Method Article

Isolement des mitochondries à partir des quantités minimes de souris muscle squelettique pour les mesures à haut débit microplaques respiratoires

DOI:

10.3791/53217

November 13th, 2015

In This Article

Summary

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Ici, nous présentons une modification d’une méthode précédemment rapportée qui permet d’isoler des mitochondries purifiées de haute qualité à partir de plus petites quantités de muscle squelettique de souris. Cette procédure aboutit à des mitochondries fortement couplées qui respirent avec une fonction élevée lors des tests respiratoires sur microplaques.

Abstract

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Le dysfonctionnement des mitochondries des muscles squelettiques jouent un rôle dans le métabolisme est modifié observée avec le vieillissement, l'obésité et le diabète de type II. Des dosages de préparations mitochondriales respirométriques mitochondries isolées permettent l'évaluation de la fonction mitochondriale, ainsi que la détermination du mécanisme (s) d'action des médicaments et des protéines qui modulent le métabolisme. Procédures d'isolement actuelles exigent souvent de grandes quantités de tissu pour donner mitochondries de haute qualité nécessaires pour les essais respirométriques. Les méthodes présentées ici décrivent comment haute qualité mitochondries purifiées (~ 450 ug) peut être isolé à partir de quantités minimes (~ 75-100 mg) de muscle squelettique de souris pour une utilisation dans des mesures respiratoires à haut débit. Nous avons déterminé que notre méthode d'isolement donne 92,5 ± 2,0% mitochondries intactes en mesurant l'activité de la citrate synthase spectrophotométrie. En outre, l'analyse Western blot dans les mitochondries isolées abouti à l'expression faibles de l'cytosoprotéines lic, GAPDH, et l'expression robuste de la protéine mitochondriale, COXIV. L'absence d'une bande de GAPDH de premier plan dans les mitochondries isolées est indicatif de la contamination à partir de sources peu de non-mitochondriales au cours de la procédure d'isolement. Plus important encore, la mesure de O 2 le taux de consommation sur la base d'une technologie de micro-plaque et la détermination du rapport de contrôle respiratoire (RCR) pour des essais couplés respirométriques montre très couplés (RCR;> 6 pour tous les essais) et les mitochondries fonctionnelles. En conclusion, l'addition d'une étape de hachage séparé et réduisant de manière significative entraîné par un moteur vitesse d'homogénéisation d'un procédé précédemment rapporté a permis l'isolement de haute qualité et des mitochondries purifiées à partir de petites quantités de muscle squelettique de souris qui en résulte dans les mitochondries fortement couplés qui respirent avec une haute fonction lors de microplaques base des essais de respirometirc.

Introduction

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La fonction principale des mitochondries est de produire de l’ATP à partir de la phosphorylation oxydative. Cependant, les mitochondries ont de nombreuses autres fonctions cellulaires importantes, y compris, mais sans s’y limiter : la production et la détoxification des espèces réactives de l’oxygène, la régulation du calcium cytoplasmique et mitochondrial, le trafic d’organites, l’homéostasie ionique et l’implication dans l’apoptose1,2. Par conséquent, il n’est pas surprenant que les mitochondries dysfonctionnelles jouent un rôle dans de nombreuses pathologies pathologiques, telles que le vieillissement, les maladies neurodégénératives, les maladies cardio....

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Protocol

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Les études animales ont été effectuées en vertu d'un protocole approuvé par le Institutional Animal Care et utilisent Comité à Virginia Polytechnic Institute et State University.

1. Configuration (Durée: ~ 45 min)

  1. Décongeler les magasins de 0,25% de trypsine, Isolation tampon pour mitochondries (IBM) 1 et IBM2 dans un bain d'eau à 37 ° C.
  2. Rincer la verrerie et instruments de dissection éthanol à 70% puis à l'eau de haute pureté.
  3. Préparer la solution de trypsine à 0,05% de 0,25% de trypsine de stock en diluant 1 partie trypsine en 4 parties IBM1.
  4. Mélanger la protéase et inhibiteur de pho....

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Results

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Activité de la citrate synthase sert de mesure pour l'intégrité de la membrane depuis la citrate synthase est situé dans la membrane mitochondriale interne, et par conséquent ne devrait pas être présent dans les suspensions de mitochondries avec des membranes intactes. La figure 1 représente l'activité de la citrate synthase dans des échantillons non soumis à une sonication mitochondriales par rapport à soniqué des échantillons provenant de la même isolation. Soniquant les résultats de .......

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Discussion

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Les méthodes présentées ici fournissent une description détaillée de la procédure d'isolement des mitochondries à partir de quantités minimes (~ 75 à 100 mg) de muscle squelettique de souris. Cette procédure d'isolement est capable de produire de haute fonctionnement, les mitochondries pur (~ 450 ug) comme en témoigne O 2 taux de consommation, les valeurs RCR, l'activité de la citrate synthase maximale et l'expression de protéines à partir immunoblotting. Fait important, les mitochondries isol.......

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Disclosures

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George Rogers est un employé de Seahorse Bioscience qui produit l’instrument pour lequel ce protocole a été modifié.

Acknowledgements

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L’Institut de recherche en sciences de la vie Fralin et le Metabolic Phenotyping Core de Virginia Tech ont soutenu ce travail.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Essentiellement grasSigma AldrichA6003N/A
Sans acide - BSA
Tris/HClPromegaH5123N/D
KCLSigma AldrichP9541N/A
Tris BasePromegaH5135N/A
EDTASigma AldrichE6511N/A
EGTASigma AldrichE4378N/A
SaccharoseSigma AldrichS7903N/A
D-MannitolSigma Aldrich63559N/A
Trypsine-EDTA (0,25 %), rouge de phénolThermo Scientific25200-056N/A
Chlorure de sodium
cristaux blancs ou poudre cristalline
&ge ; 99.0 %
Fisher ScientificBP3581N/A
Dodécylsulfate de sodiumSigma AldrichL3771  ;n/a
Désoxycholate de sodiumSigma AldrichD6750  ;n/a
Polyoxyéthylène (12) nonylphényléther ramifiéSigma Aldrich238651N/A
Lames de rasoir à un seul tranchantFisher Scientific12-640N/A
Falcon- 100 uM Crépines à cellules en nylonFisher Scientific352360N/A
Halt Protéase & Cocktail inhibiteur de phosphatse ThermoScientific1861284N/A
Tubes microcentrifuges de 1,5 ml avec bouchon à visThermo Scientific3474N/A
Billes d’oxyde de zirconiumFisher ScientificC9012112S.O
. Anticorps GAPDH (1D4)Santa Cruz Biotechnologysc-59540N/A
Anticorps anti-COXIVSignalisation cellulaire4844sN’importe quelle protéine de la membrane interne mitochondriale suffira
Peroxydase conjuguée affinipure Âne, Anti Lapin IgG (H+L)Jackson ImmunoResearh711-035-152N/A
Peroxydase conjuguée affinipure Chèvre, Anti Souris IgG (H+L)Jackson ImmunoResearh115-001-003N/A
Triton-X100Sigma AldrichX100N/A
Pierce BCA Kit de dosage des protéines  ;Thermo Scientific23225N/A
Acide pyruvique, 98 %Sigma Aldrich107360Magasin à 4 ° ; C, pH à 7,4 avec KOH avant utilisation dans un test respiratoire
Acide succiniqueSigma AldrichS9512Conserver à température ambiante, pH à 7,4 avec KOH avant d’être utilisé dans un test respiratoire
L(-) Acide malique, BioXtra, &ge ; 95 %Sigma AldrichM6413Conserver à température ambiante, à 7,4 avec KOH avant utilisation dans un test respiratoire
Acide L-glutamiqueSigma AldrichG1251Conserver à température ambiante, à 7,4 avec KOH avant d’être utilisé dans un test respirométrique, à 7,4 avec KOH avant d’être utilisé dans un test respiratoire Palmitoyl
L-carnitine chlorideSigma AldrichP1645Conserver à -20 ° ;C
Oligomycine A, &ge ; 95 % (HPLC)Sigma Aldrich75351Stocker à -20 ° ; C
Cyanure de carbonyle 4-(trifluorométhoxy)Sigma AldrichC2920Stocker à 2-8 ° ; C
phénylhydrazone
&ge ; 98 % (TLC), poudre [FCCP]
Antimycine A de streptomyces sp.Sigma AldrichA8674Magasin à -20 ° ; C
Adénosine 5&prime ;-diphosphate monopotassique déshydraté [ADP]Sigma AldrichA5285Conserver à -20 ° ; C, à 7,4 avec KOH avant utilisation dans le dosage
RotenoneSigma AldrichR8875Conserver à température ambiante
respiratoire

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Brand, M., Nicholls, D. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochem. J. 435, 297-312 (2011).
  2. Nicholls, D. G., Ferguson, S. Bioenergetics. , Academic Press. (2013).
  3. Nunnari, J., Suomalainen, A.

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Mitochondria IsolationMouse Skeletal MuscleMicroplate RespirometryCitrate Synthase AssayWestern Blot AnalysisTissue HomogenizationDifferential CentrifugationMitochondrial PurityRespiratory Control RatioHigh Throughput Screening

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