Summary

Ex vivo Intestinal Sacs att bedöma Mukös permeabilitet i Modeller av gastrointestinal sjukdom

Published: February 09, 2016
doi:

Summary

This protocol describes the use of excised intestinal tissue preparations or “intestinal sacs” as an ex vivo model of intestinal barrier function. This model may be used to assess integrity of both the epithelial barrier and the mucous gel layer at specific intestinal sites in animal models of digestive disease.

Abstract

Epitelbarriären är den första medfödda försvaret av mag-tarmkanalen och selektivt reglerar transport från lumen till den underliggande vävnaden fack, begränsa transport av mindre molekyler över epitel och nästan helt förbjuder epitel makromolekylära transport. Denna selektivitet bestämmes av slem gelskikt, vilket begränsar transporten av lipofila molekyler och både de apikala receptorer och snäva junctionala proteinkomplex av epitelet. Cellodling in vitro modeller av epitelet är bekvämt, men som modell, de saknar den komplexiteten hos samspelet mellan mikrobiota, slemhinnor-gel, epitel och immunsystemet. Å andra sidan, kan in vivo bedömning av intestinal absorption eller permeabilitet utföras, men dessa analyser mäter totalt gastrointestinal absorption, utan angivande av plats specificitet. Ex vivo permeabilitet analyser med hjälp av "tarmsäckar"; är en snabb och känslig metod för att mäta antingen total intestinal integritet eller jämförande transport av en specifik molekyl, med den extra fördelen av intestinal-ställespecificitet. Här beskriver vi framställningen av tarmsäckar för permeabilitet studier och beräkningen av den skenbara permeabiliteten (P app) av en molekyl genom tarmbarriären. Denna teknik kan användas som en metod för att bedöma läkemedelsabsorption, eller för att undersöka regional epitelial barriär dysfunktion i djurmodeller av gastrointestinal sjukdom.

Introduction

Tarm epitelial barriär hos mag-tarmkanalen är en mukosal yta uppskattas till 400 m 2 i vuxen människa. Följaktligen är det ständigt utsätts för ifrågasätta från mikrober, intagna läkemedel, näringsämnen och bakterietoxiner. Värden får inte bara skilja mellan tolerabla bakteriefloran och potentiella patogener, men måste förhindra att dessa arter och deras utsöndrade molekyler från att korsa epitelbarriären, medan samtidigt tillåter upptag av näringsämnen. Sålunda är rollen för tarmepitelet för att fungera som en selektiv barriär för de luminala innehållet 1. Detta uppnås, delvis genom det medfödda epiteliala försvarssystem vid slemhinnan, som verkar via ett responsiv biologiskt system som består av konstitutiva och inducerbara mekanismer 2.

Förlust av epitelial barriär funktion är en patologi som är kännetecknande för ett antal gastrointestinala sjukdomar. In vivoundersökning av epitelial barriärfunktion kan bedömas genom oral sondmatning av en spårmolekyl och efterföljande serumanalys 3. Dock erbjuder denna teknik ingen uppgift om platsen för barriärfunktion. In vitro och ex vivo bedömning av transepitelial motstånd med hjälp av Transwell-system 3 och Ussing kamrar 4,5 respektive vanligen användes som surrogatmarkörer för epitelial barriärfunktion, men saknar den bidragande sjukdoms fysiologi djurmodeller 6. I detta protokoll beskriver vi en ex vivo vävnadspreparat modell som möjliggör direkt och lokal bedömning av intestinal integritet och som kan användas för att bedöma mukosal barriärfunktion vid ett antal nivåer. Viktigare, kan denna teknik appliceras på djurmodeller av sjukdom, eller kan vara farmakologiskt manipuleras för att möjliggöra på djupet förhör av slemhinnebarriären dysfunktion.

Protocol

Alla djur arbete i detta protokoll utförs med strikt följsamhet till University of Newcastle Animal etikkommitté godkända förfaranden. 1. Framställning av instrument, odlingsmedia och rätter Pre-varm Media 199 (TC199) eller Dulbeccos Modified Eagle Medium (DMEM) media till 37 ° C. Pre-syresätta mediet genom bubbling med 95% O2 / 5% CO2. Kontrollera att mediet har ett slutligt pH av 7,3. Förbered sutur genom att skära två 5 c…

Representative Results

Detta protokoll kan användas för att undersöka regionala förändringar i tarmbarriärfunktion i djurmodeller av mag-tarmsjukdomar. Genom att mäta flödet av en paracellulär sond tvärs slemhinneytan vid varierande områden av mag-tarmkanalen 7, kan bedömas integriteten för de epiteliala tight junctions. Dessutom, genom att variera naturen hos den para sonden genom storlek (Figur 2) eller hydrofobiciteten (figur 3), graden av epitelial …

Discussion

Här har vi detaljerat isolering och beredning av tarmsäckar för att bedöma mukosal barriärfunktion ex vivo. Tarm sac preparat har huvudsakligen använts i läkemedelsforskning, undersöka absorptionen av läkemedelskandidater hela tarmen. Emellertid är denna analys lika väl lämpad för studier av tarmsjukdom. Intestinal permeabilitet kan variera kraftigt från region och platsspecifik bedömning av genomtränglighet tillåter en bättre förståelse av den regionala betydelsen av slemhinnans integritet …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by National Health and Medical Research Project Grant APP1021582 and a Hunter Medical Research Institute grant sponsored by Sparke Helmore/NBN Triathlon and the Estate of the late Leslie Kenneth McFarlane.

Materials

Dekantel  Non-absorbable Silk suture Braintree Scientific SUT-S 116
Media 199 (TC199)  Life Technologies 11043-023 No phenol red as this interferes with fluorescence
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Life Technologies 21063-045 No phenol red as this interferes with fluorescence
N-acetylcysteine Sigma Aldrich Use at 10mM in media
Small animal vascular cathether: Physiocath Data Sciences International 277-1-002
FITC-Dextran 4400 MW Sigma Aldrich FD-4
FITC-Dextran 20,000 MW Sigma Aldrich FD-20
FITC-Dextran 70,000 MW Sigma Aldrich FD-70

References

  1. Goggins, B. J., Chaney, C., Radford-Smith, G. L., Horvat, J. C., Keely, S. Hypoxia and Integrin-Mediated Epithelial Restitution during Mucosal Inflammation. Frontiers in immunology. 4, 272 (2013).
  2. Otte, J. M., Kiehne, K., Herzig, K. H. Antimicrobial peptides in innate immunity of the human intestine. Journal of gastroenterology. 38, 717-726 (2003).
  3. Robinson, A., et al. Mucosal protection by hypoxia-inducible factor prolyl hydroxylase inhibition. Gastroenterology. 134, 145-155 (2008).
  4. Feighery, L., et al. Increased intestinal permeability in rats subjected to traumatic frontal lobe percussion brain injury. The Journal of trauma. 64, 131-137 (2008).
  5. Keely, S., et al. Chloride-led disruption of the intestinal mucous layer impedes Salmonella invasion: evidence for an ‘enteric tear’ mechanism. Cellular physiology and biochemistry : international journal of experimental cellular physiology, biochemistry, and pharmacology. 28, 743-752 (2011).
  6. Keely, S., et al. Contribution of epithelial innate immunity to systemic protection afforded by prolyl hydroxylase inhibition in murine colitis. Mucosal immunology. 7, 114-123 (2014).
  7. Sourisseau, T., et al. Regulation of PCNA and cyclin D1 expression and epithelial morphogenesis by the ZO-1-regulated transcription factor ZONAB/DbpA. Mol Cell Biol. 26, 2387-2398 (2006).
  8. Ruehl-Fehlert, C., et al. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice–part 1. Exp Toxicol Pathol. 55, 91-106 (2003).
  9. Barthe, L., Woodley, J. F., Kenworthy, S., Houin, G. An improved everted gut sac as a simple and accurate technique to measure paracellular transport across the small intestine. European journal of drug metabolism and pharmacokinetics. 23, 313-323 (1998).
  10. Marks, E., et al. Oral Delivery of Prolyl Hydroxylase Inhibitor: AKB-4924 Promotes Localized Mucosal Healing in a Mouse Model of Colitis. Inflammatory bowel diseases. 21, 267-275 (2015).
  11. Keely, S., et al. Hypoxia-inducible factor-dependent regulation of platelet-activating factor receptor as a route for gram-positive bacterial translocation across epithelia. Mol Biol Cell. 21, 538-546 (2010).
  12. Brayden, D. J., Bzik, V. A., Lewis, A. L., Illum, L. CriticalSorb promotes permeation of flux markers across isolated rat intestinal mucosae and Caco-2 monolayers. Pharmaceutical research. 29, 2543-2554 (2012).
  13. Hubbard, D., Ghandehari, H., Brayden, D. J. Transepithelial transport of PAMAM dendrimers across isolated rat jejunal mucosae in ussing chambers. Biomacromolecules. 15, 2889-2895 (2014).
  14. Keely, S., et al. In vitro and ex vivo intestinal tissue models to measure mucoadhesion of poly (methacrylate) and N-trimethylated chitosan polymers. Pharmaceutical research. 22, 38-49 (2005).
  15. Maher, S., et al. Evaluation of intestinal absorption enhancement and local mucosal toxicity of two promoters. I. Studies in isolated rat and human colonic mucosae. European journal of pharmaceutical sciences : official journal of the European Federation for Pharmaceutical Sciences. 38, 291-300 (2009).
  16. Balda, M. S., et al. Functional dissociation of paracellular permeability and transepithelial electrical resistance and disruption of the apical-basolateral intramembrane diffusion barrier by expression of a mutant tight junction membrane protein. The Journal of cell biology. 134, 1031-1049 (1996).
  17. Behrens, I., Stenberg, P., Artursson, P., Kissel, T. Transport of lipophilic drug molecules in a new mucus-secreting cell culture model based on HT29-MTX cells. Pharmaceutical research. 18, 1138-1145 (2001).
  18. Stefka, A. T., et al. Commensal bacteria protect against food allergen sensitization. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 13145-13150 (2014).
  19. Keely, S., et al. Activated fluid transport regulates bacterial-epithelial interactions and significantly shifts the murine colonic microbiome. Gut microbes. 3, 250-260 (2012).
  20. Barrett, K. E., Keely, S. J. Chloride secretion by the intestinal epithelium: molecular basis and regulatory aspects. Annual review of physiology. 62, 535-572 (2000).
  21. Soni, J., et al. Rat, ovine and bovine Peyer’s patches mounted in horizontal diffusion chambers display sampling function. Journal of controlled release : official journal of the Controlled Release Society. 115, 68-77 (2006).
  22. Justino, P. F., et al. Regulatory role of Lactobacillus acidophilus on inflammation and gastric dysmotility in intestinal mucositis induced by 5-fluorouracil in mice. Cancer chemotherapy and pharmacology. , (2015).
  23. Tran, C. D., Sundar, S., Howarth, G. S. Dietary zinc supplementation and methotrexate-induced small intestinal mucositis in metallothionein-knockout and wild-type mice. Cancer biology & therapy. 8, 1662-1667 (2009).
  24. Musch, M. W., Wang, Y., Claud, E. C., Chang, E. B. Lubiprostone decreases mouse colonic inner mucus layer thickness and alters intestinal microbiota. Digestive diseases and sciences. 58, 668-677 (2013).
check_url/fr/53250?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Mateer, S. W., Cardona, J., Marks, E., Goggin, B. J., Hua, S., Keely, S. Ex Vivo Intestinal Sacs to Assess Mucosal Permeability in Models of Gastrointestinal Disease. J. Vis. Exp. (108), e53250, doi:10.3791/53250 (2016).

View Video