Summary

Direkt Induktion av humana neurala stamceller från perifert blod hematopoetiska progenitorceller

Published: January 28, 2015
doi:

Summary

En metod har utvecklats för att direkt härleda mänskliga neurala stamceller från hematopoetiska progenitorceller anrikade från perifera blodceller.

Abstract

Humant sjukdomsspecifika neuronala kulturer är väsentliga för att generera in vitro-modeller för mänskliga neurologiska sjukdomar. Men bristen på tillgång till primära mänskliga vuxna neurala kulturer väcker unika utmaningar. Den senaste utvecklingen i inducerade pluripotenta stamceller (IPSC) ger en alternativ metod för att härleda neurala kulturer från hud fibroblaster genom patientens specifika iPSC, men denna process är arbetsintensiv, kräver särskild kompetens och stora resurser, och kan ta flera månader. Detta förhindrar den breda tillämpningen av denna teknik för studiet av neurologiska sjukdomar. För att övervinna några av dessa frågor har vi utvecklat en metod för att härleda neurala stamceller direkt från vuxen människa perifert blod, förbi härledningen processen iPSC. Hematopoetiska progenitorceller anrikade från vuxen människa perifert blod odlades in vitro och transfekterades med Sendai virusvektorer innehållande transkriptionfaktorer Sox2, Oct4/3, Klf4, och c-Myc. Transfektionen resulterar i morfologiska förändringar i cellerna som ytterligare selekteras genom användning av humana neurala progenitorceller medium innehållande basisk fibroblasttillväxtfaktor (bFGF) och vaskulär endotelial tillväxtfaktor (VEGF). De resulterande cellerna kännetecknas av uttrycket för neurala stamcellsmarkörer, såsom nestin och Sox2. Dessa neurala stamceller skulle kunna ytterligare differentieras till neuroner, astroglia och oligodendrocyter i specificerade differentieringsmedia. Använda lättillgängliga humana perifera blodprover, kunde denna metod användas för att härleda neurala stamceller för ytterligare differentiering till neurala celler för in vitro modellering av neurologiska sjukdomar och kan avancera studier relaterade till patogenesen och behandling av dessa sjukdomar.

Introduction

In vitro neuronala kulturer har använts som ett grundläggande verktyg för studier av neurologiska sjukdomar. Primär djur (mestadels gnagare) neurala kulturer 1, 2 och mänskliga neurala cellinjer härledda från gliom eller andra tumörer är den vanligaste i sådana studier. Det har dock varit känt att det finns betydande skillnader mellan gnagare och mänskliga celler. Många fynd baserade på gnagare kan inte översättas till människor. Dessutom med den snabba utvecklingen inom analysera mass genetisk information och relativt lätt genen redigering och hela genomet sekvense är trenden mer och mer inriktad på att upptäcka sjukdomsbenägna gener och avgränsar deras funktioner och roller i specifika sjukdomar, vilket gör de få mänskliga neuronala cellinjer har endast begränsad användning. Teoretiskt humana primära neurala kulturer härledda från prover av patientens nervsystem är det bästa valet, men de är omöjligt att få; därmed alternativa methODS är nödvändiga. Under senare år har vissa metoder bedrivits, med två är det mest urskiljbara. Efter utvecklingen av tekniken med generera inducerade pluripotenta stamceller (IPSC) med musen och mänskliga somatiska celler 3, 4, kan neurala celler ytterligare differentierad från dem 5-7. Men generera och karaktärisera iPSC kräver intensiv arbetskraft, tekniker, och tidsinmatning, ibland till och med oöverkomligt. Strax efter, en annan metod utvecklats för att direkt omvandla neuronala celler från somatiska celler 8, 9. Eftersom de resulterande neuroner är icke-proliferativa, men det begränsar dess tillämpning i intensiva studier och läkemedelsscreening, vilket kräver en stor mängd celler. För att ta fördelarna av båda teknikerna, direkt härledning av neurala stam / progenitorceller från somatiska celler har undersökts av flera grupper 10-12, vilket kringgår tråkiga processen med iPSC generering och karakterisering men fortfarande bestämdes ett anständigt antal neurala stamceller för senare neurala differentiering. Vi har tidigare visat att efter införandet av de Yamanaka transkriptionsfaktorer in i hematopoetiska progenitorceller, neurala stamceller kan genereras direkt med hjälp av en neural progenitorcell välja mediet 13. Här rapporterar vi metoden i detalj.

Protocol

1. Anrikning av hematopoetiska progenitorceller från Adult helblod NOT: hematopoetiska progenitorceller eller CD34 + celler kan renas från perifera mononukleära blodceller (PBMC) härledda från en mängd olika källor inklusive navelsträngsblod, leukaferes material och helblod med användning av densitetsgradientcentrifugering baserade metoder. Den metod som anges här använder helblod som ett exempel. Isolering av PBMC från helblod: Lägg 4,5 ml lymfocytseparation…

Representative Results

Kvaliteten på CD34-celler är kritisk för framgången med neural stamcell transduktion. Högkvalitativa CD34 celler föröka under de första dagarna av kultur och visas som icke vidhäftande, homogent runda celler, flyter strax ovanför botten av odlingskärl (Figur 1A). De framgångsrika infektion leder cellaggregat, som expanderar över tid (Figur 1B), medan icke specifika cellaggregat kan förekomma under cellodling, som expanderar och de associationer är lösa. Vidhäftand…

Discussion

En detaljerad protokoll för att direkt generera neurala stamceller från perifera hematopoetiska progenitorceller tillhandahålls.

Jämfört med fibroblastceller, är mer tillgänglig humant perifert blod. Använda presenterade protokollet, mer än 1 x 10 5 hematopoietiska progenitorceller, eller CD34-positiva celler, kan anrikas från 10 ml helblod. Även förorening med trombocyter är oftast inte förebyggas, kan det vara lätt minskas med lägre hastighet centrifugering och d…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors have no conflicts of interest to disclose.

Materials

Material List
Name Company Catalog Number Comments
Lymphocyte Separation Medium Lonza 17-829E 1 X
SepMate Stemcell Technologies 15415 15 mL
Human Serum Invitrogen 34005-100
Antibiotics Gibco 15240-062 1%
CD34 MultiSort Kit Miltenyi Biotec 130-056-701
EDTA Cellgro 46-034-Cl  2mM
MACS LS Column Miltenyi Biotec 130-042-401
StemSpan SFEM Medium Stemcell Technologies 9650 1X
IMDM Quality Biologicals 112-035-101 1X
TPO Peprotech 300-18 100 ng/mL
Flt-3 Peprotech 300-19 100 ng/mL
SCF Peprotech 300-07 100 ng/mL
IL-6 Peprotech 200-06 20 ng/mL
IL-7  Peprotech 200-07 20 ng/mL
IPS Sendai Reprogramming Kit Life technologies A1378001
Cell scraper Sarstedt 83.183
DMSO Sigma D2650
CryoTube vials Thermo 368632
Mr. Frosty container Thermo 5100-0001
DMEM/F12 Life technologies 12400-024 1X
N2 supplement Life technologies 17502-048 1X
Bovine serum albumin Sigma A2934 0.1% (w/v)
bFGF Peprotech 100-18B 20 ng/ml
EGF Peprotech AF-100-15
B27 supplement Life technologies 17504-044 1X
NSC serum free medium Life Technologies A1050901 1X
Poly-D-lysine/laminin coated cover slips BD Bioscences 354087
cAMP Sigma A9501 300 ng/ml
Vitamin C Sigma A0278 0.2 mM
BDNF Peprotech 450-02 10 ng/ml
GDNF Peprotech 450-10 10 ng/ml
Poly-L-Ornithine Sigma P4957 1X
PDGF-AA Peprotech 100-13A 10 ng/ml
NT-3 Peprotech 450-03 2 ng/ml
Shh Peprotech 1314-SH/CF 2 ng/ml
T3 Sigma T6397 3 nM
PFA Sigma P6148 4%
PBS Quality Biological 119-069-101 1X
Goat serum Sigma G9023 4%
TritonX-100 Sigma T9284
Mouse monoclonal anti-Nestin Millipore AB5922 1:1000 dilution
Anti-SOX2  antibody Applied Stemcell ASA0120 Ready to use
Mouse anti-βIII-tubulin antibody Promega G712A 1:1000 dilution
Rabbit anti-GFAP antibody Sigma G4546 1:100 dilution
Anti-O4 antibody R&D Systems MAB1326 IgM; 1 ng/ml
Alexa Fluor 594 goat anti-rabbit antibody Life techniologies A11012 1:400 dilution
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse antibody Life techniologies A11001 1:400 dilution
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgM antibody Life techniologies A21042 1:250 dilution
DAPI Sigma D9542 1 ug/ml

References

  1. Azari, H., et al. Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny. PLoS ONE. 6, e20941 (2011).
  2. Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. The neuroblast assay: an assay for the generation and enrichment of neuronal progenitor cells from differentiating neural stem cell progeny using flow cytometry. J Vis Exp. (62), (2012).
  3. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  4. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  5. Zhang, N., An, M. C., Montoro, D., Ellerby, L. M. Characterization of Human Huntington’s Disease Cell Model from Induced Pluripotent Stem Cells. PLoSCurr. 2, RRN1193 (2010).
  6. Park, I. H., et al. Disease-Specific Induced Pluripotent Stem Cells. Cell. 134 (5), 877-886 (2008).
  7. Song, B., et al. Neural differentiation of patient specific iPS cells as a novel approach to study the pathophysiology of multiple sclerosis. Stem Cell Research. 8 (2), 259-273 (2012).
  8. Vierbuchen, T., et al. Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors. Nature. 463 (7284), 1035-1041 (2010).
  9. Pfisterer, U., et al. Direct conversion of human fibroblasts to dopaminergic neurons. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 10343-10348 (2011).
  10. Lee, S. -. T., et al. Direct Generation of Neurosphere-Like Cells from Human Dermal Fibroblasts. PLoS ONE. 6, e21801 (2011).
  11. Thier, M., et al. Direct Conversion of Fibroblasts into Stably Expandable Neural Stem Cells. Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).
  12. Lujan, E., Chanda, S., Ahlenius, H., Südhof, T. C., Wernig, M. Direct conversion of mouse fibroblasts to self-renewing, tripotent neural precursor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109, 2527-2532 (2012).
  13. Wang, T., et al. Derivation of neural stem cells from human adult peripheral CD34+ cells for an autologous model of neuroinflammation. PLoS ONE. 8, e81720 (2013).
  14. Jin, C. H., et al. Recombinant Sendai virus provides a highly efficient gene transfer into human cord blood-derived hematopoietic stem cells. Gene Ther. 10 (3), 272-277 (2003).
  15. Ban, H., et al. Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 14234-14239 (2011).
  16. Goolsby, J., et al. Hematopoietic progenitors express neural genes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 100, 14926-14931 (2003).
check_url/fr/52298?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wang, T., Choi, E., Monaco, M. C. G., Major, E. O., Medynets, M., Nath, A. Direct Induction of Human Neural Stem Cells from Peripheral Blood Hematopoietic Progenitor Cells. J. Vis. Exp. (95), e52298, doi:10.3791/52298 (2015).

View Video