Summary

Die Herstellung einer funktionalisierter magnetischer bakterielle Nanocellulose mit Eisenoxid-Nanopartikel

Published: May 26, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol to make a bacterial nanocellulose (BNC) magnetic for applications in damaged blood vessel reconstruction. The BNC was synthesized by G. xylinus strain. On the other hand, magnetization of the BNC was realized through in situ precipitation of Fe2+ and Fe3+ ferrous ions inside the BNC mesh.

Abstract

In dieser Studie, die durch die Bakterien produziert Gluconacetobacter bakterielle Nanocellulose (BNC) xylinus synthetisiert wird und in situ mit Eisenoxid – Nanopartikel (IONP) (Fe 3 O 4) imprägniert , um ein magnetisches bakterielle Nanocellulose (MBNC) zu ergeben. Die Synthese von MBNC ist eine präzise und insbesondere mehrstufiges Verfahren entwickelt. Kurz gesagt, werden bakterielle Nanocellulose (BNC) Häutchen aus konservierten G. gebildet xylinus Stamm nach unseren experimentellen Anforderungen der Größe und Morphologie. Eine Lösung von Eisen (III) -chlorid – Hexahydrat (FeCl 3 · 6 H 2 O) und Eisen (II) -chlorid – Tetrahydrat (FeCl 2 · 4H 2 O) mit einem 2: 1 – Molverhältnis in sauerstoffarmes Wasser mit hoher Reinheit hergestellt und verdünnt. A BNC Häutchen wird dann in den Behälter mit den Reaktanten eingeführt. Diese Mischung wird gerührt und bei 80 ° C in einem Silizium Ölbad und Ammoniumhydroxid (14%) erhitzt wird dann durch Fallenlassen der auszufällenEisenionen in die BNC-Mesh. Dieser letzte Schritt ermöglicht in situ Magnetit – Nanopartikel (Fe 3 O 4) innerhalb der bakteriellen Nanocellulose – Mesh Bildung zu magnetischen Eigenschaften zu BNC Häutchen verleihen. Ein toxikologischer Test wurde verwendet, um die Biokompatibilität des BNC-IONP Häutchen zu bewerten. Polyethylenglykol (PEG) wurde verwendet, um die IONPs zu decken, um ihre Biokompatibilität zu verbessern. Rasterelektronenmikroskopie (SEM) Bilder zeigten, dass die IONP Räume der BNC-Matrix vorzugsweise in der Fibrille angeordnet waren Interlacing, aber einige von ihnen wurden auch entlang der BNC Bändern gefunden. Magnetkraftmikroskop-Messungen auf dem MBNC ausgeführt erfasst die Anwesenheit magnetischen Domänen mit hoher und schwache Intensität Magnetfeld, die magnetische Natur des MBNC Häutchen bestätigt. Young-Modul-Werte in dieser Arbeit erhaltenen auch in angemessener Übereinstimmung mit denen für mehrere Blutgefäße in früheren Studien berichtet.

Introduction

Die bacterian Nanocellulose (BNC) durch Acetobacter xylinum – Stamm synthetisiert, die auch als Gluconacetobacter xylinus bekannt und in Form von Filmen oder Häutchen auf der Luft-Flüssigkeit – Grenzfläche während des stationären Kultur abgeschieden. Diese BNC Häutchen nehmen die Form des Behälters , wo sie angebaut werden, und ihre Dicke ist abhängig von der Anzahl der Tage in der Kultur. A. xylinus verwendet die Glucose in dem Medium für die Synthese der Cellulose – Mikrofibrillen durch einen Prozess der Polymerisation und anschließender Kristallisation. Die Polymerisation der Glucosereste an der bakteriellen extrazellulären Membran durchgeführt, wobei Glucanketten aus einzelnen Poren über die Zellhülle verteilt extrudiert werden. Die Kristallisation der Cellulose – Mikrofibrillen auftritt , in den extrazellulären Raum mit der Bildung von Glucankette Blätter durch van der Waals – Bindung , gefolgt von 1 durch H-Bindung der Blätter zu stapeln.

Magnetic Nanopartikel zu einer BNC-Matrix integriert kann durch ein externes Magnetfeld, um die Kraft zu erhöhen, leicht manipuliert werden, die notwendig zu lenken und glatten Muskelzellen (SMCs) mit magnetischen Nanopartikeln beschränken, an der beschädigten Stelle der Arterienwand. Diese Strategie hält aus anderen Geweben der SMCs weg und hält die Zellen an Ort und Stelle gegen die Kraft, die durch den Blutfluss ausgeübt wird. Es hat sich gezeigt , dass SMCs eine wichtige Rolle in der vasoelasticity des Blutgefäßes spielen gezeigt, wo sie reichlich Schichten befinden sich hauptsächlich in der Tunica media 2 bilden.

Das Verfahren zur Synthese von MBNC verwendet beinhaltet BNC Häutchen eingetaucht und in einer Lösung von Eisen (III) -chlorid-Hexahydrat und Eisen (II) -chlorid-tetrahydrat bei 80 ° C gerührt. Ammoniumhydroxid zugegeben Eisenoxid-Nanopartikel im Inneren des BNC Netz zu bilden. Die Zugabe von Ammoniumhydroxid ändert sich die Farbe der Lösung von orange bis schwarz. Die IONPs kompakt zusammen entlang der BNC-Fibrillens mit einer ungleichmäßigen Verteilung.

Dieses Protokoll konzentriert sich auf die Konstruktion eines bakteriellen Nanocellulose magnetische Nanopartikel Häutchen, die wir magnetische bakterielle Nanocellulose (MBNC) genannt haben, die als Ersatz für die Verwendung fehlen, beschädigt oder verletzt kleinem Durchmesser Blutgefäßen bestimmt ist. HS Barud und Mitarbeiter haben kürzlich eine ähnliche Arbeit veröffentlicht 3 eine BNC-basierte flexible Magnet Papier durch Mischen BNC Häutchen in einer stabilen wäßrigen Dispersion von PEG und superparamagnetische Eisenoxid – Nanopartikel zu erzeugen. Hier beschreiben wir die Produktion von bakterieller Cellulose und ihre Imprägnierung in situ mit magnetischen Nanopartikeln. Ein Zytotoxizitätstest auf Detektion von einzelnen DNA-Strangbrüche auf Basis verwendet, um die Biokompatibilität der BNC und MBNC Häutchen zu testen.

Protocol

1. Herstellung von bakteriellen Nanocellulose (BNC) Anmerkung: Alle Schritte werden unter aseptischen Bedingungen durchgeführt, wenn nicht anders angegeben. Bereiten Kulturmedium. Bereiten 500 ml flüssiges Kulturmedium durch 25 g Hefeextrakt kombinieren, 15 g Pepton, 125,0 g Mannit und 500 ml vollentsalztem Wasser auf. Autoklav diese Mischung bei 120 ° C für 20 min und bei 4 ° C. Herstellung von 100 ml halbfesten Medien durch Zugabe von 15 g Agar und 5,0 g …

Representative Results

Die Inkubationszeit von G. xylinus war insgesamt 9 Tage, aber die Häutchen begann früher zu bilden , und waren nach ca. 2 Tagen evident. Das makroskopische Erscheinungsbild des BNC ist in Figur 1 angezeigt, dessen Form nachahmt , dass der schalen gewachsenen Kultur. 2 beschreibt das Verfahren zur Herstellung von BNC-IONP Häutchen, welches die Hauptschritte in dem obigen Protokoll ebenfalls beteiligt Zusammenfassungen als die Anordnung der Hau…

Discussion

Die Dicke und Größe des BNC Häutchen kann leicht durch Änderung der Inkubationszeit und die Größe des Kolbens betätigt werden, in der sie während des statischen Kultivierungs angebaut wird. Die microproperties des BNC, wie Porosität, kann durch Veränderung des Sauerstoffanteils in der statischen Kultur modifiziert werden. Höhere Sauerstoffkonzentrationen ergeben härter BNC 11. A. Bodin und Mitarbeitern hergestellten Röhren BNC mit einem Berstdruck von bis zu 880 mm Hg durch die Sauerstoff – Verh?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by Department of Defense under contract No. W81XWH-11-2-0067

Materials

Glucoacetobacter Xylinus ATCC 700178
Agar Sigma Aldrich A1296-500G 
D-Mannitol Bioxtra Sigma Aldrich M9546-250G 
Yeast Extract BD Biosciences 212750
Bacteriological Peptone Sigma Aldrich P0556
Sodium Hydroxide, 50% Solution In Water Sigma Aldrich 158127-100G
Iron(III) Chloride Hexahydrate Sigma Aldrich 236489-100G 
Ammonium Hydroxide  Macron Fine Chemicals 6665-46
Poly(Ethylene Glycol), Average Mn 400 Sigma Aldrich 202398-250G 
Iron (II) chloride tetrahydrate Sigma Aldrich 44939-250G
Disposable petri dish Sigma Aldrich BR452000
Disposable Inoculating Loop Fisher Scientific 22-363-604 
Anhydrous Calcium Sulfate W.A. Hammond Drierite  13001
High vacuum grease Sigma Aldrich Z273554-1EA
Laboratory pipetting needle with 90° blunt ends Sigma Aldrich CAD7937-12EA
pH test strips   Sigma Aldrich P4786-100EA
Round-bottom three neck angle type distilling flask Sigma-Aldrich CLS4965250
Silicone oil for oil baths Sigma-Aldrich 85409-250ML 
Drying Tube Chemglass CG-1295-01
Septum Stopper, Sleeve Type Chemglass CG-3022-98
Magnetic stir bar Chemglass CG-2001-05
Condenser Chemglass CG-1218-01
Temperature Controller BriskHeat SDC120JC-A
Stirring Hotplate Fisher Scientific 11-100-49SH 
Comet Assay Kit Trevigen 4250-050-K
SYBR Gold Nucleic Acid Gel Stain Life Technologies S-11494
bio-AFM JPK Instruments NanoWizard 4a BioScience AFM
Nanoindenter Micro Materials Ltd Multi-module mechanical tester 
Scanning electron microscopy (SEM) Hitachi High Technologies America Hitachi S-4800

References

  1. Saxena, I. M., Brown, R. M. Biosynthesis of bacterial cellulose. Bacterial Nanocellulose: A Sophisticated Multifunctional Material. , 1-18 (2012).
  2. Chan-Park, M. B., Shen, J. Y. Biomimetic control of vascular smooth muscle cell morphology and phenotype for functional tissue-engineered small-diameter blood vessels. J.Biomed.Mater.Res.A. 88, 1104-1121 (2009).
  3. Barud, H. S., et al. Biocellulose-based flexible magnetic paper. J. Appl. Phys. 117, (2015).
  4. Märtson, M., Viljanto, J., Hurme, T., Laippala, P., Saukko, P. Is cellulose sponge degradable or stable as implantation material? An in vivo subcutaneous study in the rat. Biomaterials. 20, 1989 (1999).
  5. Illésa, E., Tombácza, E., Szekeresa, M., Tótha, I., Szabób, &. #. 1. 9. 3. ;., Iván, B. Novel carboxylated PEG-coating on magnetite nanoparticles designed for biomedical applications. J. Magn. Magn. Mater. 380, 132 (2015).
  6. Torrisi, V., et al. Preventing corona effects: multiphosphonic acid poly(ethylene glycol) copolymers for stable stealth iron oxide nanoparticles. Biomacromolecules. 15, 3171 (2014).
  7. Cai, Z., Kim, J. Bacterial cellulose/poly(ethylene glycol) composite: characterization and first evaluation of biocompatibility. Cellulose. 17, 83 (2010).
  8. Wu, W., He, Q., Jiang, C. Magnetic iron oxide nanoparticles: synthesis and surface functionalization strategies. Nanoscale Res. Lett. 3, 397-415 (2009).
  9. Ulbricht, J., Jordan, R., Luxenhofer, R. On the biodegradability of polyethylene glycol, polypeptoids and poly (2-oxazoline)s. Biomaterials. 35, 4848 (2014).
  10. Azqueta, A., Collins, A. R. The essential comet assay: a comprehensive guide to measuring DNA damage and repair. Arch. Toxicol. 87 (6), 949-968 (2013).
  11. Scherner, M., et al. In vivo application of tissue-engineered blood vessels of bacterial cellulose as small arterial substitutes: proof of concept. J. Surg. Res. 189, 340 (2014).
  12. Bodin, A., et al. Influence of cultivation conditions on mechanical and morphological properties of bacterial cellulose tubes. Biotechnol Bioeng. 97, 425 (2007).
  13. Zaborowska, M., et al. Microporous bacterial cellulose as a potential scaffold for bone regeneration. Acta Biomaterialia. 6, 2540 (2010).
  14. Karimi, A., et al. A comparative study on the mechanical properties of the umbilical vein and umbilical artery under uniaxial loading. Artery Res. 8, 51 (2014).
  15. Lina, F., Ping, Z., Shengmin, Z., Guang, Y. Evaluation of bacterial nanocellulose-based uniform wound dressing for large area skin transplantation. Mater. Sci. Eng. C. 33, 2995 (2013).
  16. Olsson, R. T., et al. Making flexible magnetic aerogels and stiff magnetic nanopaper using cellulose nanofibrils as templates. Nature Nanotech. 5 (8), 584-588 (2010).
  17. Torre, B., et al. Magnetic force microscopy and energy loss imaging of superparamagnetic iron oxide nanoparticles. Sci. Rep. 1 (202), 1-8 (2011).

Play Video

Citer Cet Article
Arias, S. L., Shetty, A. R., Senpan, A., Echeverry-Rendón, M., Reece, L. M., Allain, J. P. Fabrication of a Functionalized Magnetic Bacterial Nanocellulose with Iron Oxide Nanoparticles. J. Vis. Exp. (111), e52951, doi:10.3791/52951 (2016).

View Video