Summary

Karakterisering av Thymus- Bosetting stamfedre i Mouse Embryo hjelp<em> I Vivo</em> Og<em> In Vitro</em> Analyser

Published: June 09, 2015
doi:

Summary

This article describes in vivo and in vitro methodology to characterize the thymic settling progenitors by the analysis of the kinetics of generation, phenotype and numbers of their T cell progeny.

Abstract

Karakteriserer tymiske bosetting stamfedre er viktig å forstå de pre-thymic stadier av T-celle utvikling, avgjørende for å utarbeide strategier for T-celle utskifting i lymphopenic pasienter. Vi studerte tymisk settling progenitorer fra murine embryoniske dag 13 og 18 thymus ved to komplementære in vitro og in vivo teknikker, begge basert på "hengende dråpe" -metoden. Denne metoden tillot kolon bestrålte foster tymiske lapper med E13 og / eller E18 tymiske progenitors preget av CD45 allotypic markører og dermed følge deres avkom. Kolonisering med blandede bestander lar analysere cellestyrte forskjeller i biologiske egenskapene til forfedrene mens kolonisering med enten befolkningen fjerner mulige konkurranse selektive press. De koloniserte tymiske fliker kan også bli podet på immunsvikt hann resipientmus tillater analyse av modne T-celle-avkom in vivo, slik som populasjonsdynamikk tHan perifere immunsystemet og kolonisering av forskjellige vev og organer. Foster tymiske organkulturer viste at E13 forfedre utviklet seg raskt til alle modne CD3 + celler og ga opphav til den kanoniske γδ T-celle undergruppe, kjent som dendrittiske epitelceller T-celler. Til sammenligning E18 stamceller er en forsinket differensiering og var ikke i stand til å generere dendrittiske epithelial T-celler. Overvåkingen av perifert blod fra thymus-podet CD3 – / – mus viste videre at E18 tymisk avsetnings progenitorceller generere, med tiden, større antall modne T-celler enn sine motstykker E13, en funksjon som ikke kunne bli verdsatt på kort sikt fetal tymisk orgel kulturer.

Introduction

T-lymfocytter, bærer αβ eller γδ T-celle reseptor (TcR), skille i et spesialisert organ, thymus. Det fullt utviklet thymus er organisert i to forskjellige regioner: cortex, der thymic forfedre utvikle og hvor tymocytter at produktivt omorganisere TCR β og α kjede gener blir reddet fra programmert død (en prosess som kalles positiv seleksjon); og medulla, hvor valgt thymocyttene med for sterk reaktivitet til selv ligander slettes (negativ seleksjon) 1,2. Thymus stammer fra endodermal laget av det tredje faryngeale posen som senere omgitt av mesenchymale celler 3. Det er kolonisert av blodkreft stamceller som starter på embryonale dag E12, og deretter blir kontinuerlig rekruttering nødvendig for normal T celle utvikling 4. Tymiske innvandrere utvikle seg gjennom suksessive utviklingsstadier, orkestrert av et tett regulert program, initiert og maintained ved aktivering av Notch signalveien på thymocytter ved interaksjon med dets ligand, delta som 4, uttrykt på tymiske epitel-celler (TECS) 5.

Thymocytt utvikling starter på den såkalte CD4 CD8 double negative (DN) stadier. DN thymocyttene kan videre deles i henhold til uttrykk av CD25 og CD44 inn DN1 (CD25 CD44 +), DN2 (CD25 + CD44 +), DN3 (CD25 + CD44 -) og DN4 (CD25 CD44 -). CD24 (HSA) og CD117 (c-Kit) subdivides videre DN1 rommet i fem undergrupper hvor DN1a og b tilsvarer tidlige tymiske stamfedre (ETP). Thymocyttene omorganisere TCR δ, β og α kjedene på DN scenen og gjennomgå forhånds TcR utvalg (DN3-DN4 etapper). De videre transitt til CD4 + CD8 + dobbel positive (DP) rommet der TcR α-kjeden ordner før positive og negative seleDette skjer. På dette stadiet fleste thymocytter elimineres, og bare en liten prosentandel (3-5%) når CD4 + eller CD8 + T-celle modne rommet.

Lymfoid differensiering pathway skrider gjennom stadier av HSCs som genererer multipotente stamceller (MPP) og lymfoid-primet multipotente stamceller (LMPP) som mistet erytrocytt og megakaryocytt potensial 6. LMPP er definert fenotypisk ved fravær av differensierte blodcellemarkører (avstamning negativ, Lin -), ekspresjon av c-kit (CD117) SCA-1 og Flt3 / Flk2 (CD135) og fravær av påvisbare nivåer av interleukin ( IL) -7-reseptor α kjede (IL-7rα eller CD127). LMPPs ytterligere differensiere til felles lymfoide stamfedre (CLP) 7 som på det stadiet har mistet evnen til å generere myeloide celler. CLP beholder lymfocytt (B og T-celle), NK-celle, DC og medfødt lymfoid celle (ILC) potensial, og skiller seg fra LMPP ved ekspresjon av CD127 og fraværet av høye nivåer av Sca-1.

Selv om arten av de thymus-settling progenitorceller (TSP) har blitt grundig diskutert 8, ble det nylig klart at TSP forandring fenotype, differensiering potensial og funksjon, hele utviklingen 9. Vi har utført in vitro og in vivo, for å karakterisere TSP, isolert ved hjelp av FACS-cellesortering enten fra E13 (første bølge) eller E18 (andre bølge). Foster tymiske organkulturer (FTOC) med bestrålte tymiske lapper kolonisert av like mange E13 og E18 stamfedre, som bærer ulike allotypic markører, tillatt etter deres avkom i en lignende oppvekstmiljø og avslørt celle iboende egenskaper, ulike mellom begge typer stamfedre. Tymiske fliker kolonisert av enten E13 eller E18 TSP lov utvikling uten valg på grunn av konkurranse mellom begge stamfedre. In vivo transplantasjon av de koloniserte thymic fliker videre viste at også than moden avkom av E13 og E18 TSP har ulike biologiske egenskaper in vivo. TSP-ene fra den første bølgen raskt generere T-celler, men gir opphav til lavt antall αβ og γδ T-celler. Blant de sistnevnte vi har oppdaget Vγ5Vδ1 dendrittiske epitelceller T-celler (DETC), som har en invariant TcR, migrere til epidermis der de utøver en funksjon i sårheling og er kun produsert under embryonal utvikling 10. I kontrast, TSP fra den andre bølgen tar lengre tid for å generere et høyt antall TcR + T-celler og er ikke i stand til å generere DETC.

Protocol

Etikk uttalelse: alle forsøkene ble utført i henhold til Pasteur Institute Ethic Charter, godkjent av det franske landbruksdepartementet, og til EUs retningslinjer. En manipulator med trening på liten gnager kirurgi, sertifisert av den franske Landbruksdepartementet, utfører alle kirurgiske inngrep. MERK: Se vedlegg Tabell 1 viser 5-trinns plan prosedyre. 1. Valg av embryoene Bruk 36 C57BL / 6 CD45.2 kvinner, 12 hunner CD45.1, 12 C57BL / 6 CD45.1 hanner…

Representative Results

For å velge en metode for å utarme tymiske fliker av endogene tymocytter slik at den beste utviklingen av koloniserende stamfedre, vi sammenlignet nivåene av T-celle tilberedning i thymic lapper koloniserte etter bestråling eller en 5-dagers deoksv-guanosin (d-Gua) behandling. Resultatene viser at mens det er ingen forskjell på dag 9 av kultur, bestrålt fliker inneholdt flere T-celler enn de som ble behandlet med d-Gua, på dag 12. Dermed er bestråling mer hensiktsmessig enn d-Gua behandling for å få T-celle ut…

Discussion

To hoved analyser kan anvendes for å analysere T-celledifferensiering ex vivo. Den mest rapporterte nylig er co-kulturen i hematopoetiske stamceller med BM stromaceller, OP9, uttrykker ligander av Noth1, delta som en eller fire 12. Dette er 2-D-analysen enkel å utføre, svært effektiv og følsom, slik analyse på celle-nivå. Men støtter det verken T-celle utvikling utover scenen av DP eller generering av γδ DETC 13, som begge krever direkte samhandling med thymic epitel.

<p clas…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Støttet av Pasteur Institute, INSERM, Agence Nationale de Recherche ANR (Grant 'Lymphopoiesis'), REVIVE Future Investment Program og "La Ligue contre le Cancer".

Materials

90 x 15 mm and 35 x 15 mm plastic tissue culture petri dishes. TPP T93100/T9340 Sampling
26GA 3/8 IN 0.45x10mm syringes with needles Beckton-Dickinson Plastipak. BD Plastipak 300015 Cell suspension
Nylon mesh bolting cloth sterilized 50/50 mm pieces. SEFAR NITEX 03-100/32 Filtration of cells
Ethanol 70%. VWR 83801.36 Sterility Actions
Iodide Povidone 10% (Betadine)  MEDA Pharma 314997.8 Sterility Actions
Ketamine 100mg/ml (stock solution) MERIAL  - Anesthesic
Xylazine 100mg/ml in PBS (stock solution) Sigma X1251-1G Anesthesic and muscle relaxant
Buprenorphin 0.3mg/ml stock solution AXIENCE  - Morphinic analgesic
Ophtalmic gel (0.2% cyclosporin) Schering-Plough Animal Health  - Eyes protection
DPBS (+ CaCl2, MgCl2) GIBCO Life Technology 14040-174 to isolate embryos
HBSS Hanks' Balanced Salt Solution (+ CaCl2, MgCl2) GIBCO Life Technology 24020-091 to wash out the blood and dissect the embryos
OPTI-MEM I GlutaMAX I GIBCO Life Technology 51985-026 Medium for cultures
Fœtal Calf serum EUROBIO CVFSVF00-0U additive for cultures
Penicilin and Streptomycin GIBCO Life Technology 15640-055 Antibiotics for cultures
2 b mercapto ethanol GIBCO Life Technology 31350010 additive for cultures
LEICA MZ6 Dissection microscope LEICA MZ6 10445111 Occular W-Pl10x/23
Cold lamp source SCHOTT VWR KL1500 compact Two goose neck fibers adapted
Silicone elastomer World Precision Instruments SYLG184 Dissecting Pad
Spoon, round and perforated Fine Science Tools 10370-18 Dissection tools
Fine Iris Scissors Fine Science Tools 14090-09 Dissection tools
Vannas spring Scissors Fine Science Tools 15018-10 Dissection tools
Forceps : Dumont #5/45 Inox 11 cm F.S.T. 11253-25 Dissection tools
Two pairs of fine straight watchmakers’ forceps Dumont #5 11 cm fine tips. Fine Science Tools 11295-20 Dissection tools
Polyamid thread with needle 6-0   C-3 3/8c ETHICON F2403 for sutures
Needle-holder MORIA/F.S.T. 12060-02 for sutures
Heating pad VWR 100229-100 To maintain mouse temperature during anesthesy
Membrane Isopore RTTPO2500 DUTSCHER 44210 For FTOC
Terasaki 60 wells plates FISHER 1×270 10318801 For hanging drop technique
Gauze swabs steriles 7.5cmx7.5cm Hydrex 11522 To apply disinfecting solution
Fluorescence or biotin labelled antibodies BD Biosciences, Biolegend or e-Biocsiences  Clone Number see table below Staining cells
MACS Columns/Streptavidin Microbeads  Miltenyi Biotec 130-042-401/130-048-101 Cell depletion 
Mice Charles Rivers Laboratories (CD45.1) and Janvier Labs  (CD45.2) C57BL/6 CD45.1 OR CD45.2 Source of cells and thymic lobes 
Mice CDTA Orléans, France CD 3 epsilon Ko CD45.2  Grafting experiment

References

  1. Rodewald, H. R. Thymus organogenesis. Annu Rev Immunol. 26, 355-388 (2008).
  2. Takahama, Y. Journey through the thymus: stromal guides for T-cell development and selection. Nat Rev Immunol. 6, 127-135 (2006).
  3. Anderson, G., Jenkinson, E. J., Moore, N. C., Owen, J. J. MHC class II-positive epithelium and mesenchyme cells are both required for T-cell development in the thymus. Nature. 362, 70-73 (1993).
  4. Douagi, I., Andre, I., Ferraz, J. C., Cumano, A. Characterization of T cell precursor activity in the murine fetal thymus: evidence for an input of T cell precursors between days 12 and 14 of gestation. Eur J Immunol. 30, 2201-2210 (2000).
  5. Calderon, L., Boehm, T. Synergistic, context-dependent, and hierarchical functions of epithelial components in thymic microenvironments. Cell. 149, 159-172 (2012).
  6. Adolfsson, J., et al. Identification of Flt3+ lympho-myeloid stem cells lacking erythro-megakaryocytic potential a revised road map for adult blood lineage commitment. Cell. 121, 295-306 (2005).
  7. Kondo, M., Weissman, I. L., Akashi, K. Identification of clonogenic common lymphoid progenitors in mouse bone marrow. Cell. 91, 661-672 (1997).
  8. Bhandoola, A., von Boehmer, H., Petrie, H. T., Zuniga-Pflucker, J. C. Commitment and developmental potential of extrathymic and intrathymic T cell precursors: plenty to choose from. Immunity. 26, 678-689 (2007).
  9. Ramond, C., et al. Two waves of distinct hematopoietic progenitor cells colonize the fetal thymus. Nat Immunol. 15, 27-35 (2014).
  10. Allison, J. P., Havran, W. L. The immunobiology of T cells with invariant gamma delta antigen receptors. Annu Rev Immunol. 9, 679-705 (1991).
  11. Anderson, G., Jenkinson, E. J. Fetal thymus organ culture. CSH Protoc. , (2007).
  12. Schmitt, T. M., Zuniga-Pflucker, J. C. Induction of T cell development from hematopoietic progenitor cells by delta-like-1 in vitro. Immunity. 17, 749-756 (2002).
  13. Barbee, S. D., et al. Skint-1 is a highly specific, unique selecting component for epidermal T cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 3330-3335 (2011).
  14. Douagi, I., Colucci, F., Di Santo, J. P., Cumano, A. Identification of the earliest prethymic bipotent T/NK progenitor in murine fetal liver. Blood. 99, 463-471 (2002).
  15. Malissen, M., et al. Altered T cell development in mice with a targeted mutation of the CD3-epsilon gene. EMBO J. 14, 4641-4653 (1995).
check_url/fr/52795?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ramond, C., Bandeira, A., Berthault, C., Pereira, P., Cumano, A., Burlen-Defranoux, O. Characterization of Thymic Settling Progenitors in the Mouse Embryo Using In Vivo and In Vitro Assays. J. Vis. Exp. (100), e52795, doi:10.3791/52795 (2015).

View Video