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Article de méthode

Sélection de la taille Gel automatisé pour améliorer la qualité des bibliothèques de séquençage de prochaine génération Préparé à partir d'échantillons d'eau de l'environnement

10.1K vues

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DOI :

10.3791/52685

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17 avril 2015

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Dans cet article

Résumé

Ce manuscrit décrit une approche automatisée de sélection de la taille du gel pour purifier les fragments d’ADN pour le séquençage de nouvelle génération. La technologie Ranger permet une automatisation complète de l’ensemble du processus de chargement de gel d’agarose, d’analyse électrophorétique et de récupération de fragments d’ADN ciblés, ce qui permet d’obtenir des bibliothèques de séquençage de nouvelle génération à haut débit et de haute qualité.

Résumé

Le séquençage de nouvelle génération des échantillons environnementaux peut s’avérer difficile en raison de la quantité et de la qualité variables de l’ADN dans ces échantillons. Des banques d’ADN de haute qualité sont nécessaires pour obtenir des résultats optimaux du séquençage de nouvelle génération. Les échantillons environnementaux tels que l’eau peuvent avoir une mauvaise qualité et des quantités d’ADN médiocres, ainsi que des contaminants qui coprécipitent avec l’ADN. Les processus mécaniques et enzymatiques impliqués dans l’extraction et la préparation des banques peuvent endommager davantage l’ADN. La sélection de la taille du gel permet la purification et la récupération de fragments d’ADN d’une taille définie pour les applications de séquençage. Néanmoins, cette tâche est l’une des étapes les plus chronophages du flux de travail de préparation des banques d’ADN. Le protocole décrit ici permet l’automatisation complète du chargement de gel d’agarose, de l’analyse électrophorétique et de la récupération de fragments d’ADN ciblés.

Dans cette étude, nous décrivons une approche à haut débit pour préparer des banques d’ADN de haute qualité à partir d’échantillons d’eau douce qui peuvent également être appliqués à d’autres échantillons environnementaux. Nous avons utilisé une approche indirecte pour concentrer des cellules bactériennes à partir d’échantillons environnementaux d’eau douce ; L’ADN a été extrait à l’aide d’un kit d’extraction d’ADN disponible dans le commerce, et les banques d’ADN ont été préparées à l’aide d’un protocole commercial basé sur des transposons. Des fragments d’ADN de 500 à 800 pb ont été sélectionnés en taille de gel à l’aide de la technologie Ranger, une station de travail d’électrophorèse automatisée. Le séquençage des banques d’ADN sélectionnées en fonction de la taille a démontré des améliorations significatives de la longueur de lecture et de la qualité des lectures de séquençage.

Introduction

La métagénomique implique le séquençage de tout le matériel génétique d’un échantillon pour caractériser les communautés microbiennes présentes. Il s’agit d’un processus complexe et coûteux qui implique la conversion des acides nucléiques extraits en banques d’ADN, suivie d’un séquençage de nouvelle génération. Des bibliothèques de haute qualité sont essentielles pour une sortie de données maximale et une analyse métagénomique précise. Les échantillons environnementaux, tels que les échantillons d’eau, posent souvent des défis importants pour générer des banques de haute qualité, en raison de faibles quantités d’ADN qui peuvent également être dégradés1-3 et....

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Protocole

1. Collecte de l'eau et de filtration

  1. Prélever des échantillons d'eau douce provenant de divers sites (figure 1). Faire passer les échantillons à travers une série de filtres: 1 um filtre, filtre de 0,2 um, et le filtre à écoulement tangentiel 30 kDa de coupure systématiquement eucaryote séparé, des particules virales et bactériennes de taille, respectivement.
    Note: Seule la purification et l'analyse des matériaux récupérés sur les 0,2 um filtres (bactéries vivant en liberté) est décrite dans le présent rapport, mais des approches similaires peut être utilisé pour les autres particules récupérées sur les filtres.

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Résultats

Concentration d'ADN, et de l'évaluation de la qualité

Les concentrations d'ADN bactériens ont varié de 0,01 à 0,11 ng ​​/ ml pour l'échantillon d'eau des différents sites de partage des eaux (tableau 1). ADN isolé de la fraction bactérienne avait un 260/280 et 260/230 A ratios de 01.04 à 01.08 et de 0,3 à 1,6, respectivement. Bien que certains des rapports A 260/230 ont été relativement faible, aucune inhi.......

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Discussion

La présence de dimères de l'adaptateur et le regroupement des petites tailles d'insert étant préférentiellement séquencés dans les plateformes actuelles représentent une diminution des rendements et utilisables sous-utilisation de la capacité de l'équipement 15. L'utilisation de méthodes de battage de perles combinées avec une approche à base de transposons pour préparer bibliothèques peut entraîner plus d'ADN cisaillement par rapport à d'autres méthodes d'extraction 4,5.

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Déclarations de divulgation

Jared R. Slobodan et Matthew J. Nesbitt deux détiennent des actions de Coastal Genomics, une société privée Colombie-Britannique offrant la technologie Ranger.

Remerciements

Ce travail a été financé par Genome BC, Genome Canada et Coastal Genomics. Les auteurs remercient Kirby Cronin et Michael Chan pour leur aide dans la collecte et le traitement des échantillons. Nous tenons également à remercier Thea Van Rossum et la Dre Fiona Brinkman pour leur aide en bioinformatique.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Pompe péristaltique Masterflex P/S 1400 SeriesThermo Scientific  ;1400-1620
0,2 et micro ; m Supor MembraneVWRCA28143-969Pall Corporation, Ann Harbor, MI
Billes de carbure de tungstène 3 mm (200)Qiagen69997
Alcool isopropylique 70 %Jedmon Products825751Healthcare Plus
DNA awayVWR7010Molecular BioProducts, Inc. San Diego, CA
Système de purification d’eau Milli-QFisher ScientificZMQS6VF0YMerck Millipore. Ce système a été abandonné.
20x PBS pH 7.5VWRE703-1LAmresco, Inc., Solon, OH
Tween 20Fisher ScientificBP337-100Fisher chemicals
Adaptateur Vortex pour 2 (50  ; ml) tubesVWR13000-V1-50MoBio, Carlsbad, CA
Vortex-Genie 2, 120  ; V (Modèle G560)VWRSI-0236Scientific Industries, Inc.
Beckman CentrifugeRaeyco Lab Equipment Systems Management LtdModèle J-6B
PowerLyzer Powersoil Kit d’isolement d’ADNVWR12855-100MoBio, Carlsbad, CA
Adaptateur Vortex pour 24 tubes (1,5-2 ml)VWR13000-V1-24MoBio, Carlsbad, CA
Centrifugeuse Microfuge 18Beckman Coulter367160
Nimbus Select workstation avec Ranger TechnologyHamilton Robotics92720-01Comprend le poste de travail de manipulation des liquides et le Ranger Tech intégré (matériel d’électrophorèse)
Kit de réactifsRanger Coastal GenomicsCG-10600-150-12-21Comprend un tampon de chargement et des cassettes
Alcool éthylique (anhydre)Alcools commerciauxP016EAANÉthanol Greenfield
Acétate de sodiumSigma-AldrichS2889-250G
Acrylamide linéaire (5  ; mg/ml)Life TechnologiesAM9520Ambion
Eppendorf centrifugeuse réfrigéréeRaeyco Lab Equipment Systems Management Ltd.5417R
Tampon EB (250 ml)Qiagen19086
NanoDrop 1000 SpectrophotomètreThermo ScientificND-1000
Qubit FluorimètreLife TechnologiesQ32857Invitrogen. Ce produit n’est plus fabriqué.
Kit de dosage Qubit dsDNA HSLife TechnologiesQ32854Invitrogen
Réactif d’ADN haute sensibilitéAgilent Technologies5067-4626
Puces d’ADN haute sensibilitéAgilent Technologies5067-4626
Agilent 2011 BioanalyseurAgilent TechnologiesG2938B
Nextera XT Kit de préparation d’échantillons d’ADNIlluminaFC-131-1024
Nextera XT kit d’indexIlluminaFC-131-1001
Kit de réactifs MiSeq v2 (500 cycles)IlluminaMS-102-2003
Système MiseqIlluminaSY-410-1003

Références

  1. Siuda, W., Chrost, R. J. Concentration and susceptibility of dissolved DNA for enzyme degradation in lake water - some methodological remarks. Aquatic Microbial Ecology. 21, 195-201 (2000).
  2. Butler, J. M., Hill, C. R. Scientific Issues with Analysis of Low Amounts of DNA. , Available from:

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Réimpressions et autorisations

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