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Article de méthode

Quantification des cytosolique vs Vacuolar

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DOI :

10.3791/52960

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28 juillet 2015

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Dans cet article

Résumé

Nous décrivons la quantification de Salmonella typhimurium cytosolique et vacuolaire dans les macrophages dérivés de la moelle osseuse en utilisant la perméabilisation différentielle des digitonines.

Résumé

Bactéries pathogènes intracellulaires peuvent se répliquer dans le cytosol ou dans les vacuoles contenant des agents pathogènes spécialisés (PCV). Pour atteindre le cytosol, des bactéries telles que Shigella flexneri et Francisella novicida besoin pour induire la rupture du phagosome. En revanche, Salmonella typhimurium se réplique dans un compartiment vacuolaire, connu sous le nom de Salmonella vacuole contenant (SCV). Cependant certains mutants de Salmonella ne parviennent pas à maintenir l'intégrité SCV et sont ainsi libérés dans le cytosol. Le pourcentage de bactéries par rapport cytosolique vacuolaires sur le niveau de bactéries individuelles peut être mesurée par perméabilisation différentiel, également connu comme dosage phagosome-protection. L'approche fait usage de la propriété de détergent digitonine à se lier sélectivement cholestérol. Étant donné que la membrane plasmique contient plus de cholestérol que les autres membranes cellulaires, la digitonine peut être utilisé pour perméabiliser sélectivement la membrane plasmique tout en laissant les membranes intracellulairesintact. En bref, suivant l'infection par l'agent pathogène exprimant une protéine marqueur fluorescent (par exemple mCherry entre autres), la membrane plasmique des cellules hôtes est perméabilisées par une courte incubation dans un tampon contenant de la digitonine. Les cellules sont ensuite lavées et incubées avec un anticorps primaire (couplé à un fluorophore voulue) dirigé contre la bactérie de choix (par exemple FITC anti- Salmonella) et lavées de nouveau. Si les bactéries non marquées sont utilisées, une étape supplémentaire peut être effectuée, dans lequel toutes les membranes sont perméabilisées et toutes les bactéries colorées avec un anticorps correspondant. Suite à la coloration, le pourcentage de bactéries vacuolaires cytosoliques et peut être quantifiée par FACS ou par microscopie compter les événements simples ou doubles-positives. Ici, nous fournissons des détails expérimentaux pour l'utilisation de cette technique par la bactérie Salmonella typhimurium. L'avantage de ce test est que, contrairement à l'autre dosage, il fournit une quantification du niveau de seul bacteria, et si analysée par microscopie fournit le nombre exact de bactéries cytosolique et vacuolaires dans une cellule donnée.

Introduction

Les bactéries pathogènes intracellulaires se répliquent soit directement dans le cytosol de la cellule hôte, ou dans des compartiments spécialisés vacuolaires 1. Durant la phase initiale de l'infection la plupart des pathogènes se internalisés soit par phagocytose par des cellules spécialisées (telles que les macrophages) ou par la promotion active de leur propre absorption dans des cellules non-phagocytaires. Dans les cellules phagocytaires, le phagosome fusionne généralement avec les lysosomes pour former un compartiment de dégradation, où les particules phagocytées sont digérés. Cytosoliques bactéries spécialisées, telles que Francisella novicid....

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Protocole

1. Digitonine Assay avec mCherry exprimant Salmonella (FACS-base Analyse)

  1. Préparation des bactéries
    Remarque: Salmonella de type sauvage SL1344 (Résistance à la streptomycine) exprimant mCherry partir d'un plasmide (pFPV codant mCherry sous le promoteur de RPSM) est utilisé dans cet essai. Phagocytose bactérienne et la prolifération où pas modifiée par l'expression constitutive de mCherry (données non présentées) 16.
    1. Inoculer la souche 1 jour avant l'infection dans 3 ml de milieu LB additionné de streptomycine (90 ug / ml) et de l'ampicilline (100 ug / ml, vecteur exprimant mCherry) dans un agita....

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Résultats

Figure 1 et la Figure 2 montrent les schémas de l'essai de digitonine décrites dans le protocole 1 et 2 du protocole illustrant les étapes critiques dans le protocole et les résultats obtenus. La figure 3 montre des résultats typiques FACS. Les contrôles positifs et négatifs sont utilisés pour définir les portes pour mCherry + / bactéries (FITC vacuolaire Salmonella) et mCherry + / FITC + bactéries Salmonella (cytosolique). Sur la base de ces portes, le pourcentage de .......

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Discussion

Perméabilisation différentiel est une méthode simple et robuste pour analyser et de quantifier la distribution subcellulaire des bactéries pathogènes entre les compartiments vacuolaires et le cytosol. Le même essai a été utilisé avec succès par des bactéries telles que Francisella novicida 2,4 et 12 Shigella flexneri. Cependant, étant donné que beaucoup pathogène intracellulaire altérer ou modifier les structures endomembranaires d'accueil, la robustesse de la perméabilisation.......

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Déclarations de divulgation

Nous n’avons rien à divulguer.

Remerciements

Nous tenons à remercier Mathias S. Dick, Roland F. Dreier et Sebastian Rühl de discussion. Ce travail a été soutenu par un professeur FNS PP00P3_139120 / 1 et une Université de Bâle subvention de projet ID2153162 à PB

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
DigitoninSigmaD562850 &mu ; g/ml
PFAmpbio219998380
HEPESLife Technologies15630
Acétate de potassiumSigma791733
MgCl2SigmaM8266
BSASigmaA2153
anti-Salmonella CSA-1-FITCKPL01-91-99-MG1/500
anti-Salmonella CSA-1KPL02-91-99-MG1/500
anti-CalnexinEnzo LifesciencesSPA-860D1/100
anti-PDIEnzo LifesciencesSPA-8901/100
SaponinSigma47036
Vectashield support de montageVectorlabsH-1200
Anti Rabbit antibody-488Moléculaire SondesA-110701/500
GlycineSigmaG8898
GentamicinLife Technologies15710-49100 &mu ; g/ml et 10 &mu ; g/ml
Triton X-100PromegaH5141
PBSGibco20012-019
DMEMSigmaD6429
NEAAAmimed5-13K00-H
LSM700 Microscope confocal ImagerieZeissréalisée à 63X
FACS FortessaBD technologiesdétection mCherry 610 nm
FACS FortessaBD technologiesdétection FITC 530 nm

Références

  1. Kumar, Y., Valdivia, R. H. Leading a sheltered life: intracellular pathogens and maintenance of vacuolar compartments. Cell Host Microbe. 5, 593-601 (2009).
  2. Chong, A., et al.

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Réimpressions et autorisations

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