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Article de méthode

Imagerie Montant du

7.8K vues

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DOI :

10.3791/52636

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13 mars 2015

 , 

Dans cet article

Résumé

La méthode d’imagerie verticale décrite dans ce protocole permet de visualiser en détail les pôles d’un œuf de Drosophila melanogaster en développement. Cette vue d’ensemble offre une nouvelle perspective sur les arrangements et les morphologies de plusieurs types de cellules dans l’épithélium folliculaire.

Résumé

L’ovogenèse de Drosophila melanogaster offre un contexte idéal pour l’étude de divers processus de développement, car l’ovaire est d’architecture relativement simple, bien caractérisé et se prête à l’analyse génétique. Chaque chambre d’ovule est constituée de cellules germinales entourées d’une seule couche épithéliale de cellules folliculaires somatiques. Des sous-ensembles de cellules folliculaires subissent une différenciation au cours d’étapes spécifiques pour devenir plusieurs types de cellules différents. Les techniques standard permettent principalement une vue latérale des chambres d’ovules, et donc une vue limitée de l’organisation et de l’identité des cellules folliculaires. Le protocole d’imagerie verticale décrit une technique de montage qui permet une nouvelle vue verticale des chambres d’œufs avec un microscope confocal standard. Les échantillons sont d’abord montés entre deux couches de gelée de glycérine en position latérale (horizontale) sur une lame de microscope en verre. La gelée avec des chambres d’œufs enfermées est ensuite coupée en blocs, transférée sur une lamelle et retournée pour positionner les chambres d’œufs à la verticale. Les chambres d’œufs montées peuvent être imagées à l’aide d’un microscope confocal vertical ou inversé. Cette technique permet d’étudier la spécification, l’organisation, les marqueurs moléculaires et le développement des ovules avec de nouveaux détails et sous un nouvel angle.

Introduction

Etude de Drosophila melanogaster a fourni de grandes connaissances dans la régulation génétique d'un large éventail de phénomènes. En particulier, il ya eu des recherches approfondies sur le développement des œufs, parce oogenèse fournit un moyen souple pour enquêter sur de nombreux processus de développement différents, y compris les motifs des tissus, des changements de polarité cellulaire, la commutation du cycle cellulaire, et la réglementation de translation 1,2,3,4. Un événement important au cours de l'ovogenèse morphogénétique est la spécification, l'acquisition de la motilité et la migration d'un ensemble de cellules appelé....

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Protocole

1. Dissection de ovarioles

  1. Transférer environ quinze 2-4 jours d'âge mouches femelles et quelques hommes d'une mouche des aliments frais flacon avec de la levure sèche active ajoutée. Utilisez le coton comme une prise pour les flacons, et ajouter quelques gouttes d'eau au coton pour maintenir l'humidité élevée.
  2. Lieu flacon dans un incubateur à 25 ° pour 14-16 h pour maximiser le nombre de l'étape 8-10 chambres d'œufs.
    NOTE: Le temps d'incubation varie selon la température et stade désiré.
  3. Préparer les médias de dissection, 0,1 M KPO 4 et NP40 solutions au besoin pour le lendemain (voir Matér....

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Résultats

La méthode d'imagerie verticale nous a permis de voir directement l'organisation des cellules de l'épithélium folliculaire antérieure à l'étape 8. Un marqueur général pour le destin des cellules du follicule, l'Absent Eyes (EYA) protéine, ainsi que le marqueur d'ADN nucléaire DAPI, a montré même l'expression à travers ce champ de cellules, et ont montré que toutes les cellules ont pu être observés avec des intensités de coloration similaires (figure 2B "). Les protéines .......

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Discussion

Nous décrivons ici une méthode pour monter et petite image, développer chambres d'œufs dans une perspective de fin sur. Techniques communes pour les chambres imagerie d'œufs sont optimisés pour des vues latérales et permettent principalement la visualisation précise des cellules folliculaires médio-latérale lorsqu'ils sont colorés avec des anticorps fluorescents. L'utilisation de piles ou Z-3-D reconstitutions aides à la visualisation de plusieurs plans focaux, mais est encore insuffisante pour la résolu.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Nous apprécions l’aide des membres de la communauté des mouches, en particulier le Dr Denise Montell, le Dr Lynn Cooley et le Dr Pernille Rorth, pour les réactifs. Nous remercions Flybase, le Bloomington Drosophila Stock Center et la Developmental Studies Hybridoma Bank pour les informations et la fourniture de stocks de mouches et d’anticorps, respectivement. LM est soutenu par la bourse de formation du ministère de l’Éducation, la bourse de formation GAANN (Graduate Assistance in the Areas of National Need) (P200A120017) et par une subvention de l’initiative NIGMS pour maximiser le développement des étudiants (2 R25-GM55036). Une partie du travail de microscopie a....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
0,1 M Tampon phosphate de potassium (KPO4 Buffer)Ajouter 3,1 g de NaH2PO4&bull ; H2O et 10,9 g de Na2HPO4 (anhydre) à H2O distillé pour obtenir un volume de 1 L. Le pH de la solution finale sera de 7,4. Ce tampon peut être stocké jusqu’à 1 mois à 4 °C.
Solution aqueuse de paraformaldéhyde à 16 %,microscopie électronique de15710sans méthanol pour préserver la fluorescence GFP
Aiguille 30G x 1/2 pouce  ;VWRBD305106Biseau régulier
Levure sèche activeGenesee Scientific62-103Pour engraisser les mouches femelles
Albumine sérique bovine Entreprisede culture cellulairePAA A15-701Utilisé dans NP40 Tampon de lavage
Dumont #5 ForcepsFine Science Tools11295-10Alliage Dumostar, pointe de biologie ; les pointes acérées sont essentielles pour la dissection de l’ovariole
DAPI (dichlorhydrate de 4&prime ;,6-diamidino-2-phénylindole)Sigma AldrichD95425 mg/ml solution mère  ;   ;
Sérum fœtal bovin (FBS)Life Technologies16140-071Ajouté au supplément moyen de dissection (10 %)  ;
Tube de culture en verreVWR47729-57614 ml
Lames de dépression en verreVWR470019-0201,2 mm d’épaisseur, double cavité
Gelée de glycérine  ;Microsocpy électronique Sciences17998-10Média de montage
GlycérolIBI ScientificIB1576070 % en PBS
IGEPAL CA-630Sigma AldrichI3021-500ML(interchangeable pour Nonidet P-40)  ; Utilisé dans le tampon de lavage NP40  ;
Stéréoscope fluorescent Leica  ;Leica Microsystems
Microscope confocal Leica SP5Leica Microsystems40x/0.55NA.
Micro spatule  ;VWR82027-518 Lame deen acier inoxydable
VWR16004-36875x25x1 mm
NP40 Tampon50 mM TRIS-HCl, 150 mM NaCl, 0,5 % Ipegal, 1 mg/ml BSA et 0,02 % d’azoture de sodium
Pénicilline-Streptomycine-GlutamineLife Technologies10378-016Ajouté au complément milieu de dissection (0.6X)
Pétridis- Polystérine, stérileVWR82050-54860 W x 15 H mm
Tampon de phosphate salinSigma AldrichP3813-10PAK10 paquets de
poudre de phosphate de potassium dibasiqueSigma AldrichP3786-500GUtilisé dans 0,1 M KPO4 Buffer  ;
Phosphate de potassium monobasiqueSigma AldrichP9791-500GUtilisé dans 0,1 M KPO4 Buffer  ;
[en-tête]
Schneider' s Insect MediumLife Technologies
11720018
Avec de la L-glutamine et
du bicarbonate de sodium Azoture de sodiumSigma AldrichS2002-25GUtilisé dans la coloration par anticorps fluorescents
Chlorurede sodium Sigma AldrichS3014-500GUtilisé dans le tampon de lavage NP40
TRIS-HClIBI ScientificIB701441 M TRIS-HCl, pH 7,4
Volocité Image 3D Logiciel d’analysePerkinElmerPour le traitement des piles Z confocales
qualité EM Sciences Objectif sec microscope de lavage

Références

  1. Hudson, A. M., Cooley, L. Methods for studying oogenesis. Methods. 68 (1), 207-217 (2014).
  2. Bastock, R., St Johnston, D. Drosophila oogenesis. Curr Biol. 18 (23), R1082-R1087 (2008).
  3. Wu, X., Tanwar, P. S., Raftery, L. A.

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Réimpressions et autorisations

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