aux directives du NIH sous institutionnel de protection des animaux et l'utilisation Comité (IACUC) A2012-11-03 protocole.

1. poisson zèbre élevage pour quatre jours après la fécondation

  1. Recueillir AB poisson zèbre, ou d'autres lignées transgéniques, dans le premier poste de fertilisation 3 heures, comme montré dans un autre 34 vidéo.
  2. Incuber 120 oeufs dans un 15 cm boîtes de Pétri contenant 150 ml de milieu E3 (mM de NaCl 5; KCl mM 0,17; 0,33 mM de CaCl2; 0,33 mM de MgCl2,

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Résultats

La micro-injection dans la vessie natatoire postérieure

La méthode expérimentale présentée ici décrit l'injection d'une dose constante de C. des cellules de levure albicans dans la vessie natatoire des 4 dpf poisson zèbre. Des travaux antérieurs avec le modèle d'immersion suggère que la réponse immunitaire de la vessie natatoire à C. albicans est similaire à mammifère candidose des muqueuses 32. Ici, nous démontrons une méthode d'infection modifié qui est p.......

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Discussion

Les progrès et les limites du modèle de la maladie de la micro-injection de vessie natatoire

Le modèle présenté ici est une extension du modèle d'immersion de la candidose des muqueuses décrit dans Gratacap et al (2013).; il ajoute les avantages d'un temps d'infection contrôlée, une dose d'infection hautement reproductibles, et donc une meilleure efficacité. Nous démontrons ici de nouvelles méthodes qui permettent la documentation temporelle non-invasive de la dynamique.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs remercient le Dr Le Trinh et le Dr Tobin pour fournir généreusement l'α-caténine: ligne de poissons de citrine et Bill Jackman pour nous permettre de faire le tournage dans son laboratoire. Les auteurs reconnaissent les sources de financement Instituts nationaux de la santé (subventions 5P20RR016463, 8P20GM103423 et R15AI094406) et l'USDA (Projet # ME0-H-1-00517-13). Ce manuscrit est publié en tant que principal Agriculture et foresterie Expérience publication station numéro 3371.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tubes de 1,7 mlAxygenMCT-175-C
Boîtes de Pétri profondesFisher Scientific89107-632
Pipettes de transfertFisher Scientific13-711-7M
Extrait de levureVWR Scientific90000-726
PeptoneVWR Scientific90000-264
DextroseFisher ScientificD16-1
AgarVWR Scientific90000-760
Pince à épiler fine (Dumont Dumoxel #5)Fine Science Tools11251-30
Chevilles en boisVWR Scientific10805-018
Agarose à bas point de fusionVWR Scientific12001-722
Extracteur de micropipettes brun flamboyantSutter InstrumentsP-97
Capillaire en borosilicateSutter InstrumentsBF120-69-10
Système d’injection MPPI-3Applied Scientific InstrumentationMPPI-3
Unité de contre-pressionApplied Scientific InstrumentationBPU
Kit de porte-micropipetteApplied Scientific InstrumentationMPIP
Pédale de commandeApplied Scientific InstrumentationMicromanipulateur FSW
Instrumentation scientifique appliquéeMM33
Base magnétiqueInstrumentation scientifique appliquéeBase
Tricaïne méthane sulfonateWestern Chemical Inc.MS-222
Microscope de dissectionOlympusSZ61 haut SZX-ILLB2-100 base
Microscope confocalOlympusIX-81 avec FV-1000 à balayage laser Système
20X microscope objectifOlympusUPlanSApo 20x/0.75
Tambour à rouleauxNew Brunswick ScientificTC-7
Microloader pointesde pipetteEppendorf930001007
Tubes de culture en verre (16 x 150 mm)VWR Scientific60825-435
NaClVWR ScientificBDH4534-500GP
KClVWR ScientificBDH4532-500GP
MgSO4VWR ScientificBDH0246-500GP
HEPES (Corning)VWR ScientificBDH4520-500GP
Argile pour enfants (Play-Doh)Hasbro
CaCl2Fisher ScientificC69-500
Bleu de méthylèneVWR ScientificVW6276-0
PTUSigmaP7629-10G
Boîtes de PétriFisher ScientificFB0875712
Hémocytomètre ( Hausser scientific)VWR Scientific15170-172
Huile d’immersion de type ABlue Marble Products51935
CentrifugeuseEppendorf5424
Vortex GenieVWR Scientific14216-184
Agarose (Lonza)VWR Scientific12001-870
Na2HPO4 Fisher ScientificS374-500
KH2PO4Fisher ScientificP285-500
Fil de pêcheStren
96 plaque d’imagerie de puits (Sensoplate)Greiner Bio-One655892
Graisse sous vide poussé (Dow Corning)VWR Scientific59344-055
Microslide (25 x 75 mm)VWR Scientific48300-025
Lamelles (18 x 18 mm), n° 1.5VWR Scientific48366-045
15 cm Boîte de Pétri (Olympus plastics)Genesee Scientific32-106
Glycérol (EMD chemicals)VWR ScientificEMGX0185-5
Boîte de culture 24 puits (Olympus plastics)Genesee Scientific25-107
Poids bateaux (8,9 cm)VWR Scientific89106-766
magnétiqueconfocal

Références

  1. Peterson, L. W., Artis, D. Intestinal epithelial cells: regulators of barrier function and immune homeostasis. Nat Rev Immunol. 14 (3), 141-153 (2014).
  2. Elinav, E., Henao-Mejia, J., Flavell, R. A. Integrative inflammasome activity in the ....

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Réimpressions et autorisations

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