Summary

परिधीय रक्त Hematopoietic पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं से मानव तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं के प्रत्यक्ष प्रेरण

Published: January 28, 2015
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Summary

एक विधि सीधे परिधीय रक्त कोशिकाओं से समृद्ध hematopoietic पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं से मानव तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं को प्राप्त करने के लिए विकसित किया गया था।

Abstract

मानव रोग विशिष्ट neuronal संस्कृतियों मानव मस्तिष्क संबंधी बीमारियों के लिए इन विट्रो मॉडल में पैदा करने के लिए आवश्यक हैं। हालांकि, प्राथमिक मानव वयस्क तंत्रिका संस्कृतियों के लिए उपयोग की कमी अद्वितीय चुनौतियों को जन्म देती है। प्रेरित स्टेम सेल में हाल के घटनाक्रम (IPSC) रोगी विशिष्ट IPSC के माध्यम से त्वचा fibroblasts से तंत्रिका संस्कृतियों प्राप्त करने के लिए एक वैकल्पिक तरीका प्रदान करता है, लेकिन इस प्रक्रिया श्रम गहन है, विशेष विशेषज्ञता और संसाधनों की बड़ी मात्रा की आवश्यकता है, और कई महीने लग सकते हैं। यह मस्तिष्क संबंधी बीमारियों के अध्ययन के लिए इस तकनीक का व्यापक आवेदन को रोकता है। इनमें से कुछ मुद्दों पर काबू पाने के लिए, हम IPSC व्युत्पत्ति प्रक्रिया को दरकिनार सीधे मानव वयस्क परिधीय रक्त से तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं को प्राप्त करने के लिए एक विधि विकसित किया है। मानव वयस्क परिधीय रक्त से समृद्ध hematopoietic पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं इन विट्रो में सुसंस्कृत थे और, अक्टूबर ट्रांसक्रिप्शनल कारकों Sox2 युक्त सेंडाइ वायरस वैक्टर के साथ ट्रांसफ़ेक्ट3/4, Klf4, और सी-Myc। आगे बुनियादी fibroblast वृद्धि कारक (bFGF) और संवहनी endothelial वृद्धि कारक (वीईजीएफ़) युक्त मानव तंत्रिका पूर्वज माध्यम का उपयोग कर से चुना जाता है, जो कोशिकाओं में morphological परिवर्तन में अभिकर्मक का परिणाम है। जिसके परिणामस्वरूप कोशिकाओं ऐसे nestin और Sox2 के रूप में तंत्रिका स्टेम सेल मार्कर, के लिए अभिव्यक्ति की विशेषता है। इन तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं को आगे न्यूरॉन्स, अस्थिकणिका और निर्दिष्ट भेदभाव मीडिया में oligodendrocytes के लिए भेदभाव किया जा सकता है। आसानी से सुलभ मानव परिधीय रक्त के नमूनों का उपयोग करना, इस विधि मस्तिष्क संबंधी बीमारियों के इन विट्रो मॉडलिंग के लिए तंत्रिका कोशिकाओं को आगे भेदभाव के लिए तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं को प्राप्त करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है और उन बीमारियों के रोगजनन और उपचार से संबंधित पढ़ाई अग्रिम कर सकते हैं।

Introduction

इन विट्रो में neuronal संस्कृतियों मस्तिष्क संबंधी बीमारियों के अध्ययन के लिए एक बुनियादी उपकरण के रूप में इस्तेमाल किया गया है। प्राथमिक पशु (ज्यादातर कृंतक) तंत्रिका संस्कृतियों 1, 2 और gliomas या अन्य ट्यूमर से निकाली गई मानव तंत्रिका कोशिका लाइनों सबसे अधिक इस्तेमाल इस तरह के अध्ययन में हैं। हालांकि, यह कृंतक और मानव कोशिकाओं के बीच महत्वपूर्ण मतभेद हैं कि मान्यता दी गई है। कृन्तकों के आधार पर कई निष्कर्षों मनुष्य के लिए अनुवाद नहीं किया जा सकता है। इसके अलावा, जन जीनोमिक जानकारी और अपेक्षाकृत आसान जीन संपादन और पूरे जीनोम अनुक्रमण का विश्लेषण करने में तेजी से विकास के साथ, इस रुझान को अधिक से अधिक गियर कुछ मानव न्यूरोनल बनाता है, जो रोग होने का खतरा जीन की खोज और विशिष्ट रोगों में उनके कार्यों और भूमिकाओं का वर्णन करने के लिए है सेल लाइनों केवल उपयोग सीमित है। सैद्धांतिक रूप से, रोगी तंत्रिका तंत्र के नमूनों से व्युत्पन्न मानव प्राथमिक तंत्रिका संस्कृतियों का सबसे अच्छा विकल्प हैं, लेकिन वे प्राप्त करने के लिए असंभव है; इसलिए वैकल्पिक मेथODS जरूरी हैं। हाल के वर्षों में, कुछ दृष्टिकोण दो सबसे अलग पहचाना जा रहा है, के साथ चलाया जा रहा है। पैदा करने के लिए प्रेरित किया स्टेम कोशिकाओं (IPSC) का उपयोग माउस और मानव दैहिक कोशिकाओं की तकनीक के विकास के बाद 3, 4, तंत्रिका कोशिकाओं उन्हें 5-7 से आगे भेदभाव किया जा सकता है। हालांकि, सृजन और IPSC निस्र्पक गहन श्रम, तकनीक, और समय इनपुट की मांग है, कभी कभी भी बेहद। कुछ ही समय बाद, एक और दृष्टिकोण सीधे दैहिक कोशिकाओं 8, 9 से neuronal कोशिकाओं को बदलने के लिए विकसित किया गया था। जिसके परिणामस्वरूप न्यूरॉन्स गैर प्रफलन हो रहे हैं, यह गहन अध्ययन और कोशिकाओं की एक बड़ी राशि की आवश्यकता है जो दवा स्क्रीनिंग, में अपने आवेदन की सीमा। दोनों तकनीकों, तंत्रिका स्टेम के प्रत्यक्ष व्युत्पत्ति का लाभ लेने के / दैहिक कोशिकाओं से पूर्वज कोशिकाओं को अभी भी IPSC पीढ़ी और लक्षण लेकिन प्रावधानों की थकाऊ प्रक्रिया को नजरअंदाज जो कई समूहों 10-12, द्वारा पता लगाया गया हैदेस बाद में तंत्रिका भेदभाव के लिए तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं के एक सभ्य संख्या। हम पहले हिमेटोपोयटिक पूर्वज कोशिकाओं में यामानाका प्रतिलेखन कारक की शुरूआत के बाद, तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं को सीधे मध्यम 13 का चयन एक तंत्रिका पूर्वज सेल का उपयोग कर उत्पन्न किया जा सकता है कि पता चला है। यहाँ, हम विस्तार से विधि की रिपोर्ट।

Protocol

वयस्क पूरे रक्त से 1. संवर्धन Hematopoietic पूर्वज के प्रकोष्ठों नोट: Hematopoietic पूर्वज कोशिकाओं या CD34 + कोशिकाओं घनत्व ढाल centrifugation आधारित तरीकों का उपयोग कर गर्भनाल रक्त, leukapheresis सामग्री और पूरे रक्त सहित विभिन्…

Representative Results

CD34 कोशिकाओं की गुणवत्ता तंत्रिका स्टेम सेल पारगमन की सफलता के लिए महत्वपूर्ण है। उच्च गुणवत्ता CD34 कोशिकाओं संस्कृति के दिनों की पहली जोड़ी के दौरान पैदा करना है और सिर्फ संस्कृति वाहिकाओं (चित्र?…

Discussion

सीधे परिधीय hematopoietic पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं से तंत्रिका स्टेम कोशिकाओं को उत्पन्न करने के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रदान की जाती है।

Fibroblast कोशिकाओं की तुलना में, मानव परिधीय रक्त अधिक सुलभ है।…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors have no conflicts of interest to disclose.

Materials

Material List
Name Company Catalog Number Comments
Lymphocyte Separation Medium Lonza 17-829E 1 X
SepMate Stemcell Technologies 15415 15 mL
Human Serum Invitrogen 34005-100
Antibiotics Gibco 15240-062 1%
CD34 MultiSort Kit Miltenyi Biotec 130-056-701
EDTA Cellgro 46-034-Cl  2mM
MACS LS Column Miltenyi Biotec 130-042-401
StemSpan SFEM Medium Stemcell Technologies 9650 1X
IMDM Quality Biologicals 112-035-101 1X
TPO Peprotech 300-18 100 ng/mL
Flt-3 Peprotech 300-19 100 ng/mL
SCF Peprotech 300-07 100 ng/mL
IL-6 Peprotech 200-06 20 ng/mL
IL-7  Peprotech 200-07 20 ng/mL
IPS Sendai Reprogramming Kit Life technologies A1378001
Cell scraper Sarstedt 83.183
DMSO Sigma D2650
CryoTube vials Thermo 368632
Mr. Frosty container Thermo 5100-0001
DMEM/F12 Life technologies 12400-024 1X
N2 supplement Life technologies 17502-048 1X
Bovine serum albumin Sigma A2934 0.1% (w/v)
bFGF Peprotech 100-18B 20 ng/ml
EGF Peprotech AF-100-15
B27 supplement Life technologies 17504-044 1X
NSC serum free medium Life Technologies A1050901 1X
Poly-D-lysine/laminin coated cover slips BD Bioscences 354087
cAMP Sigma A9501 300 ng/ml
Vitamin C Sigma A0278 0.2 mM
BDNF Peprotech 450-02 10 ng/ml
GDNF Peprotech 450-10 10 ng/ml
Poly-L-Ornithine Sigma P4957 1X
PDGF-AA Peprotech 100-13A 10 ng/ml
NT-3 Peprotech 450-03 2 ng/ml
Shh Peprotech 1314-SH/CF 2 ng/ml
T3 Sigma T6397 3 nM
PFA Sigma P6148 4%
PBS Quality Biological 119-069-101 1X
Goat serum Sigma G9023 4%
TritonX-100 Sigma T9284
Mouse monoclonal anti-Nestin Millipore AB5922 1:1000 dilution
Anti-SOX2  antibody Applied Stemcell ASA0120 Ready to use
Mouse anti-βIII-tubulin antibody Promega G712A 1:1000 dilution
Rabbit anti-GFAP antibody Sigma G4546 1:100 dilution
Anti-O4 antibody R&D Systems MAB1326 IgM; 1 ng/ml
Alexa Fluor 594 goat anti-rabbit antibody Life techniologies A11012 1:400 dilution
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse antibody Life techniologies A11001 1:400 dilution
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgM antibody Life techniologies A21042 1:250 dilution
DAPI Sigma D9542 1 ug/ml

References

  1. Azari, H., et al. Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny. PLoS ONE. 6, e20941 (2011).
  2. Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. The neuroblast assay: an assay for the generation and enrichment of neuronal progenitor cells from differentiating neural stem cell progeny using flow cytometry. J Vis Exp. (62), (2012).
  3. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  4. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  5. Zhang, N., An, M. C., Montoro, D., Ellerby, L. M. Characterization of Human Huntington’s Disease Cell Model from Induced Pluripotent Stem Cells. PLoSCurr. 2, RRN1193 (2010).
  6. Park, I. H., et al. Disease-Specific Induced Pluripotent Stem Cells. Cell. 134 (5), 877-886 (2008).
  7. Song, B., et al. Neural differentiation of patient specific iPS cells as a novel approach to study the pathophysiology of multiple sclerosis. Stem Cell Research. 8 (2), 259-273 (2012).
  8. Vierbuchen, T., et al. Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors. Nature. 463 (7284), 1035-1041 (2010).
  9. Pfisterer, U., et al. Direct conversion of human fibroblasts to dopaminergic neurons. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 10343-10348 (2011).
  10. Lee, S. -. T., et al. Direct Generation of Neurosphere-Like Cells from Human Dermal Fibroblasts. PLoS ONE. 6, e21801 (2011).
  11. Thier, M., et al. Direct Conversion of Fibroblasts into Stably Expandable Neural Stem Cells. Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).
  12. Lujan, E., Chanda, S., Ahlenius, H., Südhof, T. C., Wernig, M. Direct conversion of mouse fibroblasts to self-renewing, tripotent neural precursor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109, 2527-2532 (2012).
  13. Wang, T., et al. Derivation of neural stem cells from human adult peripheral CD34+ cells for an autologous model of neuroinflammation. PLoS ONE. 8, e81720 (2013).
  14. Jin, C. H., et al. Recombinant Sendai virus provides a highly efficient gene transfer into human cord blood-derived hematopoietic stem cells. Gene Ther. 10 (3), 272-277 (2003).
  15. Ban, H., et al. Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 14234-14239 (2011).
  16. Goolsby, J., et al. Hematopoietic progenitors express neural genes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 100, 14926-14931 (2003).
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Citer Cet Article
Wang, T., Choi, E., Monaco, M. C. G., Major, E. O., Medynets, M., Nath, A. Direct Induction of Human Neural Stem Cells from Peripheral Blood Hematopoietic Progenitor Cells. J. Vis. Exp. (95), e52298, doi:10.3791/52298 (2015).

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