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Article de méthode

Génération de l'intégration sans anthropiques cellules souches pluripotentes utilisant des kératinocytes cheveux dérivés

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DOI :

10.3791/53174

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20 août 2015

 ,  , 

Dans cet article

Résumé

Ce manuscrit fournit une procédure étape par étape pour la dérivation et la maintenance des kératinocytes humains à partir de cheveux épilés et la génération ultérieure de cellules souches pluripotentes humaines induites par intégration (hiPSC) sans intégration par des vecteurs épisomiques.

Résumé

Les progrès récents en matière de reprogrammation nous permettent de transformer des cellules somatiques en cellules souches pluripotentes induites humaines (hiPSC). La modélisation de la maladie à l’aide d’hiPSC spécifiques au patient permet d’étudier le mécanisme sous-jacent de la pathogenèse, fournissant également une plate-forme pour le développement du dépistage de médicaments in vitro et de la thérapie génique afin d’améliorer les options de traitement. Le potentiel prometteur des hiPSCs pour la médecine régénérative est également évident à partir du nombre croissant de publications (>7000) sur les iPSC ces dernières années. Divers types de cellules de lignées distinctes ont été utilisés avec succès pour la génération d’hiPSC, notamment les fibroblastes cutanés, les cellules hématopoïétiques et les kératinocytes épidermiques. Alors que les biopsies cutanées et les prélèvements sanguins sont couramment effectués dans de nombreux laboratoires comme source de cellules somatiques pour la génération de hiPSC, la collecte et la dérivation ultérieure des kératinocytes capillaires sont moins couramment utilisées. Les kératinocytes dérivés de cheveux représentent une approche non invasive pour obtenir des échantillons de cellules de patients. Nous décrivons ici une méthode simple et non invasive pour la dérivation de kératinocytes à partir de cheveux épilés. Nous fournissons également des instructions pour l’entretien des kératinocytes et la reprogrammation ultérieure afin de générer des hiPSC sans intégration à l’aide de vecteurs épisomaux.

Introduction

La découverte de cellules souches pluripotentes humaines induites (de hiPSCs) a révolutionné le domaine de la médecine régénérative, fournissant une méthode possible pour la production de cellules souches spécifiques à des patients 1-3. hiPSCs ont été générés avec succès à partir de divers types de cellules somatiques, y compris des fibroblastes, des cellules hématopoïétiques de 4,5 à 6,7, les cellules epitheliales rénales à partir de l'urine et des kératinocytes 8 9,10. À ce jour, les fibroblastes de la peau et des cellules hématopoïétiques représentent les sources de cellules les plus couramment utilisés pour générer des CSPi sp....

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Protocole

La collection de l'échantillon de cheveux humains de personnes nécessite l'approbation éthique par le comité d'éthique de la recherche humaine dans les établissements d'accueil et doit être fait en conformité avec les directives institutionnelles.

1. Isolement de kératinocytes à partir de pileux épilé

  1. Thaw matrice extracellulaire (ECM) (c.-à-Matrigel) sur la glace O / N.
  2. En utilisant des pointes de pipette pré-réfrigérés, ajouter 200 solution ECM ul à 12 ml de milieu DMEM réfrigérés / F12. Manteau une plaque de 12 puits avec 1 ml de solution d'ECM dilué dans chaque puits. Incuber la plaque....

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Résultats

Les cheveux passe par trois phases différentes de cycle de croissance: anagène (phase de croissance), catagène (phase de régression) et télogène (phase de repos) 20,21. Le follicule pileux anagène contient de multiples couches de l'épithélium; ces couches comprennent les SRO, IRS et l'arbre des cheveux (Figure 1). Cheveux anagène finalement subit une transition à la phase catagène, qui est marquée par l'apoptose des SRO et la cessation de la différenciation de l'arbre de cheve.......

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Discussion

Génération de hiPSCs spécifiques au patient offre une approche unique pour l'étude de la pathogenèse dans les types de cellules malades in vitro, et fournit également une plate-forme pour le criblage de médicaments pour identifier de nouvelles molécules qui peuvent sauver les phénotypes de la maladie. Cette approche de modélisation de la maladie en utilisant hiPSCs a donné des résultats prometteurs pour une variété de maladies, y compris le syndrome du QT long, la maladie de Huntington, la maladie de Parkin.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Harene Ranjithakumaran et Stacey Jackson pour leur soutien technique. Ces travaux ont été financés en partie par des subventions du Conseil national de la santé et de la recherche médicale (R.C.B. Wong, A. Pébay), de l’Université de Melbourne (R.C.B. Wong), de Retina Australia (R.C.B. Wong, S.S.C. Hung, A. Pébay) et de l’Institut de recherche ophtalmique d’Australie (R.C.B. Wong, S.S.C. Hung, A. Pébay) ; Bourse d’études du Conseil australien de la recherche (A. Pébay, FT140100047), bourse de la Fondation Cranbourne (R.C.B. Wong) ; un financement interne des National Institutes for Health (R.C.B. Wong, S.S.C. Hung) et un soutien à l’inf....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Mélange d’antibiotiques :  ;
250 ng/ml Amphotéricine antimycosique BSigmaA2942-20mlLe mélange d’antibiotiques est composé de PBS.
1X Pénicilline/StreptomycineInvitrogen15140-122
PBS (-)Invitrogen14190-144
Knockout Serum Replacement (KSR) moyen :  ;milieu KSR est filtré à l’aide de Stericup (Millipore, #SCGPU05RE) avant utilisation. Le bFGF est ajouté frais au milieu avant utilisation.
20 % de remplacement sérique knock-out (KSR)Invitrogen10828-028
DMEM/F12 avec glutamaxInvitrogen10565-042
1& fois ; Acide aminé non essentiel MEMInvitrogen11140-050
  ; 0,5&fois ; Pénicilline/StreptomycineInvitrogen15140-122
  ; 0,1 mM de &bêta-mercaptoéthanolInvitrogen21985
  ; bFGF (10 ng/ml, ajouté frais)MilliporeGF003
Milieu kératinocytaire :  ;
  ; EpiLife avec 60 et micro ; M CalciumInvitrogenM-EPI-500-CA
1& fois ; Supplément de croissance de kératinocytes humains (HKGS)InvitrogenS-001-5
Sérum de veau fœtal (FBS) milieu :  ;Le milieu FBS est filtré à l’aide de Stericup (Millipore, #SCGPU05RE) avant utilisation.
10 % de sérum fœtal bovin (FBS)Invitrogen26140079
DMEM  ;Invitrogen11995-073
0,5x Pénicilline/StreptomycineInvitrogen15140-122
2 mM L-glutamineInvitrogen25030
0,25 % trypsine-EDTAInvitrogen25200-056
Matrice extracellulaire (ECM) :
MatrigelCorning  ;354234Aliquot Matrigel stock et stocke à -80° ; C suivant le fabricant » . La concentration de la matrice de Matrigel varie légèrement d’un lot à l’autre (~9 mg/ml). Nous recommandons d’utiliser 200µ ; l matrigel pour le revêtement d’une plaque à 12 puits (~150µ ; g/puits).  ;
Kit de matrice de revêtement  ;Plasmides InvitrogenR-011-K
:  ;Notez que pCXLE-eGFP n’est utilisé que pour surveiller l’efficacité de la transfection et n’est pas nécessaire pour la reprogrammation.
-  ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ; pCXLE-eGFPAddgene27082
-  ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ; pCXLE-hOct3/4-shP53FAddgene27077
-  ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ; pCXLE-hSKAddgene27078
-  ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ; pCXLE-hULAddgene27080
transfection Fugene HDPromegaE231B
Gélatine (à partir de peau de porc)SigmaG1890Compléter 0,1 % de gélatine dans de l’eau distillée. Autoclave avant utilisation.
Milieu sérique réduit : OPTI-MEMInvitrogen31985062
AccutaseSigmaA6964-100ml
Le fibroblaste embryonnaire de souris (MEF)être inactivé par un traitement à la mitomycine C ou une irradiation comme décrit précédemment 16.
Aiguille 26GTerumoNN2613R
plaque à 6 puits (culture tissulaire traitée)BD Biosciences353046
plaque 12 puits (culture tissulaire traitée)BD Biosciences353043
10 cm (culture tissulaire traitée)BD Biosciences353003
DispaseInvitrogen17105-041Utilisation à 10 mg/ml
Collagénase IVInvitrogen17104-019Utilisation à 1 mg/ml
Anticorps TRA-160MilliporeMAB4360Utilisation à 5 & micro ; g/ml
OCT4Santa CruzSC-5279Utilisation à 5 µ ; g/ml
d’anticorps NANOGR& D SystemsAF1997Utilisation à 10 & micro ; g/ml
MycoAlert Kit de détectionLonzaLT07-418
Le Réactif de peut anticorps

Références

  1. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human....

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Réimpressions et autorisations

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