Summary

En metod för fjärr Tysta Neural aktivitet hos gnagare Under Diskreta faser lärande

Published: June 22, 2015
doi:

Summary

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while rats are engaged in learning and memory tasks. The approach combines pharmacogenetics (Designer-Receptors-Exclusively-Activated-by-Designer-Drugs) with a behavioral paradigm (sensory preconditioning) that is designed to distinguish between different components of learning.

Abstract

Detta protokoll beskriver hur man tillfälligt och distans tysta neuronal aktivitet i diskreta hjärnregioner medan djur är engagerade i inlärnings- och minnesuppgifter. Tillvägagångssättet kombinerar farmakogenetik (Designer-receptorer-Exklusivt-aktiverad-by-Designer-droger) med en beteendevetenskaplig paradigm (sensorisk prekonditionering) som är utformad för att skilja mellan olika former av lärande. Närmare bestämt är viralt medierad leverans används för att uttrycka en genetiskt modifierad hämmande G-proteinkopplad receptor (Designer Receptor) till en diskret hjärnregion hos gnagare. Tre veckor senare, när designer receptorexpressionsnivåerna är höga, är en farmakologiskt medel (Designer Drug) administreras system 30 minuter före ett visst beteende session. Drogen har affinitet för designern receptom och sålunda resulterar i hämning av neuroner som uttrycker formgivaren receptom, men är i övrigt biologiskt inert. Hjärnan regionen förblir tystas för 2-5 timmar (depending på dos och administreringssätt). Efter avslutad beteende paradigmet, är hjärnvävnad bedömas för korrekt placering och receptoruttryck. Detta tillvägagångssätt är särskilt användbart för att bestämma bidraget från enskilda hjärnregioner till specifika komponenter i beteende och kan användas över valfritt antal beteende paradigm.

Introduction

En spännande utmaning inom området beteende neurovetenskap är att fastställa de neurala substrat av komplexa beteenden. Ett antal tekniker såsom permanenta skador, tillfälliga hjärninaktive via kanyler implantat och optogenetik har använts för att identifiera bidragen från diskreta hjärnregioner för delkomponenterna i komplexa beteenden. Även om dessa metoder informera vår förståelse av regional selektivitet under lärande, är varje teknik inte utan begränsningar. Närmare bestämt är permanenta skador typiskt före beteendetestning, alltså deras effekter är närvarande under hela paradigm. Kanyle studier som involverar presentationen av en kortsiktig neurala inaktivator (t.ex. tetrodotoxin) kan producera betydande skada på hjärnvävnaden och kan framkalla stress i ämnen strax före beteendetestning. Vidare är inaktivering genom kanylering begränsas till området av vävnad som omgerspetsen av kanyler. Slutligen, medan optogenetik erbjuder ett utbud av flexibilitet för den tidsmässiga kontroll av verksamheten i specifika delar av hjärnan, är det kostnadseffektivt oöverkomliga och tekniskt krävande.

Dessa begränsningar kan övervinnas med hjälp av en farmakogen metod (Designer-receptorer-exklusivt aktiverade-by-Designer-droger, DREADDs) 1,2. Viktigt medan begreppet farmakogenetik är sofistikerad, är utförandet av tekniken okomplicerad. Liknar traditionella stereotaktiska kirurgiska metoder som involverar infusion av toxin (t.ex. NMDA, ibotensyra) i diskreta hjärnregioner, innebär denna teknik infusion en adeno-associerat virus (AAV) som innehåller ett DNA-fragment för en modifierad hämmande G-proteinkopplad receptor (hM4Di; designern receptorn) i det intressanta området av standard laboratoriegnagare (se figur 1). Den virala vektorn innehåller också en fluorescerande reporter (mcitrine). Som införlivats itill celler, är formgivaren receptorn (och rapportörprotein) maximalt uttryckt ~ 3 veckor efter infusion och kan selektivt aktiveras för 2-5 h genom systemisk administrering av den annars biologiskt inert designern drogen, klozapin-N-oxid (CNO) 1 , 3. Eftersom försöks är utrustad med exakt, men fjärrtemporal kontroll över neural aktivitet i specifika delar av hjärnan, kombinerar farma särskilt väl med beteende paradigm som genomförs i flera faser. I det här exemplet, att bidraget från retrosplenial cortex (RSC) stimulus-stimulus lärande jämfört med dess roll i Pavlovsk lärande, men denna kombination av metoder är väl lämpad för ett obegränsat antal frågor som syftar till att identifiera hur specifika hjärnregioner bidrar till komplext beteende.

Dessutom, även om de inte beskrivs i det nuvarande protokollet, virala och transgena metoder kan användas för att uppnå celltyp-specifik DREADD uttryck 2. Som jaginneboende i beteende paradigm som involverar farmakologiska och / eller andra typer av experimentella manipulationer, noggrann genomgång av experimentell design och efterföljande kvantitativ analys krävs vid användning av DREADD tillvägagångssätt. Praktiker nya till DREADD tillvägagångssätt hänvisas till en omfattande översyn av nuvarande DREADD teknik 2.

Varje dag, organismer lära sig om nya stimulanser och händelser och deras relationer till varandra. Även i en bekant miljö, såsom hem, är en snabb att upptäcka förändringar i relationerna mellan stimuli eftersom dessa förändringar kan vara prediktiva för meningsfulla händelser. En sådan stimulans-stimulus (dvs, relations) innebär lärandet conjoining av flera stimuli och har traditionellt förknippats med hippocampus, som är bosatt centralt inom mediala tinningloben 4. Men inte existerar hippocampus eller agera på egen hand; kortikala regioner både inom och utanförsidan av mediala temporalloben ge kritisk sensorisk information till hippocampusformationen 5-7. Traditionella permanenta skade studier ger övertygande bevis för inblandning av ett antal kortikala regioner (t.ex. de retrosplenial, postrhinal och entorhinal cortex) i hippocampus beroende lärande, men är begränsade i sin förmåga att urskilja vilken roll en viss region under diskreta faser av learning 8-10.

Den nuvarande protokollet testar hypotesen att RSC är nödvändig för stimulus-stimulus lärande genom tysta RSC under en enda fas av ett 3-fas sensorisk prekonditionering paradigm 11,12. I korthet, råttor får infusioner av en AAV som innehåller designern receptorn och ~ 3 veckor senare administreras formgivaren läkemedlet (CNO) 30 min före starten av beteendetestning. I det nuvarande protokollet, försöksråttor får CNO under den första fasen av testning (när stimulus-stimulus learning sker) och de får fordonet under de närmaste 2 faser av att testa. För att kontrollera för oavsiktliga effekter av CNO på beteende, ingjuta råttor med designern receptorn (hM4Di) och injicera med fordon i stället för CNO. Att redogöra för generella effekter av virus infusion och receptoruttryck, ingjuta en kontrollvirus som inte innehåller designern receptorn och administrera CNO.

Ett antal olika serotyper av AAV används för att leverera genetiskt material. De nuvarande NIH riktlinjer för forskning som avser rekombinanta eller syntetiska molekyler bibehåller att AAV (alla serotyper) och rekombinanta eller syntetiska AAV-konstruktioner, i vilka transgenen inte kodar för antingen ett potentiellt tumorigen genprodukt eller en toxinmolekyl och produceras i frånvaro av en hjälparvirus kräver BSL-1 försiktighetsåtgärder (Bilaga B-1. Risk Group 1 (RG1) Agenter) 13. Ett antal betyg rör AAV struktur, nytta och säkerhet finns 14,15. Notably, fast, På grund av oro rörande eventuella reproduktions 16,17 och potentiella cancerframkallande mekanismerna 18-20 i gnagare, vissa institutioner kräver användning av BSL-2 försiktighetsåtgärder när du arbetar med AAV. Kontrollera lämplig BSL före användning genom att samråda med tillsynskommittéer på enskilda institutioner där forskningen kommer att genomföras, Centers for Disease Control and NIH riktlinjer för forskning som utförs på rekombinanta DNA-molekyler 13 vid användning av virala vektorer för genmanipulation i USA. Personliga skyddsåtgärder, utredare utbildning, vektor inneslutning, sanering, omhändertagande av sanerade material, och efter injektion djur bostäder krav specificeras av dessa riktlinjer. Dessutom, samråda med och följa lämplig Institutional Animal Care och använda riktlinjer kommitté eller motsvarande riktlinjer institutionella tillsynskommittén för att säkerställa hantering, administration och bortskaffande av AAV säker.

Protocol

Användningen av djur godkänns av Oberlin College Institutional Animal Care och användning kommittén och är i enlighet med vägledningen för vård och användning av försöksdjur 21. 1. Förberedelse för Viral Infusion Obs! Detta protokoll använder BSL-1 försiktighetsåtgärder. Vid användning av BSL-2 försiktighetsåtgärder, en engångslabbrock, handskar, skoskydd, ögonskydd och en partikel andningsskydd (typ N95) krävs. Alla individer som…

Representative Results

Beteenderesultat Efter avslutad experimentet bör effektiviteten i regionspecifika tillfälligt inaktive kvantitativt och kvalitativt. Föreliggande exempel involverar en 3-fas beteendeparadigm (sensor förkonditionering), där CNO administrerades till dämpa neural aktivitet i RSC Under prekonditioneringen sessioner för att testa hypotesen att RSC är nödvändig för bildningen av föreningar bland neutrala stimuli 12. Viktigt är praktiker inte begränsad till den beteendeparadig…

Discussion

Detta protokoll beskriver hur man tillämpar ett farmakogen strategi (DREADD) att undersöka hur en viss hjärna region bidrar till en fler fas komplex inlärning uppgift. Med möjligheten att tillfälligt och på distans tysta neural aktivitet i diskreta hjärnregioner över faser av lärande, denna kombination av metoder ger en plattform för att undersöka ett brett spektrum av beteenden, inklusive mer nyanserad eller maskerade former av lärande. I exemplet som beskrivs i detta protokoll, kontrollråttor och råttor…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar författarna et al. Robinson 12 för deras bidrag till manuskriptet från vilken detta protokoll delvis kommer.

Materials

Male, Long Evans Rats, 55-60 d Hilltop Lab Animals Inc
rAAV8/hSyn-HA-hM4D(Gi)-IRES-mCitrine Virus Vector Core Caution:  This is a BSL-1 compound
rAAV8/hSyn-GFP Virus Vector Core Caution:  This is a BSL-1 compound
Clozapine-N-Oxide R&D Systems 4936-10 Designer Drug
Rat Cage lid (Polycarbonate) Alternative Design  FT 8XL-PC Used to cover animal cages 48-72 hours post infusion
Filer Paper (Replacement) Alternative Design  FP-R-1018XAD Filter paper that goes with cage lids
Table Top Vise JETS 2201-265 For holding microscentrifuge tubes containing AAV in the hood
Medline Biohazard liners  Staples 113444 Biohazard Trash Bags
United Solutions 34 gallon rectangular wheeled trashcan with hook and lock handle  Amazon.com Biohazard Trash Can
Isoflurane, 100 mL Patterson Veterinary Supply Inc.  07-890-8540 Anesthetic
Dual Small Animal Stereotaxic with Digital Display Readout Console David Kopf Model 942 Surgical equipment
Non-rupture Ear Bars, set of 2 (Rat) David Kopf Model 955 Surgical equipment
Anesthesia Mask (Rat) David Kopf Model 906 Surgical equipment
High speed Stereotaxic drill includes table top motor controller, foot pedal, handpiece, stereotaxic handpiece holder David Kopf Model 1474 Surgical equipment
Microdrill burrs, 0.9 mm Fine Science Tools Inc 19007-09 Surgical supply
Automated Syringe pump with Micro4 Controller  David Kopf Model UMP3-1 Surgical equipment
Pro-animal detachable Ceramic Blade Clipper Kit Ahdis 21420 Surgical supply
Betadine Skin Cleanser Perdue  Products L.P 67618-149-04 Surgical supply
Triple Antiobiotic Ointment Medline Supply 53329-087-01 Surgical supply
Puralube Vet Ointment Only Veterinary Supply 17033-211-38 Surgical supply
Dino-lite  Microscope AD7013MTL An alternative to the traditional disection scope
Dino-lite Rigid TableTop Boom Stand Microscope MS36B Surgical equipment
28 Gauge 10uL Syringe Hamilton  80308-701SN Surgical equipment
Extra Tall MDF Sound attenuating Cubicle Med Associates, Inc ENV-018MD 22'Wx22"Hx16"D
Extra Tall Modular Test Chamber Med Associates, Inc ENV-007 Behavioral equipment
Stainless Steel Grid Floor  Med Associates, Inc ENV-005 Behavioral equipment
House Light Med Associates, Inc ENV-215M Used as the house light and stimulus light
Modular Pellet Dispenser  Med Associates, Inc ENV-203M-45 Behavioral equipment
Pellet Recetacle, Cup Type Med Associates, Inc ENV-200R1M Behavioral equipment
Head Entry Detector for Rat Med Associates, Inc ENV-254-CB Behavioral equipment
Dustless precision food pellets, 45 mg Bio-Serv F0165 Behavioral supply
Cage Speaker for Rat Chamber Med Associates, Inc ENV-224AM Behavioral equipment
Programmable Audio Generator  Med Associates, Inc ANL-926 Behavioral equipment
Smart Ctrl 8 Input/16 output Package Med Associates, Inc DIG-716P2 Behavioral equipment
Large Table Top Cabinet and Power Supply Med Associates, Inc SG-6510D Behavioral equipment
PCI Interface Package Med Associates, Inc DIG-700P2-R2 Behavioral equipment
MED Intel core Computer Pkg with X Pro 19" Monitor Med Associates, Inc COM-103V Behavioral equipment
Paraformaldehyde (grannular), 1 kg Electron Microsopy Sciences 19210 Hazard:  carcinogen, weigh in hood
Rabbit Monoclonal antibody (HA-Tag) Cell Signaling Technologies  3724S Histology reagent
XP Rabbit monoclonal antibody (GFP) Cell Signaling Technologies  2956S Histology reagent
Anti-Rabbit IgG Cell Signaling Technologies  4412S Histology supplies
Superfrost Plus slides  VWR international 483111-703 Histology supplies

References

  1. Armbruster, B. N., Li, X., Pausch, M. H., Herlitze, S., Roth, B. L. Evolving the lock to fit the key to create a family of G-protein coupled receptors potently activated by an inert ligand. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 104 (12), 5163-5168 (2007).
  2. Urban, D. J., Roth, B. L. DREADDs (Designer Receptors Exclusively Activated by Designer Drugs): Chemogenetic tools with therapeutic utility. Annu. Rev. Pharmacol.Toxicol. 55, 399-417 (2015).
  3. Weiner, D. M. The role of M1 muscarinic receptor agonism of N-desmethylclozapine in the unique clinical effects of clozapine. Psychopharm. (Berl. 177 (1-2), 1-2 (2004).
  4. Cohen, N. J., Memory Eichenbaum, H. . amnesia and the hippocampal system. , (1993).
  5. Strien, N. M., Cappaert, N. L., Witter, M. P. The anatomy of memory: an interactive overview of the parahippocampal-hippocampal network). Nat. Rev. Neurosci. 10 (4), 272-282 (2009).
  6. Agster, K. L., Burwell, R. D. Cortical efferents of the perirhinal, postrhinal and entorhinal cortices of the rat. Hippocampus. 19 (12), 1159-1186 (2009).
  7. Aggleton, J. P. Multiple anatomical systems embedded within the primate medial temporal lobe: implications for hippocampal function. Neurosci. Biobehav. Rev. 36, 1579-1596 (2012).
  8. Robinson, S., Poorman, C. E., Marder, T. J., Bucci, D. J. Identification of functional circuitry between retrosplenial and postrhinal cortices during fear conditioning. J. Neurosci. 32 (35), 12076-12086 (2012).
  9. Bucci, D. J., Saddoris, M. P., Burwell, R. D. Corticohippocampal contributions to spatial and contextual learning. J. Neurosci. 24 (15), 3826-3836 (2004).
  10. Kaut, K. P., Bunsey, M. D. The effects of lesions to the rat hippocampus or rhinal cortex on olfactory and spatial memory: retrograde and anterograde findings. Cogn. Affect. Behav. Neurosci. 1 (3), 270-286 (2001).
  11. Brogden, W. J. Sensory preconditioning. J. Exp. Psychol. 25, 323-332 (1939).
  12. Robinson, S. Chemogenetic silencing of neurons in retrosplenial cortex disrupts sensory preconditioning. J. Neurosci. 34 (33), 10982-10988 (2014).
  13. . NIH guidelines for research involving recombinant or synthetic nucleic acid molecules. Available from: http://oba.od.nih.gov/rdna/nih_guidelines_oba.html. , (2013).
  14. Samulski, R. J., Muzyczka, N. AAV-mediated gene therapy for research and therapeutic purposes. Annu. Rev. Virol. 1, 427-451 (2014).
  15. Tenenbaum, L., Lehtonen, E., Monahan, P. E. Evaluation of risks related to the use of adeno-associated virus-based vectors. Gene Ther. 3, 545-565 (2003).
  16. Arechavaleta-Velasco, F., Ma, Y., Zhang, J., McGrath, C. M., Parry, S. Adeno-associated virus-2 (AAV-2) causes trophoblast dysfunction, and placental AAV-2 infection is associated with preeclampsia. Am J Path. 168 (6), 1951-1959 (2006).
  17. Erles, K., Rohde, V., Thaele, M., Roth, S., Edler, L., Schlehofer, J. R. DNA of adeno-associated virus (AAV) in testicular tissue and in abnormal semen samples. Hum. Reprod. 16 (11), 2333-2337 (2001).
  18. Donsante, A. AAV vector integration sites in mouse hepatocellular carcinoma. Science. 317 (5837), 477-47 (2007).
  19. Donsante, A. Observed incidence of tumorigenesis in long-term rodent studies of rAAV vectors. Gene Ther. 8 (17), 1343-1346 (2001).
  20. Wu, K. Enhanced expression of Pctk1, Tcf12 and Ccnd in hippocampus of rats: impact on cognitive function, synaptic plasticity and. 97 (1), 69-80 (2011).
  21. . National Academy Press. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. National Academy Press. , (1996).
  22. Lowery, R. L., Majewska, A. K. Intracranial injection of adeno-associated viral vectors. J. Vis. Exp. (45), (2010).
  23. Cavaletti, G. Effect in the peripheral nervous system of systemically administered dimethylsulfoxide in the rat: a neurophysiological and pathological. 119 (1-2), 1-2 (2000).
  24. Parnaudeau, S., et al. Mediodorsal thalamus hypofunction impairs flexible goal-directed behavior. Biol. Psychiatry. 77 (5), 445-453 (2014).
  25. wiki, D. R. E. A. D. D. . , (2014).
  26. Ferguson, S. M., Phillips, P. E. M., Roth, B. L., Wess, J., Neumaier, J. F. Direct-pathway striatal neurons regulate the retention of decision-making strategies. J. Neurosci. 33 (28), 11668-11676 (2013).
  27. Cassatarro, D. Reverse pharmacogenetic modulation of the nucleus accumbens reduces ethanol consumption in a limited access paradigm. Neuropsychopharm. 39, 283-290 (2014).
  28. Krashes, M. J., Shah, B. P., Koda, S., Lowell, B. B. Rapid versus delayed stimulation of feeding by the endogenously released AgRP neuron mediators. GABA, NPY and AgRP. Cell Metab. 18 (4), 588-595 (2014).
  29. Gage, F. H., Bjorklund, A., Stenevi, U., Dunnett, S. B. Functional correlates of compensatory collateral sprouting by aminergic and cholinergic afferents in the hippocampal formation. Brain Res. 268 (1), 39-47 (1983).
  30. Nelson, R. J., Young, K. A. Behavior in mice with targeted disruption of single genes. Neurosci. Biobehav. Rev. 22 (3), 453-462 (1998).
check_url/fr/52859?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Robinson, S., Adelman, J. S. A Method for Remotely Silencing Neural Activity in Rodents During Discrete Phases of Learning. J. Vis. Exp. (100), e52859, doi:10.3791/52859 (2015).

View Video