Summary

형광 생체막 포스 프로브 : 하나의 세포에서 수용체 - 리간드 속도론의 동시 정량 및 바인딩에 의한 세포 내 신호

Published: August 04, 2015
doi:

Summary

We describe a technique for concurrently measuring force-regulated single receptor-ligand binding kinetics and real-time imaging of calcium signaling in a single T lymphocyte.

Abstract

멤브레인 수용체 – 리간드 상호 작용은 다수의 세포 기능을 매개한다. 바인딩 역학 이러한 분자의 상호 작용에 의해 트리거 다운 스트림 신호는 가능성이 기계적인 환경에서 결합 및 신호 포획 장소에 의해 영향을받습니다. 최근 연구는 기계적인 힘에 의한 항원 인식을 조절하고 T 세포 수용체 (TCR)의 트리거링 할 것을 보여 주었다. 이 형광 현미경으로 단일 분자 힘 분광법을 결합한 새로운 우리가 개발 한 기술이라고 형광 생체막의 힘 프로브 (fBFP)에 의해 가능하게되었다. 민감한 힘 센서로서 고속 카메라와 실시간 영상 추적 기술을 매우 부드러운 인간 적혈구를 사용 fBFP 1 ~ PN (10-12 N) ~ 3nm 이상이며 ~ 0.5 밀리의 힘, 공간과 시간 해상도. fBFP으로, 하나는 정확하게 힘 조절에 따라 단일 수용체 – 리간드 결합 동력학과 동시​​에 이미지가 트리거 바인딩 세포 내 칼을 측정 할 수 있습니다cium 하나의 살아있는 세포에 신호. 이 새로운 기술은 기계적인 규제에서 다른 세포에서 다른 막 수용체 – 리간드 상호 작용과 신호 전달을 연구하는 데 사용할 수 있습니다.

Introduction

세포 간 및 세포 – 대 – 세포 외 기질 (ECM)의 밀착성이 세포 표면 수용체, ECM 단백질, 및 / 또는 지질 1 간의 결합에 의해 매개된다. 바인딩은 세포의 기능을 형성 구조뿐만 아니라, 인식, 통신, 및 환경 1-3에 반응 할 수있다. 수용성 단백질 (예 : 사이토킨 및 성장 인자), 3 차원 (3D)에서 결합하는 세포 표면 수용체 상 유체 상 달리 세포 부착 수용체 분자 구속 두 대향면을 연결하는 좁은 접합부 갭에 걸쳐 그들의 리간드 결합을 형성 두 차원 (2D) 인터페이스 4-7에 확산. 일반적으로 기존의 결합 분석 (예를 들어, 표면 플라즈몬 공명 또는 SPR)에 의해 측정되는 3D 동역학 달리, 챔버 (11, 12)을 흘러, 예컨대 원 자간 력 현미경 (AFM) 8-10 같은 전문 기술을 정량 2D 동력학 가지고 마이크로 피펫 13, 14, 광핀셋 (15)과 생체막의 힘 프로브 (BFP) 16-21.

단지 세포 응집력 물리적 링크를 제공하는 이상은, 부착 분자는 그 주변과 통신하는 셀에 대한 시그널링 장치의 주요 구성 요소이다. 부착 분자의 리간드 결합은 세포 내 신호 전달 및 방법은 초기 신호가 상기 형질 도입 된 세포의 내부를 개시한다 방법 이해에 관심이 증대되고있다. 직관적으로, 수용체 – 리간드의 성질은 그것이 유도 된 신호에 영향을 미칠 수 바​​인딩. 그러나, 그 때문에 예를 들면 많은 한계, 불량한 시간 해상도와 공간 해상도의 완전한 결핍의 생화학 적 분석법 전통적인 앙상블을 사용 세포 상호 작용 및 세포 내 신호 전달 기전 이벤트 간의 관계를 해부하기가 어렵다. 라이브에 모두 생물 물리학 (역학을 결합 2D 수용체 – 리간드)을 허용 방법과 생화학 (신호) 관측을 기존세포는 형광 기능을 24-26로 통합 조정 강성 (22)의 기판 (23) 엘라스토머 기둥 배열과 유량 용기 / 미세 유체 장치를 포함한다. 그러나, 신호와 결합 수용체 리간드의 판독이 어려운 신호 이벤트와 결합 특성의 공간적 관계를 해부하고, (다른 방법으로 가장 자주) 개별적으로 얻을 수있다.

기존의 BFP는 높은 시공간 해상도 (17)와 고감도 힘 분광법이다. 이는 단일 분자 동력학 2D, 기계적 특성 및 구조적 변화 14,16,19-21,27-29의 측정을 가능하게 힘 센서로서가요 적혈구 (RBC)를 사용한다. 형광 이미징 기반 BFP (fBFP)는 단일 분자 규모에서 결합 트리거 세포 신호와 수용체 – 리간드 결합 반응 속도의 상관 관계. 표면 mechani의 맥락에서 현장 세포 신호 활동이 설정으로CAL 자극은 T-27 세포에서 관찰되었다. fBFP 만능이며 다른 셀들에있는 다른 분자들에 의해 매개되는 세포 부착 및 시그널링의 연구에 사용될 수있다.

Protocol

이 프로토콜의 지침을 다음과 조지아 공대의 인간 연구 윤리위원회에 의해 승인되었습니다. 1. 인간의 적혈구 분리, 바이오 티 닐화 및 삼투압 조절 참고 : 임상 시험 심사위원회가 프로토콜을 승인 한 단계 1.1, 숙련 된 의료 전문가 등의 간호사가 수행해야합니다. 손가락 찌르기에서 혈액의 8-10 μL (한 방울)를 얻어 탄산염 / 중탄산염 버퍼 1 ㎖에…

Representative Results

BFP 기술 1995 17 에반스 실험실에 의해 개척되었다.이 picoforce 도구는 광범위하게, 그들의 리간드 16,19,20과 상호 작용하는 부착 분자의 이차원 동력학을 분석하기 위하여, 표면에 고정화 된 단백질의 상호 작용을 측정하기 위해 사용 된 30, 분자 탄성 21,29을 측정하고, 단백질의 구조적 (21)을 변경 결정합니다. 대한 fBFP, 추가되는 해당 소프트웨어 시스?…

Discussion

성공적인 fBFP 실험은 몇 가지 중요한 고려 사항을 수반한다. 힘의 계산이 신뢰할 수있는 위해 첫째, 마이크로 피펫, RBC, 프로브 비드가 가능한 동축에 가깝게 정렬되어야합니다. RBC 및 피펫 사이의 마찰을 무시할 수 있도록 피펫 내부 RBC의 투영 약 1 프로브 피펫 직경이어야한다. 전형적인 사람 RBC 들어, 최적 피펫 직경 17,30 식 1의 최적을 산출 2.0-2.4 ㎛ 인 것이다. 둘째, 힘 클램프 분석 및 ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Research related to this paper and the development of the fBFP technology in the Zhu lab were supported by NIH grants AI044902, AI077343, AI038282, HL093723, HL091020, GM096187, and TW008753. We thank Evan Evans for inventing this empowering experimental tool, and members of the Evans lab, Andrew Leung, Koji Kinoshita, Wesley Wong, and Ken Halvorsen, for helping us to build the BFP. We also thank other Zhu lab members, Fang Kong, Chenghao Ge and Kaitao Li, for their helps in the instrumentation development.

Materials

Table 1: Reagents/Equipment
Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Sodium Phosphate Monobasic Monohydrate (NaH2PO4•H2O) Sigma-Aldrich S9638 Phosphate buffer preparation
Anhy. Sodium Phosphate Dibasic (Na2HPO4) Sigma-Aldrich S7907 Phosphate buffer preparation
Sodium Carbonate (Na2CO3) Sigma-Aldrich S2127 Carbonate/bicarbonate buffer preparation
Sodium Bicarbonate (NaHCO3) Sigma-Aldrich S5761 Carbonate/bicarbonate buffer preparation
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich S7653 N2-5% buffer preparation
Potassium chloride (KCl) Sigma-Aldrich P9541 N2-5% buffer preparation
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) Sigma-Aldrich P5655 N2-5% buffer preparation
Sucrose Sigma-Aldrich S0389 N2-5% buffer preparation
MAL-PEG3500-NHS JenKem A5002-1 Bead functionalization
Biotin-PEG3500-NHS JenKem A5026-1 RBC biotinylation
Nystatin Sigma-Aldrich N6261 RBC osmolarity adjustment
Ammonium Hydroxide (NH4OH) Sigma-Aldrich A-6899 Glass bead silanization
Methanol BDH 67-56-1 Glass bead silanization
30% Hydrogen Peroxide (H2O2) J. T. Barker Jan-86 Glass bead silanization
Acetic Acid (Glacial) Sigma-Aldrich ARK2183 Glass bead silanization
3-MERCAPTOPROPYLTRIMETHOXYSILANE(MPTMS) Uct Specialties, llc 4420-74-0 Glass bead functionalization
Borosilicate Glass beads Distrilab Particle Technology 9002 Glass bead functionalization
Streptavidin−Maleimide Sigma-Aldrich S9415 Glass bead functionalization
BSA Sigma-Aldrich A0336 Ligand functionalizing
Fura2-AM Life Technologies F-1201 Intracellular calcium fluorescence dye loading
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D2650 Intracellular calcium fluorescence dye loading
Quantibrite PE Beads BD Biosciences 340495 Density quantification
Flow Cytometer BD Biosciences BD LSR II Density quantification
Capillary Tube 0.7-1.0mm x 30" Kimble Chase 46485-1 Micropipette making
Flaming/Brown Micropipette Puller sutter instrument P-97 Micropipette making
Pipette microforce Narishige MF-900 Micropipette making
Mineral Oil Fisher Scientific BP2629-1 Chamber assembly
Microscope Cover Glass Fisher Scientific 12-544-G Chamber assembly
Micro-injector World Precision Instruments MF34G-5 Chamber assembly
1ml Syringe BD  309602 Chamber assembly
Micropipette holder Narishige HI-7 Chamber assembly
Home-designed mechanical parts and adaptors fabrications using CNC machining.  Biophysics Instrument All parts are customized according to the CAD designs. BFP system
Microscope (TiE inverted) Nikon MEA53100 BFP system
Objective CFI Plan Fluor 40x (NA 0.75, WD 0.72mm, Spg) Nikon MRH00401 BFP system
Camera, GE680, 640×480, GigE, 1/3" CCD, mono Graftek Imaging 02-2020C BFP system
Prosilica GC1290 – ICX445, 1/3", C-Mount, 1280×960, Mono., CCD, 12 Bit ADC Graftek Imaging 02-2185A BFP system
Manual submicron probehead with high resolution remote control Karl Suss PH400 BFP system
Anti-vibration table (5’ x 3’) TMC 77049089 BFP system
3D manual translational stage Newport 462-XYZ-M
SolidWorks 3D CAD software SOLIDWORKS Corp. Version 2012 SP5 BFP system
LabVIEW software National Instruments Version 2009 BFP system, BFP program
3D piezo translational stage Physik Instrumente M-105.3P BFP system
Linear piezo accuator Physik Instrumente P-753.1CD BFP system
Micromanager software Version 1.4 fBFP system, fluorescence imaging program
Dual Cam (DC-2) Photometrics 77054724 fBFP system
Dual Cam emission filter (T565LPXR) Photometrics 77054725 fBFP system
Fluorescence Camera Hamamatsu ORCA-R2 C10600-10B fBFP system
Plastic paraffin film (Parafilm) Bemis Company, Inc PM996 bottle sealing
Table 2: Buffer solutions
Carbonate/bicarbonate buffer (pH 8.5)
Sodium Carbonate (Na2CO3) 8.4g/L
Sodium Bicarbonate (NaHCO3) 10.6g/L
Phosphate buffer (pH 6.5-6.8)
NaPhosphate monobasic   NaH2PO4•H2O 27.6g/L
Anhy. NaPhosphate dibasic   Na2HPO4 28.4g/L
N2-5% buffer (pH 7.2)
Potassium chloride (KCl) 20.77g/L
Sodium chloride (NaCl) 2.38g/L
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) 0.13g/L
Anhy. Sodium Phosphate Dibasic (Na2HPO4) 0.71g/L
Sucrose 9.70g/L

References

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Citer Cet Article
Chen, Y., Liu, B., Ju, L., Hong, J., Ji, Q., Chen, W., Zhu, C. Fluorescence Biomembrane Force Probe: Concurrent Quantitation of Receptor-ligand Kinetics and Binding-induced Intracellular Signaling on a Single Cell. J. Vis. Exp. (102), e52975, doi:10.3791/52975 (2015).

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